Биологически активные добавки к пище (БАД)  

   

Косметические гели серии Биосептин  

   

Парфюмерно-косметическая продукция  

   

“СОГЛАСОВАНО”
Директор
ООО Научно-производственная
фирма “Исследовательский центр”

Леляк А.И.

“УТВЕРЖДАЮ”
Ректор НГАУ
доктор тех. наук, профессор

Кондратов А.Ф.

 

ОТЧЕТ

по научно-исследовательской работе на тему: “Применение препаратов – пробиотиков Ветом 1.1. и Ветом 3 в птицеводстве”

 

 

Научный руководитель:
Ноздрин Григорий Антонович,
доктор ветеринарных наук, профессор

 

Новосибирск 2001

 

Список исполнителей

Научный руководитель - заведующий кафедрой фармакологии и общей патологии доктор ветеринарных наук, профессор

Ноздрин Г.А.

Студент факультета ветеринарной медицины НГАУ

Иванова А.Б.

Научный сотрудник

Ноздрин А.Г.

доцент кафедры фармакологии и общей патологии НГАУ, главный врач клиники

Шмидт Ю.Д.

Студент факультета ветеринарной медицины НГАУ

Ваймер О.Г.

 

Содержание

Введение

Обзор литературы.

1.1. Естественная резистентность, иммунологическая реактивность и факторы на них влияющие.
1.2. Распространенность и применяемые схемы коррекции гиповитаминозов в промышленном птицеводстве.
1.3. Схемы коррекции микро- и макроэлементозов, применяемые в промышленном птицеводстве
1.4. Применение пробиотиков в птицеводстве.
2. Собственные исследования.
2.1. Материалы и методы исследования.
2.2. Результаты собственных исследований.
2.2.1. Применение препарата Ветом 1.1.в птицеводстве с ростостимулирующей и профилактической целью.
2.2.2. Влияние препарата Ветом 1.1 на биохимические показатели крови кур.
2.2.3. Применение препарата Ветом 1.1. при микро- и макроэлементозах.
2.2.4. Применение препарата Ветом 1.1. при гиповитаминозе.
2.2.5. Влияние препарата Ветом 3 на рост, развитие и сохранность цыплят-бройлеров.
2.2.6. Влияние препарата Ветом 3 на качественный и количественный состав микрофлоры в кишечнике цыплят.
2.2.7. Влияние препарата Ветом 3 на морфологические показатели крови у цыплят.
3. Выводы и предложения.
4. Список использованной литературы.

ВВЕДЕНИЕ

Одной из важных проблем птицеводства в настоящее время является обеспечение высокой рентабельности производства, на которую среди прочих факторов влияет и эффективность работы ветеринарной медицины.

Интенсивное выращивание птицы в условиях высокой концентрации поголовья и вредного воздействия факторов техногенного характера сопровождается существенным снижением уровня резистентности организма, увеличением заболеваемости и летальности 50, 61, 73] . Наиболее распространенные на территории Российской Федерации в настоящее время заболевания приведены в таблице № 1.

 

Таблица № 1

Причинные микроорганизмы

Заболевания

E. Coli

Колибактериоз, септиция, аэросаккулит, аэроцистит, хроническая болезнь дыхательных путей (ХБДО), синдром набухшего (вздутого) сердца (СНС).

Salmonella spp.

Сальмонеллез, вспышки тифа и паратифа.

Pastereurella multocida

Холера птиц, пастерелез.

Hemophilus paragallinarum

Контагеозный катар верхних дыхатнльных путей.

Mycoplasma gallisepticum

Аэросаккулит, ХБДО, синусит.

Mycoplasma synoviae

Артрит, аэросаккулит, бурсит.

В связи с выше сказанным, в настоящее время актуальным является повышение жизнеспособности птицы и продуктивности птицеводства.

Одним из способов решения этой задачи является использование с лечебной и лечебно профилактической целью препаратов, в качестве действующего начала в которых используются ферменты, аминокислоты, фрагменты ДНК и РНК, микроорганизмы и т.д..

Среди прочих препаратов используемых в ветеринарной медицине особого внимания заслуживают препараты - пробиотики, механизм действия которых не противоречит сложенным в процессе эволюции механизмам защиты макроорганизма от вредных воздействий внешней среды, а наоборот стимулирует их деятельность. С нашей точки зрения, одним из важных факторов в механизме действия препаратов – пробиотиков является их способность регулировать численность патогенных и условно – патогенных микроорганизмов в макрообъекте. Это свойство препаратов – пробиотиков позволяет эффективно и без нежелательных последствий для организма бороться с множеством инфекционных заболеваний.

Микроорганизмы, входящие в состав препаратов – пробиотиков, способны оказывать влияние на организм на системном уровне, положительно влиять на регуляторные системы, активизировать неспецифическую резистентность организма, что приводит к повышению устойчивости молодняка и взрослой птицы к инфекционным заболеваниям [ 16, 83] . Таким образом, поиск новых пробиотиков способных оказывать комплексное воздействие на организм птицы, а также разработка эффективных схем их применения, является актуальным для решения основных проблем птицеводства.

 

Цель и задачи выполненных исследований

Целью исследований было изучение влияния препаратов Ветом 1.1 и Ветом 3 на физиологическое состояние и интенсивность роста птиц, определение терапевтической эффекта препарата Ветом 1.1, при включении его в традиционную схему лечения гиповитаминозов, микро- и макроэлементозов у цыплят.

В связи со сказанным выше в задачи наших исследований входило изучение приведенных ниже проблем.

  1. Изучение влияния препаратов Ветом 1.1 и Ветом 3 на интенсивность роста цыплят и кур – молодок.
  2. Определение характера воздействия испытуемого средства на биохимические показатели крови кур.
  3. Изучение возможности применения в птицеводстве препаратов Ветом 1.1 и Ветом 3 с профилактической целью.
  4. Изучение влияния препарата Ветом 1.1 на клинический статус птицы с диагнозом гиповитаминоз, микро- и макроэлементоз.
  5. Установление сроков наступления клинического эффекта при применении препарата Ветом 1.1 в сравнении с традиционной схемой лечения при гиповитаминозе, микро- и макроэлементозе.
  6. Определение эффективности сочетаной терапии препаратом Ветом 1.1 и витаминными добавками.
  7. Изучение влияния препарата Ветом 3 на микробиоценоз органов пищеварения.
  8. Выяснение особенностей влияния препаратов Ветом 1.1 и Ветом 3 на организм птицы и наличия возможных побочных явлений.

     

 

 

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

    1.1. Естественная резистентность, иммунологическая реактивность организма птиц и факторы на них влияющие

     В настоящее время для определения иммунологического состояния организма используются такие понятия, как иммунологическая реактивность и естественная резистентность. По определениям Плотникова И.А. иммунологическая реактивность - это способность организма проявлять защитно-иммунологические реакции в отношении возбудителей инфекционных заболеваний и обеспечивать специфический иммунный ответ на антигенное воздействие [ 23] . Однако сопротивляемость организма инфекциям, его способность противодействовать размножению инфекционных агентов зависит не только от эффективности иммунного ответа. Она определяется также неспецифическими факторами, которые являются первым этапом в борьбе с возбудителями заболеваний. Факторы неспецифической резистентности организма функционально основаны на повышении фагоцитоза, стимуляции гуморальных защитных механизмов. Карликов Д.К. предлагает использовать в качестве критериев оценки состояния неспецифической резистентности организма, следующие показания естественной (неспецифической) резистентности:

    - биохимические: содержание общего белка в сыворотке крови, витамина А, неорганического фосфора, кальция, глюкозы, кетоновых тел, уровень каталазной активности крови, щелочного резерва, и др.;

    - гематологические или морфологические: количество эритроцитов, лейкоцитов, содержание гемоглобина, качественный состав форменных элементов крови и др.;

    - иммунологические: фагоцитарная активность лейкоцитов, бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки крови, титр нормальных антител и др..

     Иммунный статус цыплят зависит от содержания защитных факторов в инкубационном яйце. В нем содержаться три вида иммуноглобулинов, обеспечивающих естественный иммунитет цыпленку [ 13] .

    В жизни цыплят различают три критических периода в становлении иммунитета:

    1-й период наступает на (3-5)-й день жизни цыплят и обусловлен завершением процесса использования защитных факторов, поступавших из яйца;

    2-й период регистрируется между 12-м и 20-м днём жизни цыплят и обусловлен дальнейшим использованием трансовариальных факторов и незрелой иммунной системой. В этот период характеризуется следующими показателями сыворотки крови - бактерицидная активность составляет величину 31,5%, комплементарная активность - 8,0%, уровень b -лизина -25,42%, количество лизоцима повышенное - 9,29 мг/мл.

    3-й период отмечается к середине второго месяца жизни цыплят [ 15] . Это период обусловлен снижением количества лизоцима в сыворотке крови до величины - 5,29 мг/мл.

    Одной из основных причин снижения жизнеспособности молодняка является низкий уровень иммунологической реактивности и естественной резистентности их организма, обусловленной, прежде всего условиями промышленного выращивания птиц (72). Сниженная жизнеспособность молодняка обусловливает пониженную рентабельность птицеводства.

    Для увеличения жизнеспособности молодняка сельскохозяйственной птицы в ветеринарной медицине часто с профилактической целью применяют биологически активные вещества различных групп. Ниже приведен ряд экспериментальных данных, подтверждающих эффективность этого метода.

    По данным В.В. Шамова и М.Г. Капыловой (80) однократное внутримышечное введение тимогена и ИС-100 цыплятам 5-ти дневного возраста достоверно увеличило количество иммуноглобулинов на 42%, эритроцитов на 0,3%, лейкоцитов на 0,2%. Прирост живой массы цыплят увеличился на 42%.

    По данным, полученным в экспериментах, выполненных Мулланаевой Л.А. в 1995 и 1991 годах (51), комплексное применение оротата калия и декариса в дозе по 0,2 мг и экстракта элеутерококка в дозе 0,01 мл способствует повышению в крови птиц количества эритроцитов на 0,9 млк/мл, лейкоцитов на 1,07 тыс/мл, гемоглобина на 1,1%, а также уровня лизоцимной активности сыворотки крови на 1,77%.

    Используемые в птицеводстве БАВ, оказывают комплексное воздействие на организм птиц (9). Одной из причин повышения жизнеспособности и продуктивности птицы является благоприятное действие БАВ на процессы клеточного метаболизма, потребление кислорода, синтез РНК и белка в различных тканях (52).

    Анаболические эффекты препаратов проявляются в увеличении массы тела (преимущественно за счет мышечной и лимфоидной тканей).

    Таким образом, наиболее часто применяемые в птицеводстве БАВ являются безвредными и способными стимулировать рост и развитие птиц, повышать уровень резистентности организма, их продуктивность и сохранность.

 

    1.2. Распространенность и применяемые схемы коррекции гиповитаминозов в промышленном птицеводстве

    Важнейшей проблемой в промышленном птицеводстве являются – болезни связанные с нарушением обмена веществ, на их долю приходится в среднем (50-60)% от всей заболеваемости и падежа. Наиболее распространенна витаминная недостаточность. В практике птицеводческих хозяйств редко встречаются болезни обусловленные недостатком одного витамина или минерального компонента, чаще встречаются патологии со стертыми или нетипичными симптомами.

    Витамины являются незаменимыми регуляторами обмена веществ, обеспечивающими здоровье, продуктивность, плодовитость и функциональную деятельность птицы. Входя в соединения со специфическими белками и в состав ферментных систем, витамины выполняют функции биологических катализаторов химических реакций или реагентов фотохимических процессов, протекающих в живых клетках. Существенная роль принадлежит витаминам в работе биологических мембран. Витамины проявляют биологическую активность в весьма малых концентрациях. Это обстоятельство свидетельствует о том, что они не являются пластическими и энергетическими компонентами.

    Витамины являются жизненно необходимыми компонентами сбалансированного кормления (70).

    Первоисточником витаминов обычно служат пищевые растения, но некоторые витамины образует микрофлора кишечника.

    Потребность в витаминах у птиц значительно колеблется, в зависимости от возраста, уровня обмена веществ. Потребность в витаминах зависит в первую очередь от содержания в рационе протеина, микро- и макроэлементов, уровня продуктивности и состояния условий внешней среды, в которой находятся птицы (18).

    Признаки гиповитаминоза возникают не сразу, обычно проходит определенный период времени. Цыплята заболевают на 10-14 день. У взрослых кур гиповитаминоз проявляется через 7-10 дней (18).

    Гиповитаминозное состояние проявляется главным образом в замедленном росте, нарушении воспроизводства, снижении продуктивности. При гиповитаминозах снижается устойчивость организма к различным заболеваниям. При недостатке витаминов в кормах снижается витаминная ценность продуктов животноводства.

