4.2.2. Рефлекторный механизм процесса перехода химуса из желудка в кишечник.
Подготовленный химус приобретает определенную консистенцию и кислотность (рН 5,0). Давление и кислая среда действуют на хемо- и барорецепторы стенок желудка, которые посылают по центральным нервам импульсы возбуждения в ЦНС. Из нее по центробежным нервам они передаются сфинктеру выходного отверстия. Отверстие пропускает порцию химуса. В 12-перстной кишке среда имеет рН 5,6-6,2. При поступлении химуса из мышечного желудка кислотность повышается; при этом раздражаются хеморецепторы кишечника и по рефлекторной дуге проходят импульсы возбуждения, закрывающие пилорический сфинктер. Избыточная кислотность в кишечнике нейтрализуется желчью, поджелудочным и кишечным соками, и процесс открывания сфинктера повторяется. Периодичность перехода химуса из желудка в кишечник имеет большое физиологическое значение. Она исключает возможность излишнего накопления соляной кислоты или щелочных элементов в кишечнике, что отрицательно влияет на активность ферментов.
Эвакуация пищи из желудка в кишечник регулируется также осмотическим давлением содержимого мышечного желудка. При сильном заполнении кишечника химусом и растягивании его стенок переход очередных порций химуса рефлекторно прекращается.
На пищевую массу в 12-перстной кишке действуют желчь, соки поджелудочной и кишечных желез. При участии ферментов здесь происходит активный процесс полостного и пристеночного кишечного пищеварения. Желчь – это жидкий секрет, вырабатываемый клетками печени. Она имеет темно- или светло-зеленый цвет и маслянистую консистенцию. В ней содержится 78-80 % воды и 20-22 % сухих веществ, в том числе желчные кислоты, муцин, холестерин, неорганические соли, а также желчные пигменты (билирубин, биливердин), от которых зависит цвет желчи. Пигменты желчи образуются из гемоглобина, который освобождается после разрушения эритроцитов в печени. Реакция желчи слабощелочная.
Желчь образуется в печени непрерывно и собирается в желчном пузыре. В просвет 12-перстной кишки она изливается только в период поступления и прохождения в ней кормовой массы. Желчь птиц отличается от желчи других животных наличием в ее составе стеариновой кислоты.
Желчь активизирует пищеварительные ферменты, особенно участвующие в расщеплении жиров. Она способствует эмульгированию жиров и тем самым создает большую поверхность для лучшего воздействия жирорасщепляющего фермента. Желчь усиливает отделение поджелудочного сока, возбуждает перистальтику кишечника, чем ускоряет продвижение химуса.
Вместе с химусом из желудка поступает соляная кислота. Под ее влиянием в слизистой оболочке 12-перстной кишки образуется гормон секретин. Он всасывается в кровь и доставляется общим кровотоком к поджелудочной железе, где оказывает действие на ее нервно-железистый аппарат, вызывая выделение поджелудочного сока. Усиливает или ослабляет секрецию поджелудочной железы блуждающий нерв. Пищеварительный сок поджелудочной железы жидкий по консистенции, прозрачный, обладает слабощелочной реакцией, рН 7,2-7,5. В его составе имеются ферменты трипсин, эрепсин, амилаза, мальтаза, липаза.
Трипсин находится в соке поджелудочной железы в неактивном состоянии в виде трипсиногена. В кишечнике под влиянием энтерокиназы трипсиноген переходит в трипсин, который очень активен в щелочной среде и менее активен в кислой.
Эрепсин действует в щелочной среде и как бы довершает работу, начатую пепсином и трипсином. Трипсин и эрепсин расщепляют белки, альбумозы и пептоны до аминокислот, которые хорошо растворяются в воде и свободно всасываются в кровь. В химусе тонкого отдела кишечника азот аминокислот составляет около 30 % от его общего количества.
Липаза сока поджелудочной железы действует в щелочной среде, она активизируется желчью, которая поступает в 12-перстную кишку. Липаза расщепляет жиры на глицерин и жирные кислоты. Глицерин растворим в воде и быстро всасывается. Жирные кислоты омыляются щелочами, образуя с ними соединения, хорошо растворимые в воде, которые также легко всасываются.
Амилаза переводит крахмал растительных клеток в дисахарид мальтозу, под действием мальтазы превращающуюся в моносахарид глюкозу, которая хорошо растворяется в воде и всасывается через стенки кишечника в кровь.
Большая часть питательных веществ – белков, жиров, углеводов – переваривается в 12-перстной кишке. В нижележащих отделах тонкого кишечника завершается расщепление питательных веществ при участии ферментов кишечного сока и всасывается основная масса продуктов переваривания.
Кишечный сок выделяется кишечными железами в ответ на механическое раздражение слизистой оболочки кишечника. Кишечный сок имеет удельный вес 1,0076, щелочную реакцию, рН 7,42, мутный цвет. В нем содержатся ферменты энтерокиназа, эрепсин, амилаза, мальтаза.
Помимо процессов пищеварения в полости кишечника существует так называемое пристеночное, или контактное, пищеварение, которое осуществляется ферментами, фиксированными на микроворсинках слизистой оболочки. Здесь завершается процесс расщепления питательных веществ и создаются условия для их всасывания.
В слепые кишки поступает не весь химус, а только часть его, содержащая мелкие частицы корма; крупные частицы, минуя устья слепых кишок, проходят дальше и выделяются наружу. В слепых кишках интенсивно всасывается вода и переваривается клетчатка (10-30 %).
Превращение клетчатки происходит при участии ферментов и бактерий, которые в большом количестве находятся в слизистой оболочке слепых отростков. На наличие процессов брожения в слепых отростках указывает специфический запах содержимого.
Прямая кишка сравнительно короткая. Длина ее у кур равна 6-7 см, у уток – 7-9 см. В прямой кишке всасывается вода. Скапливающиеся каловые массы удерживаются кольцевыми мышцами (сфинктерами), имеющимися в начале прямой кишки и в ее конце.
Питательные вещества в кровь и лимфу всасываются главным образом в тонком отделе кишечника, частично в слепых отростках и толстом отделе кишечника. В просвете кишечника благодаря фильтрации, диффузии, биологической активности эпителиальных клеток и движению ворсинок питательные вещества всасываются через призматический каемчатый эпителий и попадают в кровеносные капилляры и лимфатический канал ворсинок. Мышцы ворсинок, сокращаясь, выдавливают кровь и лимфу в сеть более крупных сосудов, расположенных глубже. Затем мышцы расслабляются, и сосуды ворсинок вновь заполняются лимфой и кровью.
Установлено, что около 75 % жира от общего переваренного количества всасывается через лимфатические сосуды, остальная часть его поступает непосредственно в кровь. Аминокислоты и моносахариды всасываются главным образом через кровеносные капилляры ворсинок.
Углеводы всасываются в основном в виде глюкозы. Проходя призматический эпителий, они попадают в капилляры ворсинок с кровью, оттекающей от кишечника, поступают в воротную вену и печень. Если в крови, притекающей в печень, количество углеводов оптимальное, то они не задерживаются в ней и быстро поступают в общий кровоток; если содержание сахара в крови выше нормы, глюкоза задерживается в печени и из нее синтезируется животный крахмал - гликоген, который может образовываться не только в печени, но и в мышцах.
Жиры под воздействием кишечной липазы расщепляются на глицерин и жирные кислоты. Глицерин растворяется в воде и всасывается легко. Жирные кислоты не растворяются в кишечном содержимом, но, соединяясь со щелочами желчи, переходят в растворимые соединения (мыла) и поступают через эпителий ворсинок в лимфатический проток или кровеносные капилляры. Затем глицерин и жирные кислоты снова соединяются, образуя жир. Поэтому иногда капельки жира находят уже в лимфатических каналах, отходящих от ворсинок.
Под влиянием протеолитических ферментов пепсина, трипсина и эрепсина белки расщепляются до пептонов, пептидов и аминокислот. Аминокислоты быстро всасываются через эпителий ворсинок в кровь и доставляются к органам и тканям, где как пластический материал используются для синтеза белков клеток.
Вода всасывается в тонком и толстом отделах кишечника. Из общего количества воды, принятой из поилок и с кормом, в кровь всасывается около 30-50 %. Остальное количество остается в кишечнике для поддержания определенной консистенции химуса и выделяется с пометом. У птиц вода мочи, поступая в клоаку, может снова всасываться. Поэтому некоторые виды птиц длительное время обходятся тем количеством воды, которое содержится в принятом корме и образуется в организме в процессе обмена (так называемая эндогенная вода).
Минеральные соли хорошо растворяются в пищеварительном соке и всасываются через эпителий слизистой тонкого и толстого кишечника в кровь.
Пищеварительный тракт птицы имеет множество физиологических особенностей по сравнению с млекопитающими.
Длина желудочно-кишечного тракта у цыплят достигает 210 см. Анатомически пищеварительный аппарат птиц представляет оригинальные характеристики по всей его длине, от ротовой полости до клоаки. Следует отметить наличие настоящей ротоглотки, разделение желудка на железистую и мышечную зоны, кишечник сравнительно короткий, где различают два слепых отростка и клоаку - перекресток пищеварительного, мочевого и генитального путей.
По причине отсутствия мягкого неба и надгортанника ротовая полость и глотка объединены в ротоглотку. Твердый и тупой клюв замещает губы. Язык в форме узкого треугольника, сохраняя форму клюва, наделен очень большой мобильностью благодаря фиксации с подъязычной костью.