    Гиповитаминозное состояние возникает не только на почве недостатка витаминов в рационе, но и вследствие, плохого их усвоения и недостаточного биосинтеза в организме. Такие явления называются эндогенными гиповитаминозами, они развивается в результате расстройства функционального состояния пищеварительного тракта, а также несбалансированности кормления (33).

    Типичными признаками заболевания цыплят являются: отставание в развитии, потеря веса, аппетита, нарушение координации движения, у отдельных цыплят наблюдается затруднение дыхания, глотания, наблюдается расстройство кишечника, больная птица взъерошена, мало подвижна. Типичные признаки гиповитаминоза у взрослой птицы – посинение гребня, параличи отдельных групп мышц, воспаление суставов, снижение и/или прекращение яйценоскости, больная птица вытягивает ноги, запрокидывает назад голову.

    Ниже описана роль конкретных витаминов для птиц и характерные признаки их недостатка в организме.

    Витамин А – важен для глаз, создания и функционирования кожи, слизистой оболочки.

    При недостатке витамина А в рационе питания цыплят увеличивается количество яиц с кровяными пятнами, у цыплят замедляется рост, наблюдается слабость, истощение, неустойчивость походки, кератинизация третьего века, снижается резистентность к инфекциям, повышается смертность, у больных цыплят наблюдается взъерошенное оперение.

    b -каротин – защищает от рака, сердечных и возрастных недугов.

    Витамин В2 – участвует в обмене веществ (белков, жиров, углеводов).

    При недостатке витамина В2 у кур – несушек наблюдается высокая эмбриональная смертность на (10-12)-й день инкубации яиц. У цыплят наблюдается отставание в росте, потеря аппетита, поносы, параличи.

    Витамин В1 – участвует в обмене веществ (углеводов) и функционировании нервной системы.

    При недостатке витамина В1 перо птиц становится ломким, наблюдается: нарушение походки, моторики желудочно-кишечного тракта, запрокидывание головы, невозможность приема корма. У больных птиц оперение взъерошено, наблюдаются судороги.

    Витамин В6 – участвует в обмене веществ (жиров) и функционировании нервной системы.

    При недостатке витамина В6 отмечается дрожь, судороги, непроизвольные движения, недержание крыльев, круговые движения, снижение яйценоскости, оплодотворяемости яиц и процента выведения цыплят.

    Витамин В12 – участвует в образовании красных кровяных телец, обмене веществ (белков), биосинтезе клеток.

    При недостатке витамина В12 отмечается: снижение яйценоскости и процента выведения цыплят, ухудшение качества яиц.

    Витамин Д – участвует в обмене веществ (кальция, фосфора).

    При недостатке витамина Д отмечается искривление костей грудной клетки, неустойчивая походка, появляются яйца без скорлупы либо скорлупа становится хрупкой, снижается яйценоскость и выводимость цыплят, увеличивается гибель эмбрионов от хондродистрофии.

    Витамин Е – защищает ненасыщенные жирные кислоты и оболочки клеток от вредного влияния окружающей среды.

    При недостатке витамина Е наблюдается высокая смертность эмбрионов в первые 4-е дня инкубации. У молодняка птиц развивается энцефаломоляция, экссудативный диатез, перерождение семенников, половая стерильность, наблюдаются кровоизлияния под крыльями.

    Витамин К – участвует в свертывании крови.

    При недостатке витамина К отмечают увеличение эмбриональной смертности с 18-го дня инкубации. У молодняка наблюдаются кровоизлияния в пищеварительном тракте, в печени, под кожей, в области груди, ног, крыльев, снижается скорость свертывания крови (21).

     В промышленном птицеводстве разработаны и успешно применяются различные схемы витаминизации при выращивании птицы (33).

 

Схема витаминизации при выращивании молодняка птицы

Таблица № 2

№п/п Возраст, сутки Наименование препарата Содержание в водном растворе, г/л
1 1-5

    Глюкоза

50

    Витамин С

2
2 3-7

Гидровит

0,2
3 8-10

Нутрил Se

0,5

Витамин С

-
4 17-19

Солвимин

0,5
5 19-20

Гидровит

0,2
6 22-24

Гидровит

0,2
7 26-27

Солвимин

0,5
8 29-31

Гидровит

0,2
9 33-34

Нутрил Se

0,5
10 36-38

Гидровит

0,2
11 55-58

Салвимин

0,5
12 61-63

Нутрил Se

0,5
13 69-70

Гидровит

0,2
14 71-73

Солвимин

0,5
15 118-119

Нутрил Se

0,5
Схема витаминизации при содержании родительского стада
1 130-131

Нутрил Se

0,5
2 150-153

Витамин С

2
3 240-245

Витамин С

2

    Состав препаратов, указанных в таблице № 2 представлен ниже.

    Нутрил Se (водорастворимый порошок). Препарат состоит из смеси витаминов А, В1, В2, В6, В12, С, Д3, Е, К3; аминокислот - метионина, триптофана; перманганата кальция, никотиновой кислоты, фолиевой кислоты и селена.

    В состав препарата витамины включены для обеспечения эффективного обмена веществ и жизнедеятельности организма птиц. В природе известно около 150 аминокислот. Большинство микроорганизмов и растения синтезируют необходимые им аминокислоты. Организм птиц не способен синтезировать незаменимые аминокислоты – они поступают вместе с кормом. Аминокислоты, включенные в состав препарата, имеют большое значение в обмене веществ в организме птиц, служат исходными соединениями при биосинтезе витаминов, гармонов, медиаторов, пигментов, пуриновых и пиримидиновых азотистых оснований, алкалоидов и других соединений.

    При недостатке аминокислот в корме птиц они теряют аппетит, не охотно склевывают корм и худеют. Появляются изменения на коже, перьях, уменьшается прирост птицы. Препятствовать нежелательным эффектам, связанным с нехваткой витаминов, можно добавляя их искусственным образом в корм.

    Селен предотвращает расстройства пищеварения и увеличивает сопротивляемость организма к различным неблагоприятным воздействиям окружающей среды.

    Показания к применению препарата Нутрил Se: авитаминозы, гиповитаминозы; стрессовые состояния; период реконвалесценции; с целью повышения сопротивляемости инфекциям; для профилактики нарушений метаболизма в печени и мышечных тканях (33).

    Солвимин комплексный витаминный препарат, в состав которого входят витамины А, Д3, Е, С, В1, В2, В6, В12, РР, пантотенат кальция, фолиевая кислота, витамин К3.

    Показания к применению препарата Солвимин: авитаминозы и гиповитаминозы, стрессовые состояния, а также с целью повышения сопротивляемости организма инфекциям (33).

    Гидровит АД3Е 100-20-20. Представляет собой раствор, содержащий витамины А, Д3, Е. Применяют препарат путем добавления в воду, используемую для питья.

    Входящие в состав препарата Гидровит витамины оказывают влияние на определенные физиологические функции. Витамин А влияет на рост животных, воспроизводство, целостность эпителия, иммунитет, зрение. Витамин Д влияет на минерализацию костей, скорлупы и др. функции. Регулирует кальциевый и фосфорный обмен в организме.

    Витамин Е является биологическим антиоксидантом, влияет на воспроизводство, улучшает мышечный обмен, стимулирует систему иммунной защиты, способствует лучшей сохранности мяса.

    Препарат в дозе 20 мг на 100 г воды используемой для питья в течении 3-5 дней рекомендуется применять в период овуляции и спаривания, в критические фазы роста, в пик и окончание периода яйценоскости, при снижении уровня выводимости, для повышения прочности скорлупы, в период линьки, для лучшего использования обогащенных жиром рационов, в период откорма, в период вакцинации и обработки против паразитов, при смене кормового режима, условий выращивания или жизни, транспортировке, смене климатических условий и среды обитания и для улучшения условий сохранности мяса.

    

    1.3. Схемы коррекции микро- и макроэлементозов, применяемые в промышленном птицеводстве

    Дефицит кальция в рационе несушек вызывает интенсивное использование его из костных депо, что ведет к снижению прочности скорлупы яиц и возникновению остеопороза, кроме того, при чрезмерно высоком отношении фосфора к кальцию последний хуже всасывается в кишечнике, что сопровождается образованием нерастворимых третичных фосфорных соединений.

    Избыток кальция в рационе снижает перивариваемость жиров и уменьшает аппетит, нарушает обмен фосфора, магния, марганца, железа и йода. Длительный избыток кальция в рационе вызывает гипертрофию щитовидной железы, следствием чего является повышение основного обмена и истощение организма. Кроме того, избыток кальция в рационе приводит к снижению эффективности использования цинка, а при повышении концентрации кальция и фосфора в организме снижается абсорбция марганца, что косвенно может отрицательно влиять на процесс воспроизводства.

    В опытах выполненных на курах-несушках обнаружено снижение содержания прогестерона в крови и прекращение яйцекладки при уровне ионизированного кальция в плазме крови ниже 1 ммол/л. При переводе этой птицы на рацион, сбалансированный по кальцию, и восстановлении до нормы уровня ионизированного кальция в плазме крови, яйцекладка возобновляется (84).

    В связи с периодичностью формирования отдельных компонентов яйца, потребность кур-несушек в питательных веществах изменяется в течении суток. В первые 4-5 часов после овуляции, которая у основного поголовья птицы приходится на 9-12 часов дня, идет образование предшественников белковой оболочки яйца, и птица нуждается в повышенном притоке с кормом экзогенных аминокислот, а в последующие 20-22 часа (вечернее и ночное время) происходят процессы кальцификации скорлупы, и, следовательно, возрастает потребность в кальции (76).

    При пониженном содержании фосфора в рационе питания птицы нарушаются буферная роль крови, процесс построения костей; изменяется содержание жиров, белков и углеводов. Пониженное содержание кальция и азота в скармливаемых кормах приводит к образованию трудно гидролизуемых комплексов, особенно с кальцием и фосфором. Образование комплексов препятствует эффективному использованию фосфора организмом, что приводит к его дефициту, несмотря на то, что общее содержание фосфора в рационе может быть достаточно для удовлетворения потребностей птицы. Опыты показали, что усвояемость фосфора из рациона с низким содержанием кальция составляет 39%. При увеличении количества кальция в кормах уровень абсорбции фосфора повышается до 52%. Введение в рацион больших количеств фитата и кальция приводит к снижению усвояемости фосфора до 27%. У цыплят бройлеров при содержании кальция в рационе в количестве 4,7 г на 1 кг корма усвояемость фосфора из фитата может достигать 51%, а при увеличении количества кальция до 7,1 г на 1 кг комбикорма абсорбция фосфора из фитата снижается до 11,3%. При содержании в рационе 8,7 г кальция на 1 кг комбикорма фосфор из фитата не усваивается.

    Дефицит натрия в рационах замедляет рост молодняка, а избыток его в воде и корме задерживает жидкость в организме. Цыплята и куры несушки не реагируют отрицательно на содержание в корме до 2% хлористого натрия. Если его количество в рационе доходит до 3%, то повышается смертность цыплят и снижается яйценоскость кур. Токсичность хлористого натрия зависит так же от крупности помола и возрастает в присутствии солей магния (36).

    Чувствительность птицы к содержанию поваренной соли в рационе кормления зависит от ее породы, возраста и яйценоскости, температуры воздуха в птичниках, содержания воды в кормах, состава воды. Так, цыплята переносят содержание 0,4% поваренной соли в питьевой воде. Молодая птица более устойчива к избыточному содержанию хлористого натрия в корме и воде, чем взрослая (76).

    Повышение температуры воздуха увеличивает чувствительность птицы к избытку поваренной соли из-за возрастающего потребления воды.

    Микроэлементы необходимы для жизнедеятельности животных. Но при избытке кальция в организме нарушается обмен магния, марганца, железа, йода, что ведет к снижению использования цинка. При недостатке цинка в организме наблюдается утолщение и укорочение конечностей, а также замедление роста и полового созревания молодняка, нарушение роста и смены пера, снижение оплодотворяемости яиц, появление дерматозов. У эмбрионов отмечается искривление позвоночника, уродство головы, отеки, аномалии развития головного мозга, глаз и др. органов (53).

    При дефиците марганца уменьшается уровень содержания глюкозаминогликанов и хрящевой ткани, а также понижается активность ряда ферментов участвующих в углеводном обмене. Кроме того, недостаток марганца вызывает у молодняка перозис, сопровождающийся деформацией костей и сухожилий. У кур несушек снижается яйценоскость, уменьшается толщина скорлупы, увеличивается бой и насечка яиц, нарушается развитие эмбриона. Симптомов сопровождающих избыточное количество марганца в комбикорме не отмечено.

    При недостатке йода в организме развивается гипофункция щитовидной железы. Что ведет к отставанию молодняка в росте и развитии, снижению продуктивности и нарушению воспроизводительных функций. Избыток йода оказывает отрицательное влияние на организм птиц. Например, содержание йода в количестве около 50 мг в 1 кг сухого корма в рационе кур-несушек повышает уровень йода в яйце, что снижает выводимость и качество цыплят. Увеличение содержания йода в корме до 500 мг на 1 кг сухого вещества приводит к прогрессивному снижению яичной продуктивности, массы яйца, и, в конечном итоге, к прекращению яйцекладки (76).

    При снижении количества меди до 5 мг на 1 кг корма и железа до 200 мг на 1 кг корма наблюдается уменьшение прироста живой массы цыплят и увеличение их смертности на 10%. На основании этого было сделано заключение, что при сбалансированности рациона цыплят по меди и другим питательным веществам максимально безопасным уровнем содержания железа в корме птиц можно считать 1600 мг на 1 кг корма (85).

    В организм животного кальций поступает с кормами и минеральными добавками. Независимо от формы кальциевых соединений большая часть введенного кальция под влиянием желудочного сока превращается в хлористый кальций и в ионной форме абсорбируется в кишечнике и частично в желудке. Уровень его всасывания в значительной мере определяется активностью агентов, регулирующих количество ионизированного кальция (29).

    Стимулирующее влияние на адсорбцию кальция в кишечнике оказывают желчные кислоты, с которыми кальций образует растворимые комплексы, легко транспортируемые через липопротеидные мембраны. Определенное воздействие на этот процесс оказывает уровень клетчатки и протеина в рационе животных. Причем, как избыток, так и недостаток протеина, увеличивает экскрецию кальция. Обогащение рациона животных аминокислотами (лизином и метионином) оказывает положительное воздействие на абсорбцию кальция.

    Доказано, что для оптимального всасывания кальция необходимо включать в рацион животных определенное количество жира. Всасывание кальция происходит, в основном, в тонком отделе кишечника и во многом зависит от обеспеченности животных витамином Д. Последний претерпевает сложные превращения в организме животных, в результате которых образуется его метаболически активная форма, индуцирующая синтез кальций связывающего белка, и тем самым способствующая более интенсивному всасыванию кальция в кишечнике. Эффективность усвоения кальция в организме животных зависит от их возраста, так как по мере старения организма усвояемость кальция постепенно уменьшается (31).

    Фосфор участвует в построении костей, входит в состав нуклеиновых кислот, различных фосфопротеидов, ферментов, обеспечивает буферную роль крови, является аккумулятором и источником энергии (макроэргические фосфаты), занимает ключевое положение в обмене жиров, белков и углеводов (29).

    Дефицит фосфора в рационах птиц восполняют добавками неорганического фосфора, содержащегося в костной муке, кормовых преципитатий и фосфатов. В рацион птицы включают природные фосфаты, в которых фосфор находится в форме карбонат- и гидроксилаппатита и, отчасти, трикальций фосфата с малым содержанием фтора – не более 0,2%. Фосфор используется из минеральных и животных кормов молодняком практически на 100%, взрослой птицей – на (70-85)%, из растительных кормов на 50%. Фитиновый фосфор используется на (30-40)% (22).

    Фосфор всасывается в тонком отделе кишечника в виде РО4 – иона ортофосфорной кислоты, который поступает в кровь и, в последующем, поглощается тканями печени, почек, селезенки, мышц, костей и мозга. Для всасывания фосфора необходим кальций и, возможно, калий в химусе.

    Фосфор выделяется из организма с пометом. Количество эндогенного фосфора, выделяемого с калом и мочой, колеблется в широких пределах и зависит от содержания его в корме, функционального состояния паращитовидной железы, количества витамина Д в организме (76).

    Фосфор содержится в основном в костях (70-85%) в форме фосфатов. Неорганический фосфор в форме первичных и вторичных фосфатов имеется в крови, где он обеспечивает буферную функцию. Содержание неорганического фосфора, по сравнению с общим фосфором, незначительное. Так, количество общего фосфора в крови курицы 91 мг%, в том числе неорганического лишь 4 мг% (22).

    Усвояемость фосфора из различных фосфатов зависит так же от размера частиц и от наличия молекул воды. Гидратная форма фосфатов обладает более высокой доступностью, чем ангидридная. При скармливании птице рациона, в который включена гидратная форма дикальцийфосфата, сохранность птицы в течение 17-и дней составила 100%, а при использовании ангидридной формы дикальцийфосфата все птицы погибли на 11-й день (27).

    Высокая корреляция наблюдается между всасыванием фосфора и содержанием протеина в рационе животных. Низкий уровень протеина снижает эффективность усвоения фосфора. Причем, качество и источник белка имеет менее важное значение, чем его количество (42).

    Натрий поддерживает осмотическое давление в тканях, регулирует обмен жидкости, участвует в процессах передачи импульсов в нервной системе, создает оптимальную среду для действия различных ферментов (76). Источник натрия в рационах птицы – рыбное мясо, костная мука, шроты и поваренная соль. Растительные корма и дрожжи бедны натрием и не удовлетворяют потребности птицы в этом веществе. В связи с этим в комбикорма, состоящие из растительных кормов, добавляют поваренную соль (31). (80-90)% поступившего в организм натрия всасывается в тонком отделе кишечника. Всасывание натрия зависит от содержания его в химусе. Если в химусе натрия содержится больше 1,25% и меньше 0,25%, то его всасывание замедляется.

    Уровень натрия в организме регулируется альдестероном. На его обмен в организме влияет функциональное состояние почек, его депо в костях и тканях нервной системы, обеспечивающие стабильный уровень натрия в крови и тканевых жидкостях. Натрий выделяется из организма преимущественно через почки и частично через кишечник (22).

    Микроэлементы необходимы для жизнедеятельности животных. В организме микроэлементы входят в состав разнообразных биологически активных соединений - ферментов (цинк – в карбоангидразу, медь – в полифеноксидазу, марганец – в аргиназу; всего известно около 200 металлоферментов), гормонов (йод – в тироксин, цинк и кобальт – в инсулин), дыхательных пигментов (железо - в гемоглобин и др. железосодержащие пигименты, медь – в гемоцианин). Действие микроэлементов, входящих в состав указанных соединений, или влияющих на их функции, проявляется, главным образом, в изменении активности процессов обмена веществ в организме (76).

    В полноценном рационе содержится достаточное количество железа и поэтому, в практике почти не отмечается массового заболевания птицы анемией, связанного с недостаточностью железа для синтеза гемоглобина. Но длительное отсутствие зелени, травяной муки и специальных добавок железа в рационах молодняка, как правило, вызывает заболевание, сопровождающиеся отставанием птицы в росте.

    В пищевых продуктах железо находится в неорганической форме, в основном, в виде соединения с белком, а также геминовых соединений, входящих в состав гемоглобина и миоглобина. Для эффективного всасывания эти соединения должны быть предварительно восстановлены до двухвалентной формы, что и происходит в пищеварительном тракте. Оптимальное всасывание железа и повышение его биологической доступности возможны только в условиях нормальной секреции желудочного сока (36).

    Общая усвояемость железа из растительных кормов составляет около (3-4)%, абсорбция из риса и шпината – около 1%, из соевых бобов – 7%, из кукурузы – 4%, из пшеницы – 5%. Железо из кормов животного происхождения усваивается лучше. Так, средняя усвояемость железа из ливера, рыбы и мяса превышает 10%. Доступность железа из кукурузы повышается в 2 раза при скармливании ее совместно с рыбой или мясной мукой (22).

    Всасывание железа осуществляется следующим образом: поступив в клетки слизистой, оно связывается с ферритином. Как только клетка достигает физиологического насыщения ферритином, дальнейшее всасывание прекращается до тех пор, пока железо не освободится из ферритина и не поступит в плазму (36).

    Для повышения биологической доступности всасывания в кишечнике очень часто применяются хелатные соединения железа. Обнаружено, что в органической хелатируемой форме оно всасывается в 3-6 раз лучше, чем из карбоната, в 3-8 раз лучше, чем из сульфата и в 4-9 раз выше, чем из окиси (22).

    Марганец участвует в окислительно-восстановительных процессах, построении скелета, регулировке функций нервной системы, жировом и водном обмене, влияет на рост и развитие молодняка, его размножение, процессы кроветворения, на функции желез внутренней секреции.

    Избыток марганца в рационе приводит к снижению потребления корма, степени усвоения клетчатки и уменьшению образования гемоглобина и размер эритроцитов в крови (76).

    Всасывание марганца составляет (3-4)% от количества, потребленного с кормом. Всосавшийся марганец интенсивно участвует в обмене, выделяется в большом количестве через стенку кишечника и удаляется из организма с каловыми массами. Полагают, что относительное постоянство содержания марганца в тканях объясняется регулированием его на уровне экскреции – выделения. Всасывание марганца у молодых растущих животных составляет не более 15%.

    Высокой биологической активностью обладают окись марганца, углекислый, хлористый и сернокислый марганец. Усвоение марганца из муки сои составляет 76,1%, хлопчатника – 76,3% и муки семян рапса – 56%. Так как марганец плохо усваивается, птица испытывает высокую потребность в нем (36).

    Йод регулирует обмен веществ, теплообразование и влияет на функции воспроизводства. Всасывание йода происходит в проксимальном участке тонкого отдела кишечника и в желудке. Йодиды всасываются более интенсивно, чем йод, связанный с аминокислотами.

    С целью повышения биологической доступности йода в последнее время применяют соединения с жирами. Йодированные жиры используются в профилактике и лечении заболеваний, вызванных йодистой недостаточностью у сельскохозяйственных животных и птиц (22).

    Всасывание меди не контролируется регуляторными системами и зависит от состава питательных веществ кормов. Биологическая доступность меди из муки рапса у птиц составляет 62%, из муки сои – 51%. Наблюдаемые различия доступности меди из этих белковых кормов свидетельствуют о том, что медь в них находится в различных химических формах и соотношениях с другими питательными веществами. Содержание меди в естественных кормах зависит от видового состава растений, места их произрастания, сезона года и климатических условий. Лучше всего медь усваивается из белковых кормов животного происхождения.

    При увеличении содержания кальция в рационе усвоение меди резко падает в связи с образованием нерастворимых комплексных соединений и изменением физико-химических свойств меди. Так же усвояемость меди снижается при даче высоких доз аскорбиновой кислоты, фитина, цинка, молибдена, серы, серебра, ртути. Избыток меди в рационах возникает при введении ее в корм в количестве более 300 мг/кг (76).

    Кобальт входит в состав витамина В12, активизирует синтез нуклеиновых кислот и мышечных белков, в присутствии железа и меди под его влиянием активизируется деятельность кровеносной системы.

    При недостатке кобальта развивается анемия, задерживается рост молодняка, снижается продуктивность взрослой птицы. Признаки недостаточности кобальта в рационе сильнее проявляются при отсутствии витамина В12. Усваиваемость кобальта в организме моногастричных животных составляет (30-40)%. Кобальт в виде его хлористых, карбонатных и сульфатных солей обладает высокой биологической доступностью для моногастричных животных (36).

    Цинк входит в состав многих ферментов и влияет на рост и развитие птицы, ее воспроизводительные функции и белковый обмен (76). Всасывание цинка происходит, в основном, в верхнем отделе тонкого кишечника и зависит от качественного и количественного состава белкового корма, содержание фитата, а так же от природы химического соединения цинка. Показано, что добавки к основному рациону карбоната, окиси и хлористого цинка в количестве 6,2 мг/кг и 40 мг/кг корма стимулировали рост цыплят. Цинк в виде ZnS и (Fe, Mn, FeO2)2Zn был практически недоступен для организма цыплят.

    По данным ряда исследователей, биологическая доступность цинка из кормов животного происхождения находится в пределах 75%, из соевой муки – 67%. Хорошо усваивается цинк из казеина (22). Активность цинкосодержащих ферментов и концентрация цинка в сыворотке крови свидетельствует о том, что его усвояемость из металлического порошка несколько выше, чем из окиси цинка, и составляет от 30% до 33% (53).

    Нормы добавок микроэлементов в комбикорма птицы (грамм элемента на тонну) следующие: марганец - 50, цинк - 50, железо - 10, медь - 2,5, кобальт - 1, йод - 0,7 (76).