Слюнные железы многочисленные и рассеяны в ротовой полости, они более развиты у наземных птиц (твердое питание). Основные железы представлены челюстными и железами ротового угла, расположенными в скуловой аркаде.
Пищевод сравнительно длинный у большинства птиц, представляет собой очень растянутую трубку. Он обладает множеством слизистых желез и многослойным плоским эпителием.
Форма зоба и размер варьируют в зависимости от функции: он может быть слегка расширен у гусей, тогда как у голубей он связан с пищеводом по всей длине. Объем зоба и его депонирующая способность зависят от живой массы птицы. У курицы объем зоба на 27 % больше, чем у петухов. У насекомоядных птиц и у сов зоб отсутствует. Величина рН содержимого зоба 4,5-5,5. Пищеварение в зобе осуществляется за счет ферментов и микрофлоры. При этом переваривается до 15-20 % углеводов, включая крахмал. Моторная функция зоба осуществляется в виде 10-12 периодических сокращений в час.
Желудок птиц разделен на два отдела – железистый желудок (секреторный) и мышечный (механический). Железистый желудок является продолжением пищевода и представляет небольшую полость с утолщенной стенкой. В нем пища пребывает незначительное время. Его слизистая оболочка покрыта цилиндрическим эпителием с множеством желез. Секреторные клетки этих желез продуцируют одновременно соляную кислоту и пепсиноген29. Эти клетки замещают основные и пристеночные клетки млекопитающих. Величина рН чистого сока железистого желудка 1,5-2,0. Обработанная соком железистого желудка кормовая масса быстро покидает железистый желудок и переходит в мышечный, где осуществляется основной процесс пищеварения.
Мышечный желудок сравнительно большой у зерноядных птиц. Его слизистая серого или коричневого цвета за счет импрегнации желчных пигментов, периодически поступающих с содержимым 12-перстной кишки. У птиц, живущих на земле, мышечный желудок содержит небольшие камни, которые играют роль дробильных зубов. У кур масса камней, которые способствуют перетиранию кормов в мышечном желудке составляет 10-12 г. За 2-4 ч расщепляется до 50 % белков корма (рН 2,5-3,5). Моторная функция желудка – 2-4 сокращения в минуту.
У водоплавающих птиц выделяют третий отдел желудка, расположенный после мышечного, называемый пилорическим желудком. Вероятно, он обеспечивает роль фильтра, препятствуя прохождению крупных пищевых частиц.
Тонкий кишечник короткий у всеядных птиц и более длинный у травоядных и зерноядных. Длина кишечника у птиц меньше, чем у млекопитающих. У кур она составляет 165-230 см, в 5-6 раз превышая длину тела. Стенка кишечника утолщенная на уровне 12-перстной и подвздошной кишки и более тонкая, прозрачная на уровне тощей.
У кур 12-перстная кишка в среднем длиной 24 см и 0,8-1,2 см в диаметре. Она имеет V-образную форму, охватывая поджелудочную железу. Край петли этой кишки проникает в тазовую полость. Переход мышечного желудка в 12-перстную кишку образует пилорическое сужение, позволяющее переходить в кишечник лишь пищевым частицам малого размера. Граница между двумя структурами покрыта толстым слоем слизи, что предохраняет кишечник от чрезмерной кислотности, поступающей из желудка.
Тощая кишка характерна своими стыковками с желчным и поджелудочным каналами на уровне конечной части 12-перстной кишки. Ее длина у кур 85-120 см, диаметр 0,6-1,0 см в форме множественных складок. Различают две части кишки: проксимальную (петля Меккеля) и дистальную, более короткую (над-12-перстная петля). Дивертикул Меккеля (diverticulumvitelli), остаток омфаломезентериального канала, связывающего кишечник с пупочным пузырем или желточным мешком у эмбриона, указывает на окончание тощей и начало подвздошной кишки.
Подвздошная кишка короткая, у кур 13-18 см. Она имеет 6-8 пейеровых бляшек. Гистологически кишечник птиц не имеет значительных различий по сравнению с кишечником млекопитающих. Птицы не имеют желез Брюннера, а имеются железы или крипты Люберкюновы на различных стадиях развития.
Толстый кишечник у птиц очень короткий по сравнению с таковым у млекопитающих (5-8 см у кур) и соответствует слепой, прямой кишке и клоаке. Ободочная кишка у птиц практически отсутствует.
Слепые кишки, расположенные между тонким и толстым кишечником, у кур сравнительно длинные, у взрослых кур они достигают 20 см длины. У голубей они короткие (0,2-0,7 см.). Слепые кишки представлены двумя симметричными мешками, хотя возможно наличие лишь одного мешка или вообще отсутствие у отдельных видов птиц. Слепые кишки богаты лимфоидной тканью, поэтому полагают, что они участвуют в иммунных реакциях кишечника.
Прямая кишка сравнительно короткая у всех видов птиц, исключая страуса. Клоака разделена на 3 части: копродеум (coprodeum), уродеум (urodeum), проктодеум (proctodeum).
Копродеум является расширением прямой кишки, в котором аккумулируются фекалии. Это самая большая часть клоаки, она отделена от прямой кишки сфинктером с гладкими круговыми нитями. Уродеум включает 2 мочеточника, яйцевод, который располагается исключительно слева. Проктодеум представляет собой резервуар, закрывающийся снаружи двумя сфинктерами, один из них внутренний-гладкий, внешний сфинктер складчатый. Слизистая оболочка на уровне клоакального отверстия покрыта плотным слоем слизистых желез. Проктодеум связан с сумкой Фабрициуса (клоакальный тимус), лимфоидным органом, который исчезает с возрастом с заменой на фиброзную ткань к одному году у кур и несколько позднее у уток.
Дополнительные железы пищеварительного тракта у птиц имеют большие различия по сравнению с млекопитающими. Печень разделена на больших размеров правую и левую доли. Желчь выводится гепатокишечным каналом (который связывает непосредственно левую долю печени с конечной частью 12-перстной кишки) и гепатопузырным (который связывает правую долю с желчным пузырем). Желчь далее поступает через пузырно-кишечный канал в 12-перстную кишку. Желчный пузырь есть у кур, гусей, индюков, но отсутствует у голубя.
Поджелудочная железа включает 3 доли с тремя протоками, которые выходят в дистальной части 12-перстной кишки недалеко от желчных каналов. Поджелудочный сок выделяется непрерывно со скоростью 25 мл в час у взрослых кур (рН 7,5-8,1). В поджелудочном соке птиц отсутствует лактаза в отличие от млекопитающих. Поджелудочная железа кур очень богата островками Лангерганса, которые играют определяющую роль в контроле энергетического обмена.
Следует отметить, что лимфатическая система, характерная для млекопитающих, у птиц практически не существует. Нет лимфатических узлов у куриных и голубиных. Лишь у гусиных имеется несколько скоплений лимфатических узлов у основания шеи.
Наличие анатомических особенностей, особенно в расположении железистого желудка перед мышечным, объединение желчных каналов и каналов поджелудочной железы в дистальной части 12-перстной кишки, наличие двух длинных слепых кишок обеспечивает переваривание и всасывание энергетически важных компонентов пищи. Продолжительность прохода пищевых масс в пищеварительном тракте птиц, даже с учетом антиперистальтической функции 12-перстной кишки, более активная и составляет в среднем 6-10 ч.
Слабая степень развития слюнных желез создает трудности в изучении их функций, основываясь на катетеризации протоков слюнных желез.
Общее количество слюны, секретируемое курами, составляет 7-30 мл в сутки. Слюна состоит в основном из слизи, секретируемой слизистыми железами и необходимой для смазывания корма. Она способствует транзиту пищевого корма сквозь ротоглотку и проксимальную часть пищевода. У отдельных видов птиц (воробьи, гуси) выявлено наличие амилазы слюны, которая отсутствует у кур и индюков. Активность амилазы коррелирует с размером и степенью развития зоба. Куры и утки обладают очень развитым зобом, что позволяет корму пребывать в нем определенное время (от нескольких минут до одного часа), прежде чем пройти в железистый желудок, следовательно, при этом крахмал может быть подвергнут действию амилазы растительного происхождения. У воробьев и в меньшей степени у гусей зоб веретенообразный и не обладает большой возможностью депонирования кормовых масс.
Секреторная активность зоба очень слабая. Отмечают лишь выраженную секрецию слизи слизистыми железами пищевода и при входе в зоб, что обеспечивает пропитывание и разложение пищи.
Первые стадии переваривания углеводов происходят на уровне зоба, благодаря действию амилаз слюны, микроорганизмов.
Активной секреции в мышечном желудке птиц не выявлено, хотя есть секреция полисахаридно- белкового комплекса, который покрывает всю полость желудка. Слой этого комплекса защищает мягкую ткань желудка от действия соляной кислоты и пепсина и от повреждений слизистой пищевым комом.
Действие секреции желудка у птиц проявляется на уровне 12-перстной кишки. Пищевой ком, поступающий в желудок, стимулирует секрецию желудка.
В соке поджелудочной железы различают 2 фракции – водную и ферментативную. В водной фракции есть ионы бикарбонатов. Белковые компоненты представлены незаменимыми ферментами для распада липидов, белков, углеводов. Выделяют рибонуклеазу, амилазу, липазу, химотрипсин, трипсин, эластазу, карбоксипептидазу.
Микробиологическая активность имеет место на уровне зоба и особенно слепых кишок. Наличие бактериальной флоры, особенно грамотрицательных бактерий, одновременно отражает морфологические и метаболические характеристики. Микрофлора способствует быстрой смене эпителия кишечника (в течение 2 суток). Однако массивное образование молочной кислоты может изменить целостность слизистой кишечника.