    

    Применение пробиотиков в птицеводстве

    В настоящее время одним из наиболее перспективных направлений в области профилактики болезней птиц, увеличения привесов и сохранности молодняка сельскохозяйственных животных и птицы стало применение препаратов пробиотиков, в состав которых входят различные микроорганизмы и продукты их жизнедеятельности с лечебной и лечебно – профилактической целью. Живые бактерии, входящие в состав препаратов - пробиотиков являются антагонистами патогенных и условно патогенных клеточных микроорганизмов. С их помощью удается нормализовать состав микрофлоры сложившийся в результате эволюции в различных экосистемах макроорганизма, в том числе и птиц. В частности устранить проблемы, связанные с широко распространенными дисбактериозами желудочно – кишечного тракта (ЖКТ), приводящими к множеству вторичных заболеваний, в том числе и хронического характера; оптимизировать функционирование стенок ЖКТ, путем устранения не переваренных остатков пищи и избыточного количества слизи, что обеспечивает их транспортные функции. Из экспериментальных данных, полученных в результате использования препаратов – пробиотиков в животноводстве и птицеводстве следует, что препараты этого класса способны стимулировать иммунитет животных и птиц (86, 87), нормализовать микрофлору желудочно-кишечного тракта, усиливать выработку интерферона, способствуют повышению среднесуточного прироста цыплят.

    Пробиотики в процессе жизнедеятельности создают наиболее благоприятный баланс желудочно-кишечной микрофлоры, обеспечивая благоприятные условия для утилизации корма и его отдельных элементов.

    Термин пробиотики был предложен в 1972 году Ричардом и Паркером для обозначения живых микроорганизмов и продуктов их ферментации, обладающих антагонистической активностью по отношению к патогенной микрофлоре.

    Пробиотики – биологические препараты, представляющие собой стабильные культуры симбионтных микроорганизмов или продукты их ферментации, которые способствуют росту последних. Они обладают разносторонним фармакологическим действием. При приеме внутрь, бактерии Bacillu Subtilis заселяют желудочно-кишечный тракт, размножаются в нем в течении 2-5 суток, и затем полностью выводятся из организма. В процессе жизнедеятельности бактерии выделяют протеазы, которые лизируют несвойственные организму животные белки, денатурированные белки и нуклеопротеиды. При этом уничтожаются бактериальные токсины, дефектные клетки, повышается фагоцитарная активность лейкоцитов крови, устойчивость организма к различным видам вирусных и др. инфекционных заболеваний, стабилизируется аллергическая устойчивость и регинерационные процессы в тканях, нормализуется обмен веществ и стимулируется гуморальный и клеточный иммунный ответ. Положительный эффект пробиотиков обусловлен их участием в пищеварительном процессе и метаболизме организма хозяина, биосинтезом и усвоением белка и многих других биологически активных веществ, обеспечением резистентности макроорганизма. Нормальная деятельность многих систем и органов животных в значительной степени зависит от видового состава и межвидового соотношения микроорганизмов, заселяющих их с момента рождения.

    В наибольшей степени антагонистическая активность выражена у ацидофильных бактерий и молочнокислого стрептококка.

     Пробиотики выпускают в виде сухих препаратов, высушенных микроорганизмов в чистом виде или в технической форме с питательными веществами. В качестве наполнителей для последних используют сухое молоко, сахарозу, кукурузную, рыбную или др. муку. Последние, более удобны при групповом назначении с кормом.

    В течение двух последних десятилетий в мире резко вырос интерес к использованию симбионтных микроорганизмов и пробиотических препаратов на их основе. На основе бифидобактерий разработан целый ряд препаратов, которые используют для поддержания и восстановления биоценоза пищеварительного тракта, а также в качестве эффективных лечебно-профилактических средств, при желудочно-кишечных заболеваниях животных. Препараты бифидобактерий проявляют антагонистическую активность в отношении патогенной микрофлоры, угнетая их рост и снижая патогенность. Препараты бифидобактерий обладают разносторонне выраженной фармакологической активностью, обусловленной биологическим действием симбионтных микроорганизмов, за счет их антимикробных свойств в отношении патогенной микрофлоры, высокой приживаемости их в пищеварительном тракте и способности нормализовать биоценоз макроорганизма. Это проявляется в улучшении процессов пищеварения, положительном влиянии на каталитическую активность желудка, кишечника, стимуляции основных видов обмена веществ, повышении отдельных механизмов неспецифической резистентности организма животных и птиц. Препараты не проявляют эмбриотоксического, терратогенного и аллергического действия. Препараты эффективны для профилактики и лечения диарейных заболеваний; их профилактическая эффективность составляет (91,9-97,5)%, а лечебная, при легкой форме заболевания - 100%. Применение препарата для лечения животных сокращает продолжительность лечения в 1,5-2 раза, болезнь протекает в более легкой форме, а после лечения не наблюдается дисбактериозов.

    Употребление препарата с профилактической целью повышает привесы, снижает расход кормов на единицу продукции на (10-15)%, снижает уровень заболеваемости, а переход на твердые корма осуществляется значительно раньше. Пробиотики охотно поедаются животными и удобны для группового применения.

 

    СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

 

    Материал и методы исследования

    С целью изучения эффективности и целесообразности применения Ветома 1.1. и Ветома 3 в птицеводстве были проведены научно-производственные опыты на АОЗТ “Нечаевское” Тогучинского района, ЗАО “Лебедевское” Искитимского района, птицефабрике “Новосибирской” Новосибирской области, птицефабрике “Октябрьская” г. Новосибирска в период с 1997 по 2001 год.

    Ветом 1.1. является иммобилизированной высушенной споровой биомассой рекомбинантного штамма 7092 бактерий Bacillus subtilis, продуцирующих a -2-интерферон. Ветом 3 является иммобилизированной высушенной споровой биомассой бактерий Bacillus subtilis, штамма ВКПМВ-7048. Препараты представляют собой мелкокристаллический порошок белого цвета, без запаха легко растворимый в воде. Препараты обладают высокой антагонистической активностью к широкому спектру патогенных и условно патогенных микроорганизмов за счёт B. Subtilis, способствуют стимуляции клеточных и гуморальных факторов иммунитета, повышают неспецифическую резистентность организма, стабилизируют аллергическую устойчивость, стимулируют регенерационные процессы тканей, нормализуют обмен веществ.

    При изучении особенностей действия Ветома 1.1. на птиц объектом исследования служили цыплята 1-5 дневного возраста и куры - молодки в возрасте 120 дней мясояичного кросса “Ломан-Браун”.

    В первой серии опытов использовали цыплят мясояичного кросса “Ломан-Браун”, в возрасте 1-5 дней, из которых по принципу аналогов сформировали 4 опытных и 1 контрольную группы по 110 голов в каждой (табл. 1).

 

     Схема применения Ветома 1.1 цыплятам мясояичного кросса

Таблица 1

    Группа

Препарат Доза Способ применения Кратность

 

введения

    1 опытная

Ветом 1.1 75 мг/кг с 1-го дня жизни 2 раза в день 5 дней подряд
2 опытная Ветом 1.1 75 мг/кг с 1-го дня жизни 1 раз в день 5 дней подряд
3 опытная Ветом 1.1 75 мг/кг с 5-го дня жизни 2 раза в день 5 дней подряд
4 опытная Ветом 1.1 75 мг/кг с 5-го дня жизни 1 раз в день 5 дней подряд
Контроль Препарат не применяли

    Цыплятам 1-й группы Ветом-1.1. вводили с первого дня жизни внутрь с кормом в дозе 75 мг/кг 2 раза в день 5 дней подряд. Цыплятам 2-ой группы Ветом-1.1. применяли в той же дозе 1 раз в день в течение 5 дней. Цыплятам 3-ей и 4-ой опытных групп Ветом-1.1. скармливали по схемам аналогично 1-ой и 2-ой опытных групп, но начиная с 5-ти дневного возраста.

    В опыте использовано 550 цыплят. Для изучения действия препарата в динамики ежедневно учитывали физиологическое состояние цыплят, поедаемость кормов, заболеваемость и сохранность молодняка, а так же интенсивность роста для чего проводили взвешивание цыплят в течение 2-х дней до применения препарата, затем через 4-5 дней во время применения препарата.

    С целью изучения особенностей действия Ветома 1.1 на кур-молодок в 1998 году для исследования использовали кур мясояичного кросса “Ломан-Браун” в возрасте 120 дней, из которых сформировали 2-е опытных и 1-ну контрольную группы по 28 голов в каждой (табл. 2).

    Схема применения Ветома 1.1 курам-молодкам

Таблица 2

Группа

    Препарат

Доза Способ применения Кратность
1 опытная Ветом 1.1 100 мг/кг 1 раз в сутки 5 дней подряд
2 опытная Ветом 1.1 75 мг/кг 2 раза в сутки 5 дней подряд
Контроль Препарат не применяли

    Птицам 1-ой опытной группы Ветом 1.1. применяли 1 раз в сутки 100 мг/кг живой массы в течение 5-ти дней, 2-ой- 2 раза в сутки 75 мг/кг 5 дней подряд. Птицам контрольной группы испытуемый препарат не скармливали. Во 2-ой серии опыта ежедневно проводили клинический осмотр птицы, учет поедаемости кормов, сохранность. Взвешивание кур осуществляли в возрасте 120, 125, 135 и 140 дней, в этот же период проводили взятие крови, в которой определяли содержание общего белка, кальция и фосфора по общепринятым методикам.

    На птицефабрике “Новосибирской” были проведены опыты по изучению терапевтической эффективности препарата Ветом 1.1, при включении его в тардиционные схемы лечения микро- и макроэлементозов.

    В опытах использовалась птица 4-недельного и 27-недельного возраста, породы “ISA-15” с клиническими признаками макроэлементозов кальция и фосфора. При кальциевом и фосфорном макроэлементозах отмечается снижение прочности скорлупы яиц и возникновение остеопороза, искривление грудной кости, что ведет к замедлению роста молодняка и снижению продуктивности птицы (скорлупа становится хрупкой, появляются яйца без скорлупы, снижается яйценоскость и т.д.).

    Было сформировано по принципу аналогов, две опытных и две контрольных группы птицы, по 100 голов в каждой. Ветом 1.1. в различных дозировках (табл. 3) вводили в рацион на протяжении 7 дней с последующим наблюдением за птицей опытных групп в течение 30 дней. Ветом 1.1. задавали внутрь с кормом. Кормление проводилось по установленному распорядку дня, с использованием стандартных рационов в соответствии с возрастными группами.

    Оценка терапевтической эффективности препарата проводилась по результатам клинического исследования птицы, а так же по приросту живой массы.

Схема применения Ветома 1.1 при микро- и макроэлементозах

Таблица 3

Группа Возраст Схема коррекции элементозов
1 опытная 4 недели Премикс 2 кг/т + Ветом 1.1. 50 мг/кг массы
2 опытная 27 недель Премикс 2 кг/т + Ветом 1.1. 50 мг/кг массы
Контрольная 4 недели Премикс 2 кг/т корма
Контрольная 27 недель Премикс 2 кг/т корма

    Оценка прироста живой массы проводилась через 30 дней после проведения опыта. В сыворотке крови определяли уровень кальция и фосфора. Исследования проводились в Искитимской ветеринарной лаборатории по общепринятым методам.

    Для определения терапевтической эффективности препарата при гиповитаминозах формировали опытные группы из птицы с клиническими признаками гиповитаминозов А и Д.

    При гиповитаминозе А отмечается увеличение количества яиц с кровяными пятнами, у цыплят замедляется рост, слабость, истощение, неустойчивость походки, оперение взъерошено, кератинизирование третьего века, снижение резистентности к инфекциям, повышается смертность.

    При недостаточности витамина Д отмечается искривление грудной кости, неустойчивая походка, скорлупа становится хрупкой, появляются яйца без скорлупы, снижается яйценоскость и выводимость цыплят, увеличивается гибель эмбрионов.

    По принципу аналогов было сформировано две опытных и две контрольные группы птицы, по 100 голов в каждой (табл. 4).

    Схема применения Ветома 1.1 при гиповитаминозе

Таблица 4

Препараты Группы
4 недели 27 недель
Контроль Опытная Контроль Опытная
1. Ветом 1.1 - 50 мг/кг 2 раза в сутки - 50 мг/кг 2 раза в сутки
2. Гидровит 20 мг/л 20 мг/100л - -
3. Нутрил Se - - 50 г/100л 50 г/100л

    Опыты проводились в течение 7 дней с последующим наблюдением за птицей в течение 30 дней. Витаминный комплекс и Ветом 1.1 задавали внутрь, в разведении с водой. Кормление осуществлялось с соблюдением установленного распорядка дня, рационы стандартные для возрастных групп.

    Определение эффективности предложенной схемы лечения осуществлялась по результатам клинического исследования птицы и по приросту живой массы. При исследовании регистрировалось общее состояние, наличие аппетита, характер эпителиальных слизистых покровов, наличие или отсутствие диспепсических расстройств.

    Прирост живой массы определяли через 30 дней, после прекращения введения препарата. Проводили исследования сыворотки крови, в которой определяли уровень каротина, кальция и фосфора, рН. Исследования проводили в Искитимской ветеринарной лаборатррии по общепринятым методикам.