Бактериальная флора зоба включает в основном лактобациллы (Lactobacillusacidophilus), которые способствуют нормализации рН среды за счет секреции молочной кислоты, других органических и летучих жирных кислот.
Слепые кишки - прекрасная среда для размножения бактерий, в первую очередь анаэробов, при рН 6,5-7,5. В них находят даже мочу за счет антиперистальтического рефлекса прямой кишки.
Куры способны использовать до 17 % клетчатки рациона. Слепые кишки играют также роль в переваривании белков и в утилизации небелкового азота. Анаэробная микрофлора способна разлагать мочевую кислоту, основной продукт обмена азота у птиц, выделяющийся через почки. Аммиак, продуцируемый, внедряется в синтез аминокислот, используемых бактериями.
Как и у млекопитающих, бактериальная флора птиц снижает утилизацию липидов, уменьшая роль желчных солей. Наконец, бактериальная флора на уровне слепых кишок способна синтезировать витамины водорастворимой группы, особенно группы В. Эти витамины могут быть использованы птицей только после копрофагии, особенно если она содержаться на подстилке. Слепые кишки играют также важную роль в сбережении воды. Птицы без слепых кишок экскретируют каловые массы более сухие, что свидетельствует о том, что они участвуют в сбережении воды кишечника и мочи. Они важны в поддержании водного баланса при повышении температуры окружающей среды.
Кишечный барьер является барьером иммунного комплекса. Эпителий кишечника защищает организм против внедрившихся субстанций кормовой природы, бактериальной, вирусной, паразитарной. Иммунная защита слизистой кишечника связана с лимфоцитами, которые находятся в лимфоидных фолликулах.
5. Морфологические показатели крови при применении пробиотиков
5.1. Изменение морфологических показателей периферической крови под влиянием ветома 1.1
К форменным элементам крови относятся эритроциты, лейкоциты и тромбоциты. Эритроциты птиц эллиптической формы, имеют ядра. Лейкоциты - бесцветные клетки с ядром. Количество форменных элементов крови может меняться в зависимости от условий содержания, породных и видовых особенностей птицы.
По морфологическим признакам и свойству различно окрашиваться красителями лейкоциты делят на две большие группы: гранулоциты (зернистые) и агранулоциты (незернистые).
Среди гранулоцитов выделяют базофилы, эозинофилы и псевдоэозинофилы. К агранулоцитам относятся лимфоциты и моноциты.
Тромбоциты у кур имеют веретенообразную форму, играют важную роль в процессе свертывания крови.
Для изучения влияния ветома 1.1. на морфологические показатели периферической крови из кур кросса «Смена» были сформированы по принципу аналогов контрольная и три опытных группы. Цыплятам опытных групп ветом 1.1 назначали с кормом в дозе 75 мг на 1 кг массы 1 раз в сутки до конца периода выращивания с использованием трех схем. В 1-й опытной группе двукратно – по 10 дней подряд, с интервалом в 20 дней, во 2-й опытной группе – 5-дневными циклами, с интервалом между назначением 5 дней, в 3-й опытной группе – через 24 ч до завершения эксперимента. В контрольной группе препарат не применяли.
Для изучения действия препарата в динамике кровь у цыплят брали в 1-е сутки жизни и затем на 20-, 40- и 60-е сутки непосредственно из сердца по методике Б.А. Шестеркина (1972) или из крыловой вены. Кровь стабилизировали 1%-м раствором гепарина на дистиллированной воде (2 капли на 5 мл крови). Гематологические исследования включали определение количества эритроцитов, лейкоцитов – в камере Горяева, гематокрита – методом микроцентрифугирования, содержание гемоглобина – гемоглобин-цианидным методом, анализ лейкограммы.
При изучении влияния ветома 1.1 на морфологические показатели крови цыплят-бройлеров установлены определенные закономерности, проявление которых зависело от схем и продолжительности применения препарата. До применения ветома 1.1 количество лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина, гематокрита в крови суточных цыплят-бройлеров опытных групп не имело достоверных различий и находилось в нижних пределах физиологической нормы (табл. 1-4).
Количество лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина и уровень гематокрита у цыплят 1-й опытной группы, получавших ветом 1.1 в течение 10 дней в дозе 75 мг на 1 кг массы раз в сутки, с повторным применением препарата через 20 дней, было выше аналогов из контроля на 20-е сутки исследования соответственно на 4,2; 14,4; 7,3 и 17,9 % (Р<0,01), на 40-е сутки – на 22; 29,4; 10,9 и 41,8 % и на 60-е сутки – на 15,7; 37,6; 11,9 и 21,1 %.
Таблица 1. Количество лейкоцитов в крови у подопытной птицы, 109/л
Группа | Возраст, сутки | |||
1 | 20 | 40 | 60 | |
Контрольная | 39,12±0,13 | 36,48±0,17 | 25,10±0,07 | 19,12±0,12 |
1-я опытная | 39,20±0,07 | 38,00±0,07*** | 30,70±0,20*** | 22,12±0,12*** |
2-я опытная | 39,08±0,06 | 35,86±0,35 | 30,34±0,28*** | 21,68±0,28*** |
3-я опытная | 39,14±0,13 | 38,12±0,06*** | 28,00±0,17*** | 20,88±0,48** |
Примечание здесь и далее: # P<0,1: * Р<0,05; ** Р<0,01; *** Р<0,001.
У цыплят 2-й опытной группы, получавших ветом 1.1 в течение 5 дней в дозе 75 мг на 1 кг массы раз в сутки, с повторным применением препарата через 5 дней, количество эритроцитов, гемоглобина и уровень гематокрита были выше аналогов из контроля на 20-е сутки исследования соответственно на 18,5 (Р<0,1); 5,3 (Р>0,1) и 13,2 % (Р<0,05), а лейкоцитов ниже на 1,7 % (Р>0,1).
Таблица 2. Количество эритроцитов в крови у подопытной птицы, 1012/л
Группа | Возраст, сутки | |||
1 | 20 | 40 | 60 | |
Контрольная | 2,12±0,11 | 1,94±0,10 | 2,18±0,15 | 2,18±0,15 |
1-я опытная | 2,06±0,17 | 2,22±0,16 | 2,82±0,39 | 3,00±0,20* |
2-я опытная | 2,34±0,12 | 2,22±0,06* | 2,10±0,07 | 2,88±0,35# |
3-я опытная | 2,20±0,13 | 2,30±0,15# | 2,12±0,13 | 2,92±0,10** |
На 40-е сутки опыта количество лейкоцитов и уровень гематокрита у цыплят-бройлеров 2-й опытной группы по сравнению с контролем были выше соответственно на 20,9 и 31,8 % (Р<0,001), а количество эритроцитов и гемоглобина ниже на 3,8 и 0,9 % (Р>0,1). Количество лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина и уровень гематокрита у цыплят 2-й опытной группы на 60-е сутки исследования были выше по сравнению с аналогами из контроля соответственно на 13,4 (Р<0,001); 32,1; 12 (Р<0,1); 14,6 % (Р<0,05).
Таблица 3. Содержание гемоглобина в крови у подопытной птицы, г/л
Группа | Возраст, сутки | |||
1 | 20 | 40 | 60 | |
Контрольная | 88,36±2,02 | 79,70±2,29 | 82,68±2,54 | 82,52±2,21 |
1-я опытная | 82,74±2,70 | 85,52±2,39 | 91,66±6,13 | 92,42±3,43* |
2-я опытная | 85,82±1,90 | 83,98±2,05 | 81,94±2,28 | 91,40±4,19# |
3-я опытная | 87,10±01,76 | 83,40±2,83 | 81,18±1,38 | 91,26±1,62* |
У цыплят-бройлеров 3-й опытной группы, получавших ветом 1.1, на 20-е сутки исследований содержание лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина и уровень гематокрита в крови были выше аналогов из контроля соответственно на 4,5 (Р<0,001); 18,5 (Р<0,1); 5,3 и 10,4 % (Р>0,1) на 40-е сутки опыта количество лейкоцитов и уровень гематокрита у цыплят-бройлеров 3-й опытной группы по сравнению с контролем были выше соответственно на 11,6 (Р<0,001) и 29,1 % (Р<0,01), а количество эритроцитов и гемоглобина ниже на 2,8 и 1,8 % (Р>0,1). На 60-е сутки исследований количество лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина и уровень гематокрита в крови у подопытных цыплят 3-й группы были выше аналогов из контроля соответственно на 8,8; 33,9 % (Р<0,01); 10,6 и 14,6 % (Р<0,05).
Таблица 4. Динамика показателей гематокрита у цыплят-бройлеров, %
Группа | Возраст, сутки | |||
1 | 20 | 40 | 60 | |
Контрольная | 20,0±2,17 | 21,2±0,66 | 22,0±0,89 | 24,6±1,33 |
1-я опытная | 20,6±2,01 | 25,0±0,84** | 31,2±1,36*** | 29,8±0,86* |
2-я опытная | 20,4±1,12 | 24,0±0,89* | 29,0±0,84*** | 29,0±0,63* |
3-я опытная | 19,6±1,60 | 23,4±1,36 | 28,4±1,08** | 28,2±0,73* |
Максимальный эффект получен при назначении ветома 1.1 в течение 10 дней в дозе 75 мг на 1 кг массы раз в сутки с повторным применением препарата через 20 дней. Так, цыплята-бройлеры 1-й опытной группы превышали исследуемые показатели аналогов из 2-й и 3-й опытных групп по содержанию лейкоцитов в крови соответственно на 1,2 и 8,8 %, эритроцитов – на 25,5 и 24,8 %, гемоглобина – на 11,9 и 12,4 %, гематокрита – на 7,1 и 9 %.
Анализ лейкограммы показал, что под влиянием ветома 1.1 изменялось процентное соотношение клеток белой крови, т.е. наблюдался медикаментозный лейкоцитоз (табл. 5).
В крови цыплят опытных групп увеличивалось содержание псевдоэозинофилов, лимфоцитов, моноцитов и уменьшалось количество эозинофилов. Содержание псевдоэозинофилов в крови было выше у цыплят-бройлеров 1-й, 2-й и 3-й опытных групп по сравнению с контролем соответственно на 20-е сутки исследования на 1,5; 2,2 и 0,7 % (Р>0,1); на 40-е сутки – на 0,8; 2 и 0,8% (Р>0,1) и 60-е сутки – на 1,6; 3,2 и 3,2 % (Р>0,1).
Содержание лимфоцитов в крови у цыплят-бройлеров 1-й, 2-й и 3-й опытных групп было выше аналогов из контроля соответственно на 20-е сутки исследования на 0,6; 0,3 и 0,6 % (Р>0,1); на 40-е сутки – на 0,3 %, (Р>0,1); на 60-е сутки число лимфоцитов в крови у цыплят-бройлеров 1-й, 2-й и 3-й опытных групп было на одном уровне с контролем.
Количество моноцитов в крови было выше у цыплят-бройлеров 1-й, 2-й и 3-й опытных групп по сравнению с контролем соответственно на 20-е сутки исследования на 7; 13,3 и 7 % (Р>0,1); на 40-е сутки – на 19 (Р>0,1); 25 (Р<0,01) и на 12,5 % (Р>0,1) и на 60-е сутки на 20; 13,3 и 13,3 % (Р>0,1).
Число эозинофилов в крови у подопытных цыплят 1-й, 2-й и 3-й групп во все сроки исследования было ниже аналогов из контроля соответственно на 20-е сутки исследования на 33; 41 % (Р<0,05) и 26,3 % (Р>0,1); на 40-е сутки – на 23,5; 31 (Р<0,01) и 17 % (Р>0,1); на 60-е сутки – на 33; 43 % (Р<0,01) и 33 %. Максимальный эффект получен при назначении ветома 1.1 в течение 10 дней в дозе 75 мг на 1 кг массы раз в сутки, с повторным применением препарата через 20 дней. С увеличением продолжительности применения ветома 1.1 происходит постепенное снижение эффективности действия, цыплята-бройлеры 2-й опытной группы превышали исследуемые показатели аналогов из 1-й и 3-й опытных групп по содержанию псевдоэозинофилов в крови соответственно на 0,7 и 0,7 %, моноцитов – на 5,3 и 11 %, а количество эозинофилов было ниже на 6,3 и 12,5 %.
Таблица 5. Динамика лейкограммы подопытных цыплят при применении ветома 1.1, %
Группа | Виды лейкоцитов | ||||
Б | Э | П | Л | М | |
1-е сутки | |||||
Контрольная | 1,4±0,24 | 3,2±0,20 | 25,2±2,10 | 68,0±2,12 | 2,2±0,22 |
1-я опытная | 1,4±0,24 | 3,0±0,32 | 25,4±3,27 | 68,2±1,24 | 2,0±0,00 |
2-я опытная | 1,2±0,20 | 3,2±0,20 | 25,6±3,78 | 67,8±1,14 | 2,2±0,22 |
3-я опытная | 1,4±0,24 | 3,2±0,37 | 25,2±2,10 | 68,2±1,56 | 2,0±0,00 |
20-е сутки | |||||
Контрольная | 1,6±0,27 | 4,8±0,42 | 27,0±0,35 | 63,6±0,27 | 3,0±0,35 |
1-я опытная | 1,8±0,22 | 3,6±0,27 | 27,4±0,27 | 64,0±0,00 | 3,2±0,22 |
2-я опытная | 1,8±0,22 | 3,4±0,27* | 27,6±0,27 | 63,8±0,22 | 3,4±0,27 |
3-я опытная | 1,8±0,22 | 3,8±0,22 | 27,2±0,22 | 64,0±0,35 | 3,2±0,55 |
40-е сутки | |||||
Контрольная | 1,6±0,27 | 4,2±0,22 | 26,6±0,27 | 64,2±0,22 | 3,2±0,22 |
1-я опытная | 1,6±0,27 | 3,4±0,27 | 26,8±0,22 | 64,4±0,45 | 3,8±0,22 |
2-я опытная | 1,4±0,27 | 3,2±0,22** | 27,0±0,00 | 64,4±0,27 | 4,0±0,00** |
3-я опытная | 1,6±0,57 | 3,6±0,27 | 26,8±0,42 | 64,4±0,76 | 3,6±0,27 |
60-е сутки | |||||
Контрольная | 2,0±0,00 | 4,0±0,35 | 25,0±0,00 | 65,8±1,14 | 3,0±0,00 |
1-я опытная | 2,2±0,20 | 3,0±0,00* | 25,4±0,27 | 65,8±0,22 | 3,6±0,27 |
2-я опытная | 2,2±0,42 | 2,8±0,22** | 25,8±0,00 | 65,8±0,89 | 3,4±0,27 |
3-я опытная | 2,0±0,00 | 3,0±0,61 | 25,8±0,22 | 65,8±0,82 | 3,4±0,27 |
* Р<0,05. ** Р<0,01.
Таким образом, под влиянием ветома 1.1 в крови цыплят-бройлеров опытных групп происходит повышение количества лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина и уровня гематокрита.
Выраженность этих изменений зависела от схемы применения препарата. Максимальное увеличение морфологических показателей крови в пределах физиологической нормы отмечали у цыплят 1-й опытной группы, которым ветом 1.1 назначали по 10 дней, двукратно с интервалом в 20 дней. Цыплята-бройлеры 1-й опытной группы на 40-е и 60-е сутки исследования превышали исследуемые показатели аналогов из 2-й и 3-й опытных групп по содержанию лейкоцитов в крови соответственно на 1,1 и 8,7; 1,9 и 5,6 %, эритроцитов – на 25,5 и 24,8 %; 4 и 2,7 %, гемоглобина – на 10,6 и 11,4 %; 1,1 и 1,3 %, гематокрита – на 7,1 и 8,9 %; 2,6 и 5,3 %.
С увеличением продолжительности применения ветома 1.1 происходит постепенное снижение эффективности действия. Так, у цыплят-бройлеров 3-й опытной группы, которым ветом назначали на 20-е сутки исследований, содержание лейкоцитов и эритроцитов в крови было выше аналогов из 2-й группы соответственно на 6,3 % и 3,6 %, а гемоглобина и уровень гематокрита ниже на 0,7 % и 2,6 %; на 40-е сутки опыта количество лейкоцитов, гемоглобина и уровень гематокрита были ниже соответственно на 8,4; 0,9; и 2,1 % и 60-е сутки – на 3,8; 0,2 и 2,8 %.
В отношении влияния пробиотиков на морфологические показатели крови цыплят в литературе имеются противоречивые данные. По сообщениям Г.Ф. Бовкуна и соавт., (1998) пробиотик бифинорм не влияет на морфологические показатели крови цыплят. Ряд других авторов (Иноземцев и соавт., 1998; Ноздрин и соавт., 2001) указывают на то, что пробиотик ветом 1.1 вызывал увеличение количества эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина у цыплят и телят. Результаты наших исследований согласуются с данными последних авторов.
Таким образом, повышение количества гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитов, уровня гематокрита в крови цыплят опытных групп в пределах верхних границ физиологических норм может свидетельствовать о том, что препарат стимулирует эритропоэз и лейкопоэз, не изменяя стабильности кроветворения и постоянства в составе и общем количестве периферической крови.
Проведенные нами исследования показали, что ветом 1.1 позитивно влияет на динамику количества лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина и уровень гематокрита.
5.2. Изменение морфологических показателей периферической крови у цыплят-бройлеров кросса «Иза» под влиянием ветома 3
Для определения влияния ветома 3 на морфологические показатели крови у цыплят-бройлеров кросса «Иза» научно-производственные опыты проводили в период с 1999 по 2001 г. на птицефабрике ЗАО «Октябрьская» Новосибирской области.
На цыплятах-бройлерах кросса «Иза» суточного возраста проведены 2 серии опытов. В 1-й серии сформировали 2 опытных и 1 контрольную группы по 78 в каждой. Цыплятам опытных групп изучаемый препарат назначали также внутрь по 75 мг на 1 кг живой массы 1 и 2 раза в сутки, через 24 ч в течение месяца. Цыплятам контрольной группы препарат не назначали.
Во 2-й серии опытов, так же как и в предыдущей, сформировали 2 опытных и 1 контрольную группу по 85 в каждой группе с той лишь разницей, что ветом 3 назначали 2 и 3 раза в сутки.
Цыплята опытных и контрольных групп находились в одном помещении при температурном режиме для соответствующего возраста (табл. 6) и относительной влажности воздуха (75-80) % в клеточных батареях Р 15, на сетчатых полах по 13 голов в клетке. Плотность посадки, фронт кормления и поения соответствовали зоогигиеническим нормам.
Кормили полноценным комбикормом, приготовленным на основе ячменно-пшеничной кормосмеси (ячмень, пшеница, шрот подсолнечника, шрот соевый, заменитель цельного молока, рыбная мука, премикс). Цыплятам с первых дней жизни в воду добавляли 1-2 г аскорбиновой кислоты и 50 г сахара (на 1 л). На 6-11-й и 21-25-й дни в воду добавляли серно-кислый марганец 100 г на 1т, на 5-10-й и 21-25-й дни в корм добавляли 250 г дрожжей и 500 г сахара на 40 л воды. Препарат перед применением смешивали с комбикормом и скармливали групповым методом.