    Экспериментально-клинические изучение Ветома 3 проводились с 6 октября по 17 ноября 2000 года на базе птицефабрики “Октябрьская” г. Новосибирска. Объектом изучения являлись цыплята-бройлеры в возрасте с 1 по 42 дни жизни, подобраны по принципу цыплят-аналогов по возрасту, живой массе, физиологическому состоянию, кормлению и содержанию, экстерьеру и сходной продуктивности родителей. Материалом исследований служил пробиотик Ветом 3. Опыты проводили на 234 цыплятах-бройлерах, разделив их на 3 группы: две опытных и одна контрольная по 78 голов в каждой. Подопытные и контрольная группы цыплят находились в одинаковых условиях кормления и содержания: в клеточных батареях Р15, плотность посадки, фронт кормления и поения соответствовали установленным нормам. Применяли Ветом 3 цыплятам первой и второй опытных групп с 1-дневного возраста по схеме (табл. 5). Препарат перед применением смешивали с комбикормом и скармливали групповым методом.

 

 

Схема проведения опыта

Таблица 5

Группы Введение Доза В сутки Кратность
1 опытная с кормом 75 мг/кг 2 раза Через 24 часа в течение месяца
2 опытная с кормом 75 мг/кг 1 раз Через 24 часа в течение месяца
Контроль Ветом 3 не применяли

    В период исследования определяли эффективность препарата, оптимальную кратность введения, наличие нежелательных явлений.

    При определении эффективности действия Ветома 3 участвовали показатели: прироста средней массы, абсолютной скорости роста. Для этого проводили индивидуальное взвешивание цыплят по 30 голов из каждой группы в 1-, 7-, 14-, 21-, 28-, 35- и 42-дневном возрасте. В 1-, 20- и 40-й дни опыта учитывали данные количественного и качественного состава микрофлоры кишечника цыплят путём высева микроорганизмов с 1 г. фекалий лабораторным способом по общепринятым методикам Знаменского В.А., утверждённых МЗ УССР 10.10.1986г. В 1-, 20- и 40-й дни опыта также исследовали кровь, определяли лейкограмму (Болотников И.А., 1980). В период всего эксперимента следили за общим состоянием цыплят, определяли падеж цыплят в каждой опытной и контрольной группах.

    Цифровые материалы обработаны статистически на персональной ЭВМ с использованием программы биометрической обработки “PGN №10”, разработанной Наумкиным И.В. и Гартом В.В. (1991). Достоверность полученных результатов определяли с помощью критерия Стьюдента.

2.2. Результаты собственных исследований

Применение Ветома 1.1 в птицеводстве с ростостимулирующей и профилактической целью

    В результате проведенных исследований установлено позитивное влияние препарата Ветом 1.1. на интенсивность роста цыплят 1-5-и дневного возраста (табл. 6)

 

Показатели живой массы у подопытных цыплят

Таблица 6

Возраст, дни Группы
1 опытная, г 2 опытная, г 3 опытная, г 4 опытная, г Контроль, г
1 44 44     44
5 63 62 60 60 60
10 - - 102 102 100

    Одно- и двукратные введения Ветома 1.1 с первых дней жизни способствовало повышению живой массы у опытных цыплят к 5 дню жизни по сравнению с аналогами из контроля соответственно на 5% и 3,5%.

    При применении Ветома 1.1 молодняку с 5-дневного возраста живая масса цыплят опытных групп к 10 дню исследований была на 2% выше аналогов из контроля.

 

    Динамика среднесуточного прироста цыплят

Таблица 7

Период, дни Группы
1 опытная, г 2 опытная, г 3 опытная, г 4 опытная, г Контроль, г
1-5 3,8 3,6     3,2
5-10     8,4 8,4 8,0

 

    Среднесуточный прирост у цыплят, получавших Ветом 1.1, был выше, чем у аналогов из контроля в 1-й и 2-й группе – на 18,7% и 12,5% (табл. 7).

    Применение Ветома 1.1 с 5-дневного возраста независимо от кратности введения повышало интенсивность роста цыплят по сравнению с аналогами из контроля на 5%.(табл. 7).

    Аналогичный характер изменений зарегистрирован и в скорости роста цыплят (табл. 8).

    Изменение скорости роста цыплят (по Броди)

Таблица 8

Период, дни Группы
1 опытная, % 2 опытная, % 3 опытная, % 4 опытная, % Контроль, %
1-5 35,5 33,9     30,7
5-10     51,8 51,8 50,0

    Как видно из таблицы 8 изменение скорости роста в большей степени зависело от возраста птицы и в меньшей – от кратности применения препарата.

    Так при назначении Ветома 1.1 с 1-го дня жизни происходило повышение скорости роста цыплят 1-й и 2-й опытных групп по сравнению с контролем соответственно на 15,6% и 10,4 %, в то время как при введении испытуемого средства с 5-го дня жизни всего на 3,7%.

    Нами установлено, что после применения Ветома 1.1 сохранность цыплят всех опытных групп повышалась. Одно- и двукратное введение испытуемого средства с первого дня жизни повышало сохранность птицы 1-й и 2-й опытных групп по сравнению с аналогами из контроля на 12,1%, а с пятого дня жизни повышало сохранность птицы 3-й и 4-й опытных групп на 4,2% и 2,2 %(табл. 9).

 

Сохранность подопытных цыплят

Таблица 9

Период, дни Группы
1 опытная, % 2 опытная, % 3 опытная, % 4 опытная, % Контроль, %
1-5 84,5± 3,45 84,5± 3,45 - - 75,4± 4,1
5-10 - - 90,0± 3,08 88,2± 3,08 86,3± 3,27

    Таким образом, использование препарата Ветом 1.1. цыплятами способствовало повышению интенсивности их роста и сохранности. Наиболее высокие показатели на 10,3% и 15,5% отмечались при скармливании Ветома 1.1. цыплятам с первого дня жизни.

     При применении Ветома 1.1.в указанных дозировках не отмечали отрицательных побочных явлений.

При назначении Ветома 1.1 птице в 120-дневном возрасте было установлено, что препарат оказывал позитивное влияние на рост и развитие кур-молодок. Ветом 1.1 способствовал достоверному повышению живой массы птицы всех опытных групп (табл. 10).

 

Показатели живой массы кур-молодок

Таблица 10

Возраст, дни Группы
1 опытная, г 2 опытная, г Контрольная, г
M± m Cv % M± m Cv % M± m Cv %
120 1350± 6,45 0,4 1350± 13,2 0,4 1350± 14,2 1,3
125 1480± 6,5 0,4 1485± 5,8* 0,5 1456± 10,3 0,7
135 1600± 6,65** 0,4 1585± 5,4 0,3 1560± 6,45 0,3
140 1663± 3,6 0,2 1657± 5,0 0,3 1636± 20,6 1,1

    В 125-дневном возрасте куры 1-й и 2-й опытных групп по живой массе превышали аналогов из контроля соответственно на 1,6% и 1,9%. Более интенсивный рост кур сохранялся и в последующий период. В 135-дневном возрасте куры, получавшие Ветом 1.1 превосходили по живой массе молодок из контрольной группы соответственно на 2,6% и 1,6% (Р<0,01 и Р<0,05). В конце эксперимента сохранилась тенденция к более интенсивному накоплению живой массы у кур опытных групп, однако разница с этим показателем у контрольной птицы была не достоверной.

    Среднесуточный прирост у подопытных кур был выше аналогов из контроля (табл. 11).

Среднесуточный прирост подопытных кур

Таблица 11

Возраст, дни Группы
  1 опытная, г 2 опытная, г Контрольная, г
125 26 27 21,2
135 12 10 10,4
140 12,6 14,4 15,2
120-140 15,7 15,4 14,3

    Как видно из таблицы 11 через 5 дней после первого введения препарата у кур опытных групп отмечали значительное повышение среднесуточного прироста живой массы по сравнению с контролем соответственно на 22,6% и 27,3%.

    К 135 дню жизни интенсивность роста была выше, чем у аналогов из контроля, только у кур - молодок, получавших Ветом 1.1 в дозе 100 мг/кг на 15,4%.

    В последующий период интенсивность роста птиц всех опытных групп незначительно снижалась.

    Аналогичные изменения регистрировали у птиц подопытных групп по скорости роста (табл. 12).

Динамика скорости роста кур-молодок (по Броди)

Таблица 12

Возраст, дни Группы
1 опытная, % 2 опытная, % Контрольная, %
125 9,19 9,52 6,54
135 7,79 6,51 6,89
140 3,86 4,44 4,75
120-140 20,77 20,42 19,16

    Значительное увеличение этого показателя у кур – молодок по сравнению с контролем регистрировали на 5-й день эксперимента соответственно на 40,5% и 45,6%.

    Однако с 15 дня эксперимента высокая скорость роста сохранялась только у кур, получавших препарат в дозе 100 мг/кг. При этом птица 1-й группы превосходила по этому показателю аналогов из контроля и 2-й опытной группы соответственно на 13,1% и 19,7%.

    Таким образом, применение препарата Ветом 1.1 курам-молодкам способствовало повышению интенсивности их роста. Более интенсивный рост отмечали у кур при применении препарата в дозе 100 мг/кг 1 раз в сутки. За весь период опыта среднесуточный прирост у кур - молодок, получавших Ветом 1.1. в дозе 100 мг/кг был выше аналогов из второй опытной группы получавших препарат в дозе 75 мг/кг 2 раза в сутки на 1,9%.

    Полученные данные о повышении интенсивности роста молодняка птиц, согласуются с данными Ноздрина Г.А. и др. (1996,1997) о действии Ветома 1.1. на телят и поросят. Однако птицы оказались менее чувствительными, чем другие виды животных. Так среднесуточный прирост у птиц повышался на (22,6-27,3)%, поросят- 32,2%, у телят до 50%.

    По данным литературным источникам (Ноздрина Г.А. и соавт., 1996) Ветом 1.1. обладает высокой антагонистической активностью в отношении патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, тем самым нормализуется микрофлора в пищеварительном тракте животных, повышается перевариваемость кормов, что ведет к увеличению живой массы.

    Таким образом, Ветом 1.1 стимулирует рост и развитие цыплят и кур - молодок повышает сохранность птиц и их устойчивость к заболеваниям.

    Ветом 1.1. повышает неспецифическую резистентность и устойчивость организма птиц к воздействию неблагоприятных факторов внешней среды.

    В результате проведенных исследований установлено, что сохранность цыплят и кур молодок, под влиянием Ветома 1.1. повышается (табл. 13).

 

Сохранность подопытных кур

Таблица 13

1 опытная группа, % 2 опытная группа, % Контрольная группа, %
96,4± 12,3 92,9± 23,7 85,7± 43,7

    Более высокий процент сохранности цыплят регистрировали в группе, где применяли препарат в дозе 75 мг/кг 1 – 2 раза в день с 1-о дневного возраста. Значение этого показателя у подопытных птиц приближалось к стандарту породы (96-98)%, в то время как в контроле сохранность была значительно ниже нормы. Назначение препарата курам - молодкам в дозе 100мг/кг 1 раз в день повышало сохранность до (96,4± 12,3)%.

    Следует отметить, что в период проведения эксперимента со 130 дня жизни кур в хозяйстве была зарегистрирована вспышка болезни Марека. Учитывая сохранность кур опытных групп можно предположить, что Ветом 1.1 повышает эффективность ветеринарных мероприятий при болезни Марека.

    Влияние Ветома 1.1 на биохимические показатели крови кур

    Нами установлено, что Ветом 1.1 изменяет биохимические показатели крови. Характер изменений уровня общего белка в большей степени зависел от дозы препарата и в меньшей от кратности его введения (табл. 14).

Биохимические показатели крови птиц

Таблица 14

Показатели Группы
1 опытная 2 опытная Контрольная
M± m Cv % M± m Cv % M± m Cv %
В начале опыта:
Кальций 12,53± 0,1 0,99 12,43± 0,09 0,76 12,6± 0,29 2,3
Фосфор 5,3± 0,07 2,66 5,35± 0,13 2,41 5,35± 0,06 1,1
Общий белок, г/л 4,38± 0,25 5,8 4,27± 0,22 5,15 4,38± 0,25 5,8
В конце опыта
Кальций 13,23± 0,2 1,5 12,7± 0,2** 1,7 13,65± 0,1 0,7
Фосфор 5,23± 0,21 3,9 6,03± 0,39 6,4 5,6± 0,22 3,8
Общий белок, г/л 70,8± 0,17* 2,4 50,6± 0,35 6,9 50,0± 0,62 12,5

    Применение Ветома 1.1 в дозе 100 мг/кг вызывало достоверное повышение уровня общего белка в крови кур - молодок по сравнению с аналогами из контроля и птицей, получавшей препарат в дозе 75 мг/кг соответственно на 41,5% и 39,9% (Р<0,05; Р<0,01) (табл. 14).