Таблица 6. Температурный режим в птичнике и потребность цыплят в кормах и воде
Возраст, недель | Температура,˚С | Потребление корма в сутки на 1 голову, г | Потребление воды в сутки на 1 голову, мл |
1 | 31-32 | 30 | 52 |
2 | 29-31 | 60 | 107 |
3 | 28-29 | 88 | 153 |
4 | 22-28 | 115 | 197 |
5 | 21-22 | 139 | 243 |
6 | 18-21 | 159 | 278 |
При изучении влияния препарата на морфологические показатели крови подопытных цыплят подсчитывали количество эритроцитов, лейкоцитов, содержание гемоглобина и определяли лейкограмму.
Установлено, что морфологические показатели крови подопытных цыплят в начале опыта не имели достоверных различий и находились в пределах физиологической нормы (табл. 7).
Таблица 7. Показатели лейкограммы крови подопытных цыплят кросса «Иза» до применения препарата (кратность введения 1 и 2 раза в сутки), %
Показатели | Группа | |||||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | ||||
М±m | Cv | М±m | Cv | М±m | Cv | |
Базофилы | 3,6±0,17 | 2,9 | 3,8±0,2 | 2,9 | 3,8±0,12 | 2,9 |
Эозинофилы | 3,6±0,7 | 0,71 | 3,2±0,1 | 0,70 | 3,4±2,90 | 0,69 |
Псевдоэозинофилы | 69,0±3,9 | 20,0 | 69,5±3,9 | 21,0 | 69,5±3,9 | 20,2 |
Лимфоциты | 19,8±0,04 | 0,17 | 19,9±0,04 | 0,17 | 19,5±0,04 | 0,17 |
Моноциты | 4,0±0,05 | 1,65 | 3,6±0,05 | 1,65 | 3,8±0,05 | 1,65 |
При введении препарата цыплятам кросса ISA в дозе 75 мг/кг массы 1 и 2 раза в сутки через 24 ч в течение месяца на 20-й день исследований изменялось процентное соотношение клеток крови. У цыплят 1-й и 2-й опытных групп отмечали увеличение количества лимфоцитов по сравнению с аналогами из контроля по 0,5 %, псевдоэозинофилов - на 3,4 и 2,8 %. Количество эозинофилов было ниже на 8,8 и 5,9 %, моноцитов и базофилов на одном уровне с цыплятами из контрольной группы (табл. 8).
На 40-й день исследований количество лимфоцитов у цыплят 1-й и
2-й опытных групп было выше относительно контроля соответственно на 0,6 и 0,2 %. Количество эозинофилов в периферической крови в 1-й и 2-й опытных группах было в пределах физиологической нормы, но ниже показателей
Таблица 8. Показатели лейкограммы крови подопытных цыплят в 20-суточном возрасте (кратность введения 1 и 2 раза в сутки), %
Показатели | Группа | |||||
1-я опытная | 2-я опытная | Контрольная | ||||
М±m | Cv | М±m | Cv | М±m | Cv | |
Базофилы | 4,1±0,07 | 2,9 | 4,1±0,07 | 2,9 | 4,1±0,07 | 2,9 |
Эозинофилы | 3,1±0,03* | 0,37 | 3,2±0,2 | 0,56 | 3,4±0,07 | 0,7 |
Псевдоэозинофилы | 29,8±00,6* | 0,31 | 29,6±0,4 | 2,0 | 28,8±0,39 | 20,0 |
Лимфоциты | 56,9±0,03** | 0,37 | 56,9±0,03*** | 0,37 | 56,6±0,04 | 20,0 |
Моноциты | 6,1±0,05 | 1,65 | 6,1±0,5 | 1,65 | 6,1±0,6 | 1,65 |
цыплят из контрольной группы на 9,1 и 3,0 %. Количество псевдоэозинофилов в крови было на одном уровне с цыплятами из контрольной группы. Содержание базофилов в крови цыплят повышалось только во 2-й опытной группе на 2,3 %, моноцитов в 1-й и 2-й опытных группах относительно аналогов из контрольной группы, но данные не достоверны (табл. 9).
Таблица 9. Показатели лейкограммы крови подопытных цыплят в 40-суточном возрасте (кратность введения 1 и 2 раза в сутки), %
Показатели | Группа | |||||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | ||||
М±m | Cv | М±m | Cv | М±m | Cv | |
Базофилы | 4,2±0,06 | 3,59 | 4,3±0,06 | 3,59 | 4,2±0,06 | 3,59 |
Эозинофилы | 3,0±0,17 | 2,3 | 3,2±0,46 | 6,2 | 3,3±0,07 | 0,92 |
Псевдоэозинофилы | 24,1±0,7 | 0,54 | 24,1±0,07 | 0,54 | 24,1±0,07 | 0,54 |
Лимфоциты | 62,4±0,08# | 0,24 | 62,1±0,1 | 0,5 | 62,0±0,07 | 0,21 |
Моноциты | 6,4±0,01 | 0,2 | 6,4±0,01 | 0,2 | 6,3±0,01 | 0,2 |
В 40-суточном возрасте у цыплят 1-й и 2-й опытных групп по сравнению с аналогами из контроля в крови увеличивалось количество лейкоцитов соответственно на 2,3 и 1,0 %, эритроцитов - на 12,5 и 4,8 % и содержание гемоглобина - на 2,3 % только в 1-й опытной группе (табл. 10).
Таблица 10. Морфологические показатели крови цыплят-бройлеров в 40-суточном возрасте (кратность введения 1 и 2 раза в сутки)
Показатели | Группа | ||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | |
Эритроциты, 1012 /л | 2,79±0,17 | 89,0±0,33 | 2,48±0,04 |
Гемоглобин, г/л | 91,1±0,34 | 2,60±0,26 | 89,0±0,34 |
Лейкоциты, 109 /л | 30,7±0,4 | 30,3±0,11 | 30,0±0,7 |
При повторном применении ветома 3 цыплятам кросса ISA 2 и 3 раза в сутки через 24 ч в течение месяца морфологические показатели крови у подопытных цыплят до назначения препарата были также в пределах физиологической нормы (табл. 11).
Таблица 11. Показатели лейкограммы крови цыплят-бройлеров кросса «Иза» до применения препарата (кратность введения 2 и 3 раза в сутки), %
Показатели | Группа | |||||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | ||||
М±m | Cv | М±m | Cv | М±m | Cv | |
Базофилы | 3,8±0,07 | 2,9 | 3,9±0,07 | 2,9 | 3,9±0,07 | 2,9 |
Эозинофилы | 3,2±0,07 | 0,7 | 3,0±0,07 | 0,7 | 3,0±0,07 | 0,7 |
Псевдоэозинофилы | 68,4±0,04 | 0,17 | 68,5±0,04 | 0,17 | 68,7±0,04 | 0,17 |
Лимфоциты | 20,8±3,9 | 20,0 | 20,8±3,9 | 20,0 | 20,7±3,9 | 20,0 |
Моноциты | 3,8±1,5 | 1,65 | 3,8±2,05 | 1,65 | 3,7±0,05 | 1,65 |
На 20-е сутки исследований в периферической крови у цыплят 1-й и 2-й опытных групп по сравнению с контролем увеличилось количество лимфоцитов на 0,2 %, псевдоэозинофилов на - 0,4 и 2,4 %. Количество эозинофилов в крови цыплят 1-й и 2-й опытных групп было ниже на 8,8 и 17,6 % относительно аналогов из контрольной группы (табл. 12 ).
На 40-й день исследований цыплята 1-й и 2-й опытных групп превышали показатели аналогов из контроля по содержанию в периферической крови псевдоэозинофилов на 0,8 и 2,9 %, лимфоцитов только у цыплят 1-й опытной группы на 0,8%. По количеству эозинофилов в крови цыплята контрольной группы превышали показатели опытных групп на 9,1%. Содержание базофилов и моноцитов в крови у цыплят 1-й и 2-й опытных групп было на одном уровне и ниже аналогов из контроля (табл. 13).
Таблица 12. Показатели лейкограммы крови подопытных цыплят в 20-суточном возрасте (кратность введения 2 и 3 раза в сутки), %
Показатели | Группа | |||||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | ||||
М±m | Cv | М±m | Cv | М±m | Cv | |
Базофилы | 4,0±0,07 | 4,0±0,07 | 2,9 | 2,9 | ||
Эозинофилы | 3,1±0,03* | 0,37 | 2,8±0,07 | 0,7 | 3,4±0,07 | 0,7 |
Псевдоэозинофилы | 29,4±0,03*** | 0,07 | 30,0±0,03*** | 0,06 | 29,3±0,03 | 0,07 |
Лимфоциты | 57,5±0,06 | 0,31 | 57,5±0,4 | 2,0 | 57,4±0,39 | 20,0 |
Моноциты | 6,0±0,05 | 0,73 | 5,7±0,05 | 0,72 | 5,9±0,05 | 0,80 |
Таблица 13. Показатели лейкограммы крови подопытных цыплят в 40-суточном возрасте (кратность введения 2 и 3 раза в сутки), %
Показатели | Группа | |||||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | ||||
М±m | Cv | М±m | Cv | М±m | Cv | |
Базофилы | 4,0±0,06 | 3,59 | 4,0±0,06 | 3,59 | 4,0±0,06 | 3,59 |
Эозинофилы | 3,0±0,05* | 0,74 | 3,0±0,06# | 0,89 | 3,3±0,07 | 0,97 |
Псевдоэозинофилы | 24,0±0,07* | 0,15 | 24,5±0,07* | 0,16 | 23,8±0,07 | 0,16 |
Лимфоциты | 63,0±0,08 | 0,24 | 62,5±0,001 | 0,5 | 62,5±0,07 | 0,21 |
Моноциты | 6,0±11,2 | 0,2 | 6,0±0,01 | 0,2 | 6,4±0,01 | 0,2 |
Изучаемые морфологические показатели у цыплят 1-й и 2-й опытных групп при введении препарата кратностью 2 и 3 раза в сутки через 24 ч в течение месяца находились в пределах физиологической нормы.