    У птиц, которым скармливали Ветом 1.1, выявлена тенденция к снижению в крови содержания кальция и фосфора по сравнению с курами из контроля. Такое изменение биохимического состава крови птиц, по-видимому, можно объяснить интенсивным ростом птиц и течением биохимических процессов в их организме.

    Установлено, что Ветом 1.1. оказывает влияние на биохимические показатели крови. Однако характер изменений зависит от дозы вводимого препарата. Изменения в крови были более выражены у птиц, которым Ветом 1.1. вводили в дозе 100 мг/кг 1 раз в день. Характер изменений свидетельствует о более интенсивном течении обменных процессов у подопытных кур - молодок.

 

    Применение Ветома 1.1. при микро- и макроэлементозах

    При клиническом исследовании птиц перед опытом установлено, что у них взъерошенное ломкое перо, бледность гребешка, вокруг клоаки перо испачкано испражнениями. Птица с трудом передвигается, в основном сидят, кости мягкие, что свидетельствует о недостатке Са и Р.

    Для взятия у цыплят крови перед опытом был произведен их убой. При осмотре убитых цыплят обнаружено взъерошенность и мягкость перьев, вокруг клоаки перо испачкано испражнениями, мышцы истощены, бледные, кости мягкие, легко ломаются, грудная кость (киль) имеет S-образный изгиб, на 12-персной кишке обнаружено геморрагическое воспаление.

    При исследовании сыворотки крови у опытных и контрольных цыплят до начала опыта установлено понижение количества кальция и фосфора (табл. 15).

 

Показатели макроэлементов в сыворотке крови

Таблица 15

Группы До опыта После отмены препарата Через 30 дней
  Кальций Фосфор Кальций Фосфор Кальций Фосфор
1-я опытная 8,4± 0,2 3,2± 0,1 9,2± 0,1 3,8± 0,1 11,2± 0,2 4,2± 0,1
2-я опытная 9,3± 0,1 3,0± 0,1 10,4± 0,1 3,7± 0,1 11,9± 0,1 4,0± 0,2
Контроль 8,7± 0,2 2,9± 0,2 8,8± 0,2 3,2± 0,2 9,1± 0,1 3,8± 0,1
Контроль 9,2± 0,1 3,4± 0,1 9,42± 0,1 3,6± 0,1 10,1± 0,1 3,9± 0,1

Взвешивание до начала опыта показало, что по живой массе цыплята контрольной группы превышали аналогов из 1-ой опытной группы на 1,5 % и 2-ой опытной на 0,4% (табл. 16).

    Динамика изменений живой массы птиц опытных и контрольных групп

Таблица 16

Группы До опыта После отмены препарата Через 30 дней
1-я опытная 325± 32,5 540± 54 915± 91,5
2-я опытная 2230± 223 2370± 237 2530± 253
Контрольная 330+33 465+46,5 870+87
Контрольная 2240+224 2300+230 2425+242,5

    Клинический осмотр птицы на 30-й день опыта не выявил у них патологического состояния. Перо чистое, кости твердые, гребешок алый, птица подвижная, передвижение без затруднений, отмечена хорошая поедаемость кормов, живая масса заметно увеличилась (табл. 16). Цыплята 1-ой и 2-ой опытных групп по интенсивности роста превышали аналогов из контроля на 5,2% и 4,3 % соответственно.

    Исследование сыворотки крови на содержание Са и Р показали, что их содержание на 30-й день опыта выше у цыплят опытных групп (табл. 15). По содержанию кальция цыплята 1-ой и 2-й опытных групп превышали аналогов из контроля на 23,1% и 17,8% соответственно. У цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп содержание фосфора в сыворотке крови было выше аналогов из контроля соответственно на 10,5% и 2,6%.

    Таким образом, применение Ветома 1.1 в комплексе с премиксом увеличивает содержание кальция и фосфора в сыворотке крови и интенсивность роста цыплят опытных группах относительно аналогов из контроля. Динамика изменений уровня фосффора и кальция в сыворотке крови птицы 1-й и 2-й опытных групп свидетельствуют о нормализации физиологических механизмов абсорбции минеральных веществ из кишечника и усилению пластических процессов, что способствует повышенной элеминации микро- и макроэлементов из кишечника.

    Усиление интенсивности роста цыплят опытных групп, по сравнению с контрольной, по-видимому, связано с выраженным анаболическим действием препарата Ветом 1.1. Увеличение прироста живой массы связано с более высоким уровнем обмена веществ, активизацией ферментативных процессов в кишечнике и более полным усвоением корма и нормализацией минерального обмена.

    

Применение препарата Ветом 1.1 при гиповитаминозе

    При коррекции гиповитаминоза А, с включением пробиотика Ветом 1.1 в традиционную схему, отмечается быстрое улучшение состояния птицы в опытных группах. Например, цыплята опытной группы уже на 4-й день применения препарата Ветом 1.1, не имели клинических признаков гиповитаминоза А. В то время как, в контрольной группе, птица малоподвижна, оперение взъерошено, аппетит понижен, слабость конечностей. На 7-й день птица обеих групп не имела внешних клинических признаков гиповитаминоза А, однако цыплята опытных групп были более активны.

    При коррекции гиповитаминоза Д, с включением пробиотика Ветом 1.1 в традиционную схему, также отмечали быстрое улучшение состояния птицы опытных групп.

    Для взятия у цыплят 1-й опытной группы крови перед опытом был проведен убой. При осмотре убитых цыплят обнаружена бледность гребешков, сережек и слизистых оболочек, тусклость и ломкость перьев, бледность и огрубение кожи, потеря массы. На слизистых оболочках дыхательных и пищеварительных органов, обнаружены слизистые и творожистые наложения. Геммарогическое воспаление 12-и перстной кишки. Почки увеличены, хорошо заметны отдельные канальца, из-за наложения в них мочекислых солей.

    Макроскопическая оценка тушек цыплят на 30-й день опыта показала, что птица опытной группы упитана и развита в соответствии с физиологической нормой, патологических изменений в органах у них не обнаружено.

    Масса птицы опытных групп была выше аналогов из контроля. На 30-й день эксперимента птица 1-й и 2-й опытных групп по интенсивности роста превышала аналогов из контроля соответственно на 8,8% и 5,2%. Цыплята опытных групп крупнее и активнее, чем в контрольной, однородность в опытной группе составила 98%, а в контрольной 90%. Птица 2-й опытной группы имела более одинаковую массу (2550-2450 грамм) по сравнению с контролем. Яйца в опытной группе были значительно крупнее (табл. 17).

Таблица 17

Группы До применения препарата После отмены препарата На 30-й день опыта
1-я опытная (4 недели) 350+35,0 550+25,0 925+25,0
Контрольная (4 недели) 350+35,0 475+50,0 850+75,0
2-я опытная (27 недель) 2250+125,0 2400+100,0 2550+100,0
Контрольная (27 недель) 2250+125,0 2300+150,0 2425+200,0

    Под влиянием препарата Ветом 1.1 в сыворотке крови увеличивается содержание каротина и Рн. При исследовании сыворотки крови на 30-й день опыта установлено, что по содержанию каротина птица 1-й и 2-й опытных групп превышали показатели контрольной группы соответственно на 44,4% и 40%, по резервной щелочности соответственно на 39,3% и 50,3%. В опытных группах показатели ближе к физиологическим нормам (табл. 18).

Таблица 18

Группы До применения препарата После отмены препарата На 30-й день опыта
Каротин Рн Каротин Рн Каротин Рн
1-я опытная
(4 недели)
0,04+0,02 19,7+0,3 0,08+0,01 31,4+0,2 0,13+0,01 42,2+0,2
Контрольная

 

(4 недели)
0,05+0,01 21,5+0,4 0,06+0,01 27,1+0,1 0,09+0,02 30,3+0,2
2-я опытная
(27 недель)
0,06+0,02 18,8+0,3 0,12+0,02 39,1+0,3 0,21+0,02 51,4+0,3
Контрольная
(27 недель)
0,07+0,01 22,3+0,4 0,09+0,01 28,1+0,2 0,15+0,01 34,2+0,2

    Таким образом, промышленная технология содержания птицы характеризуется резким напряжением обмена веществ и возникновением различных патологических состояний, в том числе гипо- и авитаминозов.

    Наиболее часто вторичные факторы приводят к развитию нарушенного микробиального фона желудочно-кишечного тракта и возникновению заболеваний органов пищеварения с диарейным синдромом. При этом происходит нарушение всасывательной способности кишечника, что не позволяет полноценно усваивать витаминный комплекс из кормов и применяемых премиксов, в результате чего развиваются гиповитаминозы. Ветом 1.1. обладает выраженным терапевтическим эффектом при гиповитаминозах А и Д. Механизм действия пробиотика, по-видимому, связан с нормализацией микробиального фона и нормализацией процессов биосинтеза. В следствие этих процессов усвоение витаминных компонентов идет значительно быстрее. Ветом 1.1 также обладает свойством активизировать ферменты, что позволяет в полной мере усваивать основные витаминные компоненты рациона.

 

    2.2.5 Влияние препарата Ветом 3 на рост, развитие и сохранность цыплят-бройлеров

     Результаты исследований показали, что в опытных группах цыплята, по сравнению с цыплятами-аналогами контрольной группы, отреагировали на введение препарата Ветом 3 относительно большим увеличением средней живой массы, абсолютной и относительной скоростью роста (табл. 19).

Изменение живой массы цыплят-бройлеров

Таблица 19

День опыта Группы
1 опытная, г 2 опытная, г контрольная, г
М±m Cv М±m Cv М±m Cv
1 36,0±0,25 0,2 36,0±0,2 0,18 36,0±0,2 0,18
7 118±31,93 1,03 118±39,4 3,1 117±4,5 3,1
14 275±51,4 5,6 269±14,25 1,5 266±7,5 0,84
21 571±17,8 0,9 564,5±16,5 0,87 559,4±40,9 2,1
28 1030±36,9 1,06 1016±25,3 0,75 1016±26,7 0,78
35 1455±38,2 0,79 1457±44,2 0,97 1457±43,6 0,89
42 1958±18,9 0,29 1958±17,0 0,26 1957,4±7,2 0,1

    Данные таблицы 19 свидетельствуют о том, что в период с 1-го по 7-й день опыты средняя масса цыплят 1-й и 2-й опытной групп, по сравнению с контрольной группой, увеличилась на 0,85%.

    В период с 7-го по 14-й день опыта средняя масса цыплят, по сравнению с контрольной, увеличилась в 1-ой опытной группе на 3,4%, во 2-ой опытной группе на 1,1%.

    В 1-ой, 2-ой опытных и контрольной группе на 14-й день опыта средняя масса цыплят увеличилась соответственно на 133,05%, 127,9% и 127,3%, по сравнению с их живой массой на 7-ой день опыта.

    В период с 14-го по 21-й день опыта средняя масса цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп увеличилась, по сравнению с контролем, соответственно на 2,23% и 0,9%.

    В 1-ой, 2-ой опытных и контрольной группе на 21-й день опыта средняя масса цыплят увеличилась соответственно на 107,6%, 109,6% и 110%, по сравнению с их живой массой на 14-й день опыта.

    В период с 21-го по 28-й день опыта средняя масса цыплят в 1-ой опытной группе, по сравнению с контрольной группой увеличилась на 1,4%, средняя живая масса цыплят 2-ой опытной группы была одинаковая со средней живой массой цыплят контрольной группы.

    В 1-ой, 2-ой опытных и контрольной группе на 28-й день опыта средняя живая масса цыплят увеличилась соответственно на 80,3%, 80,1% и 81,7%, по сравнению с их живой массой на 21-й день опыта.

    В период с 28-го по 35-й день опыта средняя масса цыплят в 1-ой опытной группе уменьшилась на 0,1%, по сравнению с контрольной группой. Средняя масса цыплят 2-ой и контрольной групп была одинаковой.

    В 1-ой, 2-ой опытных и контрольной группе на 35-й день опыта средняя масса цыплят увеличилась соответственно на 41,2%, 43,4% и 43,4%, по сравнению с их живой массой на 28-й день опыта.

    В период с 35-го по 42-й день опыта средняя масса цыплят в 1-ой и 2-ой опытных группах увеличилась, по сравнению с контрольной группой, соответственно на 0,05% и 0,02%.

    В 1-ой, 2-ой опытных и контрольной группе на 35-й день опыта средняя масса цыплят увеличилась соответственно на 34,5%, 34,4% и 34,3%, по сравнению с их живой массой на 35-й день опыта.

    Таким образом, максимальный прирост живой массы у цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп, относительно аналогов из контроля, приходится на 14-й день опыта.