В 40-суточном возрасте у цыплят 1-й и 2-й опытных групп по сравнению с аналогами из контроля в крови увеличивалось количество лейкоцитов соответственно на 2,2 и 3,5%, эритроцитов - на 4,2 и 11,5 % и содержание гемоглобина - на 7,5 и 8,9 % (табл. 14).
Таблица 14. Морфологические показатели крови цыплят-бройлеров
в 40-суточном возрасте (кратность введения 2 и 3 раза в сутки)
Показатели | Группа | ||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | |
Эритроциты, 1012 /л | 2,71±0,04 | 2,90±0,08 | 2,60±0,4 |
Гемоглобин, г/л | 92,7±0,2 | 93,9±0,07 | 86,2±0,11 |
Лейкоциты, 109/л | 31,7±0,32 | 32,1±0,31 | 31,0±0,09 |
Таким образом, под влиянием ветома 3 у цыплят-бройлеров кросса «Иза» изменяется процентное соотношение форменных элементов крови. У цыплят опытных групп отмечали увеличение в крови эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, лимфоцитов, псевдоэозинофилов и снижение количества эозинофилов по сравнению с аналогами из контрольной группы. Выраженность этих изменений зависела от кратности и продолжительности назначения ветома 3.
При применении ветома 3 в дозе 75 мг/кг 1 раз в сутки в течение месяца отмечали незначительное повышение количества лимфоцитов в 20- и 40-дневном возрасте, псевдоэозинофилов - только в 20-дневном. Количество эозинофилов было ниже показателей из контрольной группы в 20- и 40-дневном возрасте. В крови цыплят опытных групп незначительно увеличивалось количество лейкоцитов, эритроцитов и содержание гемоглобина.
При скармливании препарата в дозе 75 мг/кг массы 2 раза в сутки в течение месяца количественное изменение лимфоцитов было выше, чем у цыплят контрольной группы в 20- и 40-дневном возрасте, псевдоэозинофилов только в 20-дневном возрасте. Количество эозинофилов у опытных цыплят было ниже показателей аналогов из контрольной группы. Увеличение количества лейкоцитов, эритроцитов и содержание гемоглобина были более выражены.
При применении препарата в дозе 75 мг/кг массы 3 раза в сутки через 24 ч в течение месяца происходили более выраженные изменения форменных элементов крови. Цыплята этой опытной группы превышали показатели аналогов из других опытных групп, которым препарат вводили 1 и 2 раза в сутки, по количеству лимфоцитов в 20-суточном возрасте на 1,0 % и в 40-суточном - на 0,6 и 0,1 %, псевдоэозинофилов в 20-суточном - на 1,3 и 0,6 % и в 40-суточном - на 1,6 %. Количество эозинофилов у цыплят этой опытной группы было ниже в 20-суточном возрасте на 14,2 и 10,7 %, в 40-суточном возрасте, только при однократном введении, на 6,6 % относительно цыплят-аналогов из других опытных групп. Следовательно, оптимальные результаты получены при назначении ветома 3 в дозе 75 мг/кг 3 раза в сутки через 24 ч в течение месяца.
Результаты наших исследований свидетельствуют о том, что ветом 3 оказывает позитивное влияние на лейкопоэз и эритропоэз у цыплят кросса «Иза», а также на окислительно-восстановительные реакции в организме, стимулирует клеточные факторы иммунитета. Характер и выраженность изменений в большей степени зависели от кратности применения препарата и в меньшей - от индивидуальных особенностей организма.
5.3. Изменение морфологических показателей периферической крови у цыплят-бройлеров кросса «Бройлер-6» под влиянием ветома 3
Для определения влияния ветома 3 на морфологические показатели крови цыплят-бройлеров кросса «Бройлер-6» из цыплят суточного возраста по принципу аналогов сформировали четыре опытных и одну контрольную группы по 90 в каждой группе. Цыплятам опытных групп препарат назначали внутрь в дозе по 75 мг на 1 кг живой массы 3 раза в сутки соответственно 7 дней подряд, циклами по 3 суток с 3-дневным перерывом 5 раз, через 24 ч в течение месяца и через 24 ч в течение 14 дней.
При 3-кратном применении препарата цыплятам кросса «Бройлер-6» с использованием различных схем показатели в опытных и контрольной группах до назначения препарата не имели достоверных различий и соответствовали физиологической норме для данного возраста (табл. 15).
К 20-суточному возрасту у цыплят 1, 2, 3 и 4-й опытных групп зарегистрировано достоверное увеличение числа лимфоцитов крови на 0,9; 1,0; 1,4; 0,7 % по сравнению с аналогами из контроля. Содержание псевдоэозинофилов в крови у цыплят 2–й, 3-й и 4-й опытных групп находилось на одном уровне с аналогами из контрольной группы, а в 1-й опытной снижалось на 4,1 %. По сравнению с контролем происходило снижение числа эозинофилов крови во 2-й, 3-й и 4-й опытных группах соответственно на 16,7; 16,7; 27,8 %, а у цыплят 1-й опытной группы было выше аналогов из контроля на 11,1 %. В крови цыплят 2-й и 4-й опытных групп регистрировалось достоверное увеличение моноцитов по сравнению с контролем на 1,9 и 3,8 % (табл. 16).
Таблица 15. Морфологические показатели крови подопытных цыплят в начале опыта , %
Показатель | Группа | |||||||||
1-я опытная | 2-я опытная | 3-я опытная | 4-я опытная | контрольная | ||||||
M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | |
Базофилы | 4,1±0,7 | 0,3 | 4,3±0,37 | 38,0 | 4,3±0,2 | 24,9 | 4,5±0,42 | 0,0 | 4,1±0,27 | 0,0 |
Псевдоэозинофилы | 64,2±0,32 | 2,4 | 65,2±0,2 | 1,5 | 65,6±0,51 | 4,0 | 65,2±0,4 | 3,0 | 65,4±0,32 | 2,4 |
Эозинофилы | 3,0±0,32 | 7,1 | 3,4±0,32 | 7,1 | 3,2±0,32 | 7,1 | 3,0±0,0 | 0,0 | 3,4±0,0 | 0,0 |
Лимфоциты | 23,7±0,32 | 1,4 | 21,9±0,24 | 1,0 | 21,9±0,24 | 1,0 | 21,9±0,37 | 1,6 | 22,0±0,24 | 1,1 |
Моноциты | 5,0±0,2 | 6,6 | 5,2±0,32 | 10,1 | 5,0±0,32 | 10,1 | 5,4±0,37 | 11,6 | 5,1±0,0 | 0,0 |
Таблица 16. Морфологические показатели крови подопытных цыплят на 20-й день опыта, %
Показатель | Группа | |||||||||
1-я опытная | 2-я опытная | 3-я опытная | 4-я опытная | контрольная | ||||||
M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | |
Базофилы | 4,3±0,32# | 23,6 | 3,8±0,9 | 0,0 | 3,7±0,2 | 20,3 | 4,3±0,2# | 15,9 | 3,9±0,32 | 35,4 |
Псевдо- эозинофилы | 28,2±0,37*** | 3,2 | 29,4±0,0 | 0,0 | 29,4±0,32 | 2,8 | 29,4±0,49 | 4,1 | 29,4±0,32 | 2,4 |
Эозинофилы | 4,0±0,32*** | 10,1 | 3,0±0,32** | 10,1 | 3,0±0,32# | 8,8 | 2,6±0,32** | 10,1 | 3,6±0,32 | 7,9 |
Лимфоциты | 58,4±0,2*** | 1,7 | 58,5±0,32*** | 1,2 | 58,7±0,32*** | 1,2 | 58,3±0,45* | 1,9 | 57,9±0,24 | 1,1 |
Моноциты | 5,1±0,32* | 8,8 | 5,3±0,32# | 1,8 | 5,2±0,32# | 11,8 | 5,4±0,24*** | 6,4 | 5,2±0,2 | 6,6 |
Таблица 17. Морфологические показатели крови подопытных цыплят на 40-й день опыта, %
Показатель | Группа | |||||||||
1-я опытная | 2-я опытная | 3-я опытная | 4-я опытная | контрольная | ||||||
M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | M±m | Cv | |
Базофилы | 4,1±0,32# | 23,6 | 3,9±0,9 | 0,0 | 3,9±0,2 | 20,3 | 4,3±0,2# | 15,9 | 4,0±0,32 | 35,4 |
Псевдо- эозинофилы | 24,9±0,37*** | 3,2 | 25,4±0,0*** | 0,0 | 25,2±0,32*** | 2,8 | 25,0±0,49*** | 4,1 | 25,4±0,32 | 2,4 |
Эозинофилы | 4,0±0,32*** | 10,1 | 3,0±0,32** | 10,1 | 2,6±0,32# | 8,8 | 3,0±0,32** | 10,1 | 3,6±0,32 | 7,9 |
Лимфоциты | 60,8±0,2*** | 1,3 | 61,4±0,32*** | 1,2 | 61,9±0,32*** | 1,2 | 61,5±0,45* | 1,9 | 60,8±0,24 | 1,1 |
Моноциты | 6,2±0,32* | 8,8 | 6,3±0,32# | 1,8 | 6,4±0,32# | 11,8 | 6,2±0,24*** | 6,4 | 6,2±0,2 | 6,6 |
На 40-й день исследований количество лимфоцитов крови у цыплят 2-й, 3 и 4-й опытных групп было достоверно выше на 0,9; 1,8; 1,2 % по сравнению с контрольной группой. Количественное содержание псевдоэозинофилов у цыплят 2-й опытной группы было на уровне, а в 1-й, 3-й и 4-й ниже аналогов из контроля соответственно на 2,0; 0,8; 1,6 %. Также происходило снижение числа эозинофилов в пределах физиологической нормы у цыплят 2-й, 3-й и 4-й опытных групп на 16,7; 27,8; 16,7 %, а в 1-й этот показатель был выше, чем в контроле. Содержание моноцитов крови у цыплят 1-й и 4-й групп было на уровне с контролем, а у цыплят 2-й и 3-й выше аналогов из контроля соответственно на 1,6 и 3,2 % (табл. 17).
Таким образом, изменения морфологических показателей в периферической крови у цыплят кросса «Бройлер-6» зависели от схем и продолжительности применения препарата.
При применении ветома 3 цыплятам кросса «Бройлер-6» 3 раза в сутки 7 дней подряд отмечали незначительное повышение лимфоцитов крови только в 20-дневном возрасте. Содержание эозинофилов в крови было выше аналогов из контроля.
При назначении препарата 3 раза в сутки 3 дня подряд, с 3-дневным перерывом, с повтором цикла 5 раз количество лимфоцитов и моноцитов в крови у цыплят повышалось в 20- и 40-суточном возрасте.
При применении препарата 3 раза в сутки через 24 ч в течение месяца отмечали максимальное увеличение количества лимфоцитов в 20- и 40-суточном возрасте, моноцитов - только в 40-суточном.
При скармливании препарата 3 раза в сутки через 24 ч в течение 2 недель у опытных цыплят также происходило повышение количества лимфоцитов в 20- и 40-суточном возрасте, но эти изменения были менее выражены. Во 2-й, 3-й и 4-й опытных группах количество эозинофилов в крови понижалось в 20- и 40-суточном возрасте относительно аналогов из контроля.
Выраженные изменения содержания лимфоцитов в периферической крови отмечали у цыплят, получавших ветом 3 по схеме 3 раза в сутки по 75 мг/кг массы через 24 ч в течение месяца. Цыплята 3-й опытной группы на 20-й день исследований по содержанию в крови лимфоцитов превышали показали цыплят-аналогов из 1, 2 и 4-й опытных групп соответственно на 0,5, 0,3 и 0,6 %, на 40-й день исследований – на 1,8; 0,8 и 0,7 %. Содержание эозинофилов в периферической крови цыплят 3-й опытной группы в 20- и 40- суточном возрасте было на уровне и ниже аналогов из других опытных групп.
Таким образом, под влиянием ветома 3 у цыплят-бройлеров кросса «Бройлер-6», так же как и у цыплят кросса «Иза», изменяется процентное соотношение форменных элементов крови. У цыплят опытных групп отмечали увеличение в крови лимфоцитов, псевдоэозинофилов и снижение количества эозинофилов по сравнению с аналогами из контрольной группы. Увеличение лимфоцитов в крови у цыплят опытных групп регистрировали не только при применении препарата, но и в период последействия. Причем эти изменения у подопытных цыплят были выше аналогов из контрольной группы и в завершающий период опыта.
По-видимому, ветом 3 оказывает стимулирующее влияние на клеточные факторы иммунитета. В крови цыплят опытных групп увеличивалось количество лимфоцитов и псевдоэозинофилов.
Лимфоциты принимают участие в адекватном ответе организма на антиген, определяют состояние клеточного иммунитета и имеют существенное значение в первичной защите организма от инфекционных агентов. Лимфоциты также обладают свойством фиксировать токсины и оказывать антитоксическое действие.
Псевдоэозинофилы являются основными клетками крови, защищающими организм от инфекционно-токсических воздействий. Увеличение числа псевдоэозинофилов в крови свидетельствует об усилении фагоцитоза в организме. Они активно участвуют в процессе фагоцитоза благодаря наличию протеолитических ферментов. Специфичность дыхания псевдоэозинофилов заключается в том, что поглощаемый кислород преимущественно используется для генерации его химически активных форм, обладающих сильным антибиотическим действием в отношении патогенных и условно-патогенных бактерий (Slater, 1976).
У цыплят опытных групп происходит уменьшение в крови количества эозинофилов в пределах физиологической нормы. Поскольку эозинофилы участвуют в аллергических реакциях, можно предполагать, что препарат обладает антиаллергическим действием. Уменьшение количества эозинофиллов в крови цыплят опытных групп также указывает на отсутствие аллергических реакций в организме цыплят на введение препарата.
Отсутствие изменений в поведенческих реакциях птицы и проявлении аллергических реакций после введения препарата, а также тот факт, что все изменения состава крови и гуморальных факторов неспецифической резистентности находились в пределах физиологических норм, подтверждает отсутствие побочных действий у ветома 3. Наши данные подтверждают результаты исследований А.А. Ивановского (1996) об отсутствии негативного влияния пробиотиков на физиологические процессы в организме животных.
Таким образом, ветом 3 является эффективным средством для стимуляции гуморальных, клеточных факторов иммунитета и повышения уровня неспецифической резистентности организма цыплят. О повышении неспецифической резистентности организма также свидетельствует более высокая устойчивость цыплят к действию неблагоприятных факторов внешней среды. Сохранность цыплят опытных групп была выше по сравнению с аналогами из контрольной группы.
Таким образом, анализируя результаты наших исследований, мы пришли к заключению, что изучаемые препараты (ветом 1.1 и ветом 3) вызывают аналогичные изменения морфологических показателей крови. В реакции организма цыплят на ветом 1.1 и ветом 3 нами установлены определенные закономерности, проявление которых преимущественно зависело от кратности и продолжительности применения препарата и в меньшей степени от индивидуальных, возрастных и породных особенностей цыплят-бройлеров.
Полученные нами данные могут свидетельствовать о стимуляции изучаемыми препаратами клеточных факторов иммунитета у цыплят в пределах верхних границ физиологической нормы. В крови цыплят опытных групп увеличивалось содержание псевдоэозинофилов, лимфоцитов и моноцитов. Эти изменения больше выражены в период их назначения. В период последействия препарата происходят менее выраженные изменения процессов позитивного характера. Об этом свидетельствуют полученные нами данные на 40-й день исследований. В крови цыплят опытных групп если и регистрировали увеличение моноцитов, псевдоэозинофилов и лимфоцитов, то в незначительной степени.
Динамика возрастных изменений соответствовала физиологическим нормам для цыплят-бройлеров данного возраста.
Следовательно, можно предполагать, что применение ветома 1.1 и ветома 3, особенно 3 раза в сутки в течение месяца, цыплятам с первых дней жизни способствует повышению уровня неспецифической резистентности. Увеличение числа псевдоэозинофилов в лейкограмме свидетельствует об усилении фагоцитарной функции, а понижение количества эозинофилов в пределах физиологической нормы является признаком отсутствия аллергических реакций в организме цыплят на введение препаратов. Увеличение числа лимфоцитов способствует повышению реакций специфического иммунитета и может свидетельствовать о повышении клеточных факторов иммунитета.
6. Биохимические показатели крови при применении пробиотика
6.1. Изменение биохимических показателей периферической крови под влиянием ветома 1.1
Белки сыворотки крови являются компонентами динамической циркулирующей системы и отражают физиолого-биохимические особенности организма в целом. Они принимают участие в питании тканей, формировании иммунитета при инфекциях и инвазиях, поддержании pH и осмотического давления (Малахов и соавт., 1984; Кондрахин, 1985). Для изучения влияния ветома 1.1 на биохимические показатели крови были сформированы 3 опытных и контрольная группы. Цыплятам опытных групп ветом 1.1 назначали с кормом в дозе 75 мг на 1 кг массы 1 раз в сутки до конца периода выращивания с использованием трех схем. В 1-й опытной группе двукратно – по 10 дней подряд, с интервалом в 20 дней, во 2-й опытной группе – 5-дневными циклами, с интервалом между назначением 5 дней, всего 5 циклов, в 3-й опытной группе – через 24 ч до завершения эксперимента. В контрольной группе препарат не применяли.
Для изучения действия препарата в динамике кровь у цыплят брали в 1-е сутки жизни и затем на 20, 40 и 60-е сутки непосредственно из сердца по методике Б.А. Шестеркина (1972) или из крыловой вены. Биохимические исследования включали определение общего белка рефрактометрическим методом и белковых фракций - нефелометрическим.
Результаты наших исследований свидетельствуют об изменении содержания общего белка и белковых фракций в сыворотке крови подопытных цыплят под влиянием ветома 1.1 (табл. 18, 19).