 

Таблица 20

Динамика среднесуточного прироста цыплят-бройлеров, г

День опыта Группы
1 опытная 2 опытная Контрольная
М±m Cv М±m Cv М±m Cv
1-7 11,7±0,5 11,0 11,7±0,52 11,09 11,57±0,5 11,9
7-14 22,42±0,6 8,04 21,57±0,65 8,2 21,2±0,62 8,0
14-21 42,28±1,03 6,05 42,14±1,2 6,1 41,85±1,0 6,01
21-28 65,57±0,92 0,52 64,57±0,8 0,45 65,28±0,8 0,4
28-35 60,7±2,5 16,01 63,0±2,04 16,9 63,0±2,02 16,02
35-42 71,8±1,6 6,83 71,4±1,5 6,8 71,4±1,3 6,2
1-42 45,76±1,07 6,02 45,73±1,2 6,2 45,7±1,3 6,01

    Как видно из таблицы 20 в период с 1-го по 7-й день опыта скорость роста цыплят в 1-й и 2-й опытных группах, по сравнению с контрольной группой, увеличилась на 1,12%.

    В период с 7-го по 14-й день опыта скорость роста цыплят увеличилась, по сравнению с контрольной группой на 5,7% в 1-ой опытной группе и на 1,7% во 2-ой опытной группе.

    В период с 14-го по 21-й день опыта скорость роста цыплят в 1-й и 2-й опытных группах была выше, по сравнению с контролем, соответственно на 1,14% и 0,8%.

    В период с 21-го по 28-й день опыта скорость роста, по сравнению с контрольной группой, увеличилась на 0,56% в 1-ой опытной группе и уменьшилась на 0,9% во 2-ой опытной группе.

    В период с 28-го по 35-й день опыта скорость роста, по сравнению с контрольной группой, уменьшилась на 4,7% в 1-ой опытной группе и была одинаковой с контролем во 2-ой опытной группе.

    В период с 35-го по 42-й день опыта скорость роста цыплят 1-ой опытной группы увеличилась на 0,5%, по сравнению с контрольной группой, скорость роста цыплят 2-й опытной группы одинаковая со скоростью роста цыплят контрольной группы.

    За весь период опыта (с 1-го по 42-й день) скорость роста цыплят 1-й и 2-й опытных групп, по сравнению с контрольной группой, увеличена на 0,13% и 0,06% соответственно.

    Таким образом, среднесуточный прирост цыплят 1-й опытной группы, по сравнению с аналогами контроля, выше на протяжении с 1-го по 28-й день опыта. Наиболее высок этот показатель на 14-й день опыта и составляет 5,7%.

    Среднесуточный прирост цыплят во 2-й опытной группе, по сравнению с контрольной группой, выше в период с 1-го по 21-й день опыта. Наиболее высок этот показатель в 14-й день опыта и составляет 1,7%.

Динамика относительной скорости роста цыплят-бройлеров (по Броди)

Таблица 21

День опыта Группы
1 опытная, % 2 опытная, % контрольная, %
М±m Cv М±m Cv М±m Cv
1-7 110±1,2 10,1 110±1,2 10,3 105±1,5 10,02
7-14 79,8±0,3 9,2 78,03±0,4 9,4 77,03±1,5 9,0
14-21 70,18±1,2 6,4 70,8±1,3 6,9 70,9±1,5 7,05
21-28 57,19±0,9 5,1 57,2±1,1 5,2 58,03±0,8 5,05
28-35 34,2±2,3 16,03 35,6±2,7 16,06 35,6±2,1 16,0
35-42 29,4±1,6 6,9 29,29±1,7 6,9 29,29±1,0 6,2
1-42 192,7±1,2 6,07 192,7±1,3 6,10 192,7±1,5 6,01

    Данные таблицы 6 указывают, что в период с 1-го по 7-й день опыта скорость роста цыплят в 1-ой и 2-ой опытной группах, по сравнению с контрольной группой увеличилась на 4,8%.

    В период с 7-го по 14-й день опыта скорость роста цыплят в опытных группах, по сравнению с контрольной группой, увеличилась в 1-ой и 2-ой опытной группе соответственно на 2,5% и 0,2%.

    В 1-ой опытной группе в период с 7-го по 14-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 27,45%, по сравнению со скоростью их роста в период с 1-го по 7-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе в период с 7-го по 14-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 29%, по сравнению со скоростью их роста в период с 1-го по 7-й день опыта.

    В контрольной группе в период с 7-го по 14-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 26,6%, по сравнению со скоростью их роста в период с 1-го по 7-й день опыта.

    В период с 14-го по 21-й день опыта скорость роста цыплят в опытных группах, по сравнению с контрольной группой, уменьшилась на 1 % в 1-ой опытной группе и на 0,1% во 2-ой опытной группе.

    В 1-ой опытной группе в период с 14-го по 21-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 12,3%, по сравнению со скоростью их роста в период с 7-го по 14-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе в период с 14-го по 21-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 9,2%, по сравнению со скоростью их роста в период с 7-го по 14-й день опыта.

    В контрольной группе в период с 14-го по 21-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 7,9%, по сравнению со скоростью их роста в период с 7-го по 14-й день опыта.

    В период с 21-го по 28-й день опыта скорость роста цыплят в 1-ой опытной группе, по сравнению с контрольной, уменьшилась на 1,4%; во 2-ой опытной группе этот показатель совпадает с контролем.

    В 1-ой опытной группе в период с 21-го по 28-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 18,5%, по сравнению со скоростью их роста в период с 14-го по 21-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе в период с 21-го по 28-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 19,2% по сравнению со скоростью их роста в период с 14-го по 21-й день опыта.

    В контрольной группе в период с 21-го по 28-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 18,2%, по сравнению со скоростью их роста в период с 14-го по 21-й день опыта.

    В период с 28-го по 35-й день опыта скорость роста цыплят в 1-ой опытной группе, по сравнению с контрольной, уменьшилась на 3,9%; во 2-ой опытной группе скорость их роста совпадает с контролем.

    В 1-ой опытной группе в период с 28-го по 35-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 40,2%, по сравнению со скоростью их роста в период с 21-го по 28-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе в период с 28-го по 35-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 37,7%, по отношению к скорости их роста в период с 21-го по 28-й день опыта.

    В контрольной группе в период с 28-го по 35-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 38,6%, по сравнению со скоростью их роста в период с 21-го по 28-й день опыта.

    В период с 35-го по 42-й день опыта скорость роста цыплят увеличилась, по сравнению с контролем на 0,7% в 1-ой опытной группе, во 2-ой опытной группе этот показатель совпадает с контролем.

    В 1-ой опытной группе в период с 35-го по 42-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 14%, по сравнению со скоростью их роста в период с 28-го по 35-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе в период с 35-го по 42-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 17,7%, по сравнению со скоростью их роста в период с 28-го по 35-й день опыта.

    В контрольной группе в период с 35-го по 42-й день опыта скорость роста цыплят уменьшилась на 17,7%, по сравнению со скоростью их роста в период с 28-го по 35-й день опыта.

    За весь опытный период (с 1-го по 42-й день) скорость роста цыплят в 1-ой и во 2-ой опытных группах, по сравнению с контрольной – одинаковая.

    Таким образом, наиболее высокая скорость роста цыплят в 1-ой и во 2-ой опытных группах, по сравнению с аналогичным показателем в контрольной группе, наблюдалась в период с 1-го по 7-й день опыта и составляла величину 4,8%. В период с 7-го по 14-й день опыта скорость роста цыплят в опытных группах, по сравнению с контрольной группой, была ниже, чем в контроле на 2,5% в 1-ой опытной группе и выше, чем в контроле на 0,2% во 2-ой опытной группе.

 

Сохранность цыплят-бройлеров за опытный период

Таблица 22

Показатель Группы
1 опытная 2 опытная контрольная
Голов % Голов % Голов %
Сохранность

 

в 1 неделю
78 100 78 100 77 98,72
Сохранность
во 2 неделю
77 98,72 76 97,43 76 97,43
Сохранность
в 3 неделю
77 98,72 76 97,43 76 97,43
Сохранность в 4 неделю 77 98,72 76 97,43 76 97,43
Сохранность в 5 неделю 73 93,52 70 89,74 70 89,74
Сохранность в 6 неделю 69 88,46 67 85,89 66 85,70

    Данные таблицы 22 указывают, что сохранность цыплят в первую неделю опыта в 1-ой и 2-ой опытных группах выше, по сравнению с контрольной группой на 1,28%.

    Во 2-ю неделю опыта сохранность цыплят в 1-ой опытной группе, выше по сравнению с контрольной группой на 1,29%; во 2-ой опытной группе сохранность цыплят одинакова с контрольной группой.

    В 3-ю неделю опыта сохранность цыплят в 1-ой опытной группе выше, по сравнению с контрольной группой, на 1,29%; во 2-ой опытной группе сохранность цыплят одинакова с контрольной группой.

    В 4-ю неделю опыта сохранность цыплят в 1-ой опытной группе выше, по сравнению с контролем, на 1,29%, во 2-ой опытной группе сохранность цыплят одинакова с контрольной группой.

    В 5-ю неделю опыта сохранность цыплят в 1-ой опытной группе выше, по сравнению с контролем, на 3,84%; во 2-ой опытной группе сохранность цыплят одинакова с контрольной группой.

    В 6-ю неделю опыта сохранность цыплят в 1-ой и 2-ой опытных группах выше, по сравнению с контрольной группой, соответственно на 2,75% и 0,19%.

    Сохранность цыплят за весь опытный период выше в 1-ой и 2-ой опытных группах, по сравнению с контрольной, соответственно на 4,5% и 1,5%.

    Самый высокий процент сохранности у цыплят 1-ой опытной группы при применении препарата Ветом 3 в дозе 75 мг/кг 2 раза в сутки через 24 часа в течение месяца.

    

    2.2.6 Влияние Ветома 3 на качественный и количественный состав микрофлоры в кишечнике цыплят

    Под влиянием Ветома 3 изменяется микробный пейзаж кишечника цыплят –бройлеров (табл. 23).

 

    Численность отдельных групп микроорганизмов в фекалиях цыплят

Таблица 23

Показатели 1 опытная 2 опытная контрольная
М±m Cv % М±m Cv % М±m Cv %
В начале опыта
Бифидо-бактерии 4,3±0,34 13,7 36,7 4,3±0,34 13,7 36,7 4,3±0,34 13,6 36,7
Молочнокис
лые бактерии
2,3±0,34 25,6 19,6 2,3±0,34 25,6 19,6 2,3±0,34 25,6 19,6
Кишечные палочки с нормальной
ферментативной активностью
5,16±0,12 4,3 43,7 5,16±0,12 4,3 43,7 5,16±0,12 4,3 43,7
На 20-й день опыта
Бифидо-бактерии 8,66±0,34 2,26 39,5 8,33±0,34 2,36 39,1 8±0 - 38,6
Молочнокис
лые бактерии
5,66±0,34 3,4 25,8 5,33±0,67 7,25 25,0 5±0,57 16,6 24,2
Кишечные палочки с нормальной ферментатив
ной активностью
7,58±0,38 8,8 34,7 7,64±0,24 5,3 35,9 7,7±0,35 7,9 37,2
На 40-й день опыта
Бифидо-бактерии 8,66±0,34 2,26 39,4 8,33±0,34 2,36 39,2 8±0 - 39,1
Молочнокис
лые бактерии
5,66±0,34 3,4 25,8 5,33±0,67 7,25 25,1 5±0,57 16,6 24,5
Кишечные палочки с нормальной ферментатив
ной активностью
7,65±0,3 6,9 34,8 7,59±0,26 5,9 35,7 7,45±0,18 4,16 36,4

    Как видно из таблицы 23 на 20-й день опыта количество бифидобактерий у цыплят опытных групп, по сравнению с контрольной группой, увеличилось в 1-ой опытной группе на 8,25%, во 2-ой опытной группе на 4,12%.

    В первой опытной группе цыплят на 20-й день опыта количество бифидобактерий увеличилось на 101,4%, по сравнению с количеством бифидобактерий в 1-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе на 20-й день опыта количество бифидобактерий увеличилось на 93,7%, по сравнению с количеством бифидобактерий в 1-й день опыта.

    В контрольной группе на 20-й день опыта количество бифидобактерий увеличилось на 86%, по сравнению с количеством бифидобактерий в 1-й день опыта.

    На 20-й день опыта количество молочнокислых бактерий у цыплят опытных групп, по сравнению с контрольной группой, увеличилось в 1-ой опытной группе на 13,2%, во 2-ой опытной группе на 6,6%.

    В 1-ой опытной группе на 20-й день опыта количество молочнокислых бактерий увеличилось на 146%, по сравнению с количеством молочнокислых бактерий в 1-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе на 20-й день опыта количество молочнокислых бактерий увеличилось на 131,7%, по сравнению с количеством молочнокислых бактерий в 1-й день опыта.