Таблица 18. Количество общего белка в сыворотке крови подопытных цыплят-бройлеров, г/л
Группа | Возраст, сутки | |||
1 | 20 | 40 | 60 | |
Контрольная | 24,9±0,09 | 24,9±0,09 | 32,8±0,27 | 40,7±0,05 |
1-я опытная | 24,0±0,00 | 25,8±0,11 | 39,8±0,04 | 41,6±0,00 |
2-я опытная | 24,9±0,09 | 25,8±0,11 | 40,3±0,05* | 41,6±0,00 |
3-я опытная | 24,9±0,09 | 25,8±0,11 | 39,4±0,00* | 41,6±0,00 |
До применения ветома 1.1 в сыворотке крови суточных цыплят опытных и контрольной групп количество общего белка, белковых фракций не имело достоверных различий и было в нижних приделах физиологических норм.
У цыплят опытных групп на 20-е сутки исследований содержание общего белка в сыворотке крови было выше аналогов из контроля на 3,5 %, на 40-е сутки - соответственно на 21,5; 22,8 и 20,1 % (Р<0,05), на 60-е - на 2,2%, но разность статистически недостоверна.
Таблица 19. Содержание белковых фракций в сыворотке крови подопытных цыплят-бройлеров, %
Группа | Возраст, сутки | |||||||||
1 | 20 | 40 | 60 | |||||||
Альбумины, % | ||||||||||
Контрольная | 37,12±1,47 | 35,55±1,34 | 40,86±1,70 | 45,92±1,45 | ||||||
1-я опытная | 37,43±1,32 | 36,28±1,46 | 38,54 ±1,21 | 49,5±0,41 | ||||||
2-я опытная | 37,49±2,55 | 35,88±1,10 | 38,76±1,30 | 49,46±0,19 | ||||||
3-я опытная | 36,56±1,24 | 37,56±1,92 | 39,42±1,20 | 47,33±0,88 | ||||||
a-глобулины, % | ||||||||||
Контроль | 46,55±3,58 | 48,27±5,31 | 36,62±0,31 | 29,46±1,18 | ||||||
1-я опытная | 46,30±3,79 | 45,93±2,80 | 32,56±0,86* | 23,78±1,43* | ||||||
2-я опытная | 46,78±3,39 | 43,37±3,99 | 30,36±2,32 | 22,77±1,00* | ||||||
3-я опытная | 46,52±3,31 | 43,44±3,95 | 32,78±4,16 | 26,42±0,72 | ||||||
b-глобулины, % | ||||||||||
Контрольная | 4,77±0,80 | 6,60±0,15 | 7,76±0,17 | 6,63±0,14 | ||||||
1-я опытная | 4,00±0,91 | 7,24±0,91 | 9,58±0,41* | 8,44±0,61# | ||||||
2-я опытная | 4,20±0,77 | 7,32±0,30 | 9,83±0,41* | 8,44±0,45* | ||||||
3-я опытная | 4,77±0,80 | 7,22±0,57 | 8,48±0,75 | 7,71±0,44 | ||||||
g-глобулины, % | ||||||||||
Контроль | 11,55±1,69 | 9,58±0,62 | 14,75±0,58 | 17,99±0,84 | ||||||
1-я опытная | 12,26±3,01 | 10,55±0,48 | 19,32±0,59* | 18,28±0,94 | ||||||
2-я опытная | 11,52±1,98 | 13,42±1,07* | 21,04±1,5** | 19,32±0,16 | ||||||
3-я опытная | 12,15±1,52 | 11,77±0,52 | 19,38±0,58** | 18,54±0,99 | ||||||
Анализ полученных данных свидетельствует, что содержание альбуминов в сыворотке крови у подопытных цыплят 1-й, 2-й и 3-й групп на 20-е сутки исследований было выше показателей аналогов из контроля соответственно на 2; 0,9 и 5,7 % (табл. 19).
На 40-е сутки содержание альбуминов у подопытных цыплят 1-й, 2-й и 3-й групп было ниже аналогов из контроля соответственно на 6; 5,4 и 3,7 %, на 7,8; 7,7 и 3,1 %.
У цыплят-бройлеров 1-й, 2-й и 3-й опытных групп содержание a-глобулинов в сыворотке крови в течение опыта было ниже аналогов из контроля. Так, на 20-е сутки исследований - соответственно на 5; 11,3 и 11 %, на 40-е - на 12,5 (Р<0,05); 21 и 11,7 %, на 60-е - на 24; 29,4 (Р<0,05) и 11,5 %. Содержание b-глобулинов в сыворотке крови цыплят-бройлеров 1-й, 2-й и 3-й опытных групп на 20-е сутки исследований было выше по сравнению с контролем соответственно на 9,7; 11 и 9,4 %, на 23,5; 27 (Р<0,05) и 9,3 %, на 60-е - 27,3 (Р<0,1); 27,3 (Р<0,05) и 16,3 %.
У цыплят-бройлеров 1-й, 2-й и 3-й опытных групп в сравнении с аналогами из контроля отмечали тенденцию к увеличению g-глобулинов в течение всего срока наблюдений (см. табл. 19): на 20-е сутки исследований - соответственно на 10; 40 (Р<0,05) и 23 %, на 40-е - на 31 (Р<0,05); 42,6 и 31,4 % (Р<0,01), на 60-е - на 1,6; 7,4 и 3 %.
Количество общего белка в сыворотке крови цыплят кросса «Иза» 1-й и 2-й опытных групп, получавших ветом 3 в дозе 75 мг на 1 кг массы 1 и 2 раза в сутки через 24 ч в течение месяца, относительно контроля было ниже соответственно на 28,0 и 35,4 %.
Таблица 20. Количество общего белка в сыворотке крови подопытных цыплят-бройлеров Кросса ISA, г/л
Группа | |||||
1-я опытная | 2-я опытная | контрольная | |||
М±m | Сv | М±m | Сv | М±m | Сv |
2000 г. | |||||
40,18±0,07*** | 0,24 | 36,06±0,06# | 0,18 | 55,8±0,08 | 0,28 |
2001 г. | |||||
56,8±0,13** | 4,17 | 56,2±0,1*** | 0,1 | 49,4±0,133 | 4,67 |
Во 2-й серии опытов содержание общего белка в сыворотке крови цыплят 1-й и 2-й опытных групп при скармливании препарата в дозе 75 мг на 1 кг массы 2 и 3 раза в сутки через 24 ч в течение месяца превышало показатели цыплят из контрольной группы соответственно на 13,0 и 12,1 %.
Таким образом, ветом 1.1 вызывает некоторое увеличение содержания общего белка, альбуминов, b-глобулинов, g-глобулинов в сыворотке крови подопытных цыплят-бройлеров.
Выраженность этих изменений зависит от схемы применения препарата. Максимальный эффект достигнут при применении препарата 5-дневными циклами с интервалом 5 дней в дозе 75 мг на 1 кг массы ежедневно до конца периода выращивания. Так, цыплята-бройлеры 2-й опытной группы превышали показатели аналогов из 1-й и 3-й опытных групп по содержанию общего белка в сыворотке крови на 40-е сутки соответственно на 1,2 и 2,2 %, b-глобулинов – на 2,5 и 13,7 %, g-глобулинов – на 8,2 и 7,9 %, а количество a-глобулинов было ниже соответственно на 7,2 и 7,9 %.
Наши результаты не согласуются с данными Г.Ф. Бовкуна и соавт. (1998), которые при экспериментальной колонизации бифинормом кишечника цыплят не наблюдали увеличение сывороточного белка крови, но согласуются с результатами исследований В.П. Иноземцева и соавт. (1998), Б.Н. Тараканова и соавт. (1999), И.В. Наумкина и соавт. (1999), которые отмечали увеличение содержания общего белка крови, b-глобулинов и g-глобулинов под действием пробиотиков. В первый период наших исследований происходило более выраженное увеличение альбуминов с последующим постепенным их уменьшением во 2-й период исследования, что согласуется с результатами А.В. Чечеткина и соавт. (1982), которые отмечали, что с возрастом в крови всех животных постепенно снижается относительное содержание альбуминов и нарастает количество глобулинов преимущественно за счет g-глобулиновой фракции. Как указывают Т.Т. Березов и соавт. (1982), большая часть антител, содержащихся в сыворотке крови, находится во фракции g-глобулинов, а уменьшение содержания белков этой фракции резко снижает защитные силы организма. Следовательно, результаты наших исследований свидетельствуют об увеличении неспецифической резистентности цыплят-бройлеров под влиянием ветома 1.1.
Как известно из литературных источников, белки острой фазы – это группа белков, большинство из которых входит в группу a-глобулинов. Их концентрация возрастает в остром периоде многих заболеваний, а также при хронических процессах, когда имеет место воспаление в результате инфекции, аллергии или деструкции. В наших исследованиях содержание a-глобулинов в сыворотке крови цыплят-бройлеров опытных групп в течение эксперимента было ниже аналогов из контроля, на основании этого можно предположить, что ветом 1.1 не обладает аллергическим действием и профилактирует возникновение инфекций.
Самая богатая липидами группа белков – это b-глобулины. Помимо липопротеидов, к b-глобулинам относят переносчика железа трансферрин. Основная физиологическая функция трансферрина – переносить трехвалентное железо в депо (печень, селезенку), а оттуда к рецепторам, расположенным на поверхности гемсинтезирующих клеток. Этим можно объяснять увеличение содержания b-глобулинов и гемоглобина в крови подопытных цыплят-бройлеров под влиянием ветома 1.1.
Следовательно, результаты наших исследований свидетельствуют о позитивном влиянии изучаемого препарата на биохимические показатели крови. Увеличение g-глобулиновой фракции белка является показателем повышения неспецифической резистентности организма. Ветом 1.1 увеличивая в крови содержание g-глобулинов, повышает уровень неспецифической резистентности.