    В контрольной группе на 20-й день опыта количество молочнокислых бактерий увеличилось на 117,3% по сравнению с количеством молочнокислых бактерий в 1-й день.

    На 20-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью у цыплят опытных групп уменьшилось, по сравнению с контрольной группой: в 1-ой опытной группе на 1,4%, во 2-ой опытной группе на 0,8%.

    В 1-ой опытной группе на 20-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью увеличилось на 46,8%, по сравнению с количеством её в 1-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе на 20-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью увеличилось на 48,0%, по сравнению с количеством её в 1-й день опыта.

    В контрольной группе на 20-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью увеличилось на 49,2%, по сравнению с количеством её в 1-й день опыта.

    На 40-й день опыта количество бифидобактерий у цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп увеличилось, по сравнению с контрольной группой, соответственно на 8,25% и 4,12%.

    Количество молочнокислых бактерий увеличилось у цыплят опытных групп, по сравнению с контрольной группой: в 1-ой опытной группе на 13,2%; во 2-ой опытной группе на 6,6%.

    В 1-ой, 2-ой опытных и контрольной группах на 40-й день опыта количество бифидобактерий и молочнокислых бактерий не изменяется, по сравнению с количеством бифидобактерий и молочнокислых бактерий в соответствующих группах в 20-й день опыта.

    На 40-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью у цыплят опытных групп, увеличилось, по сравнению с контрольной группой: в 1-ой опытной группе на 2,7%, во 2-ой опытной группе на 1,8%.

    В 1-ой опытной группе на 40-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью увеличилось на 0,9%, по сравнению с количеством её в 20-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе на 40-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью уменьшилось на 0,6%, по сравнению с количеством её в 20-й день опыта.

    В контрольной группе на 40-й день опыта количество кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью уменьшилось на 3,2%, по сравнению с количеством её в 20-й день опыта.

    Таким образом, количество полезной микрофлоры у цыплят опытных групп выше, по сравнению с контрольной группой: бифидобактерий – в 1-ой опытной группе на 8,25%, во 2-ой опытной группе на 4,12%; молочнокислых бактерий – в 1-ой опытной группе на 13,2%, во 2-ой опытной группе - на 6,6%; кишечной палочки с нормальными ферментативными свойствами – в 1-ой опытной группе на 2,7%, во 2-ой опытной группе на 1,8%.

 

    2.2.7 Влияние препарата Ветом 3 на морфологические показатели крови у цыплят

    У цыплят – бройлеров при назначении препарата Ветом 3 изменяются морфологические показатели крови (табл. 24, рис. 9, 10).

    Морфологические показатели крови изменяются в пределах физиологических норм.

    Данные таблицы 24 указывают, что на 20-й день опыта количество эозинофилов у цыплят опытных групп уменьшилось, по сравнению с контрольной группой, в 1-ой опытной группе на 1,6%, во 2-ой опытной группе количество эозинофилов одинаковое с контролем.

    Количество псевдоэозинофилов у цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп увеличилось, по сравнению с контрольной группой: в 1-ой опытной группе на 2,3%, во 2-ой опытной группе на 1,3%. Количество лимфоцитов у цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп увеличилось, по сравнению с контрольной группой, соответственно на 3,5% и 1,4%.

    В 1-ой опытной группе на 20-й день опыта количество эозинофилов и псевдоэозинофилов уменьшилось соответственно на 21,2% и 34,8%, количество лимфоцитов увеличилось на 250%, по сравнению с количеством эозинофилов, псевдоэозинофилов и лимфоцитов в 1-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе на 20-й день опыта количество эозинофилов и псевдоэозинофилов уменьшилось, соответственно на 19,9% и 34,1%, количество лимфоцитов увеличилось на 243%, по сравнению с количеством эозинофилов, псевдоэозинофилов и лимфоцитов в 1-ый день опыта.

    

    Морфологические показатели крови

Таблица 24

Показатели Группы
1 опытная 2 опытная контрольная
М±m Cv М±m Cv М±m Cv
В начале опыта
Базофилы, % 4,06±0,07 2,9 4,06±0,07 2,9 4,06±0,07 2,9
Эозинофилы, % 20,06±0,07 0,7 20,06±0,07 0,7 20,06±0,07 0,7
Псевдоэозинофилы, % 60,0±0,04 0,17 60,0±0,04 0,17 60,0±0,04 0,17
Лимфоциты, % 10,0±3,9 20 10,0±3,9 20 10,0±3,9 20
Моноциты, % 6,05±0,05 1,65 60,0±0,05 1,65 60,0±0,05 1,65
На 20-й день опыта
Базофилы, % 4,06±0,07 2,9 4,06±0,07 2,9 4,06±0,07 2,9
Эозинофилы, % 15,8±0,03 0,37 16,06±0,07 0,7 16,06±0,07 0,7
Псевдоэозинофилы, % 39,1±0,03 0,37 39,5±0,03 0,37 40,03±0,04 0,17
Лимфоциты, % 35,0±0,06 0,31 34,3±0,4 2,0 33,8±39 20
Моноциты, % 6,05±0,05 1,65 6,05±0,05 1,65 6,05±0,05 1,65
На 40-й день опыта
Базофилы, % 3,06±0,06 3,59 3,06±0,06 3,59 3,06±0,06 3,59
Эозинофилы, % 12,7±0,17 2,3 12,8±0,46 6,2 12,93±0,07 0,92
Псевдоэозинофилы, % 22,06±0,7 0,54 22,06±0,07 0,54 22,06±0,07 0,54
Лимфоциты, % 57,16±0,08 0,24 57,06±0,001 0,5 56,93±0,07 0,21
Моноциты, % 5,02±0,01 0,2 5,02±0,01 0,2 5,02±0,01 0,2

    В контрольной группе на 20-й день опыта количество эозинофилов и псевдоэозинофилов уменьшилось соответственно на 19,9% и 33,3%, количество лимфоцитов увеличилось на 238%, по сравнению с количеством эозинофилов псевдоэозинофилов и лимфоцитов в 1-ый день опыта.

    На 40-й день опыта количество эозинофилов у цыплят опытных групп уменьшилось, по сравнению с контрольной группой, в 1-ой опытной группе на 1,7%, во 2-ой опытной группе на 1,1%.

    Количество псеводэозинофилов у цыплят опытных групп и контрольной одинаковое.

    Количество лимфоцитов у цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп увеличилось, по сравнению с контрольной группой, соответственно на 0,4% и 0,2%.

    В 1-ой опытной группе на 40-й день опыта количество базофилов, эозинофилов, псевдоэозинофилов и моноцитов уменьшилось, соответственно на 24,6%, 19,6%, 43,5% и 17%, количество лимфоцитов увеличилось на 63,3%, по сравнению с количеством базофилов, эозинофилов, псевдоэозинофилов, моноцитов и лимфоцитов на 20-й день опыта.

    Во 2-ой опытной группе на 40-й день опыта количество базофилов, эозинофилов, псевдоэозинофилов и моноцитов уменьшилось, соответственно на 24,6%, 20,3%, 44,1% и 17%, количество лимфоцитов увеличилось на 66,3%, по сравнению с количеством базофилов, эозинофилов, псевдоэозинофилов, моноцитов и лимфоцитов на 20-й день опыта.

    В контрольной группе на 40-й день опыта количество базофилов, эозинофилов, псевдоэозинофилов и моноцитов уменьшилось, соответственно на 24,6%, 19,4%, 44,89% и 17%, количество лимфоцитов увеличилось на 68,43%, по сравнению с количеством базофилов, эозинофилов, псевдоэозинофилов, моноцитов и лимфоцитов на 20-й день опыта.

    Таким образом, наиболее высокий процент содержания лимфоцитов у цыплят 1-ой и 2-ой опытных групп, по сравнению с контрольной группой, наблюдается на 20-й день опыта соответственно на 3,5% и 1,4%. Что говорит о наиболее высокой неспецифической резистентности цыплят опытных групп в этот период.

    Для получения полноценного здорового молодняка необходимо обеспечить высокий уровень резистентности у животных, предохранить их от воздействия неблагоприятных факторов (Антипов В.А. 1995; Субботин В.В. 1996; Алиев И.М. 1998 и др.).

    В нашем эксперименте наиболее высокий показатель средней массы цыплят опытных групп, по сравнению с контрольной, отмечали во вторую неделю опыта. При назначении препарата Ветом 3 в дозе 75 мг на кг живой массы с кратностью 1 раз в сутки через 24 часа средняя живая масса увеличилась на 1,1%, а в дозе 75 мг на кг массы с кратностью 2 раза в сутки через 24 часа средняя живая масса увеличилась на 3,4%. Среднесуточный прирост увеличился соответственно на 1,7% и 5,7%.

    Полученные нами данные согласуются с результатами исследований многих авторов. Леонович В.В. (1971), Полонская М.С. (1973), Попова С.В., Макарова М.М. (1985) и другие авторы в выполненных ими экспериментах установили, что при скармливании комбинированных культур ацидофильных бактерий наблюдается увеличение привесов цыплят на (15-20)%. В экспериментах выполненных Архангельская Л.Г. и соавторами 1983 году, установлено, что при даче ацидофилина цыплятам, увеличение привесов составляет величину (8-18)%. По данным полученным Полонской М.С. с соавторами в 1984 году сухой ацидофилин обеспечивает увеличение привесов цыплят на (10-15)%. Эксперименты выполненные Сизова А.В. в 1974 году, Зеленков Н.Т. в 1990 году, Тимошко М.А. в 1990 году полазали, что скармливание пропионовокислых бактерий ускоряет рост и повышает привесы животных на 37%.

    Сохранность цыплят за весь опытный период наблюдалась выше в группах, которым назначали препарат Ветом 3. Так, при добавлении в корм препарата в дозе 75 мг на кг массы с кратностью 1 раз в сутки в течение месяца наблюдалась сохранность цыплят выше, чем в контрольной группе, на 1,5%, а при назначении препарата Ветом 3 в дозе 75 мг на кг массы с кратностью 2 раза в сутки в течение месяца соответственно на 4,5%.

    По данным полученных в экспериментах выполненных Сорокиным В.В. и соавторами в 1978 году при скармливании цыплятам с первых дней жизни микробных препаратов (ПАБК, колибактерина, ацидофилина) уменьшился падёж в первую декаду выращивания в 3 раза, по сравнению с контрольной группой. При этом в опытных группах отход цыплят наблюдался главным образом в первые две недели выращивания и обеспечивался, по мнению авторов, естественным браком и гибелью слабых цыплят, тогда как в контрольной группе падёж, достигнув максимума в первые пять-семь дней, оставался таким и в дальнейшем.

    В экспериментах выполненных Архангельской Л.А. и соавторами в 1983 году, установлено, что при назначении сухого ацидофилина цыплятам, их отход снизился на (1,0-1,7)% по сравнению с контролем.

    Эксперименты, выполненные Полонской М.С. и соавторами в 1984 году, показали, что сухой ацидофилин снижает отход цыплят на 2,5%.

    Из данных полученных в экспериментах выполненных нами следует, что препарат Ветом 3 оказывает положительное влияние на микробиоценоз кишечника. При применении препарата в дозе 75 мг на кг массы с кратностью 1 раз в сутки нами зарегистрировано более высокое содержание в желудочно-кишечном тракте молочнокислых бактерий, бифидобактерий и кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью относительно аналогичных показателей в контрольной группе, соответственно на 6,6%, 4,12% и 1,8%, а при применении препарата Ветом 3 в дозе 75 мг на кг живой массы с кратностью 2 раза в сутки эти показатели составили соответственно 13,2%, 8,25% и 2,7%.

    Такой состав микрофлоры желудочно-кишечного тракта способствует более эффективному расщеплению и последующему всасыванию составных частей корма и насыщению организма биологически активными веществами, а также к подавлению роста и размножения гнилостных, условно – патогенных и патогенных микроорганизмов в желудочно-кишечном тракте, предотвращению проникновения в слизистую оболочку патогенных представителей семейства энтеробактерий.

    Из данных, полученных в экспериментах Блохиной И.Н., Дорофейчук В.Г. в 1979 году, Душкина В.А. (1983), Антипова В.А. (1995), и других авторов следует, что при использовании сухого бифидумбактерина, из в состав которого входят живые бифидобактерии, следует, что бифидобактерии оказывают выраженное профилактическое и лечебное действие при желудочно-кишечных расстройствах, а также нормализуют состав микрофлоры кишечника, что в свою очередь стимулирует рост и развитие молодняка сельскохозяйственных животных.

    Эксперименты, выполненные Владимировым И.А. в 1972 году, Леоновичем В.В. в 1973 году и другими авторами показали, что при совместном использовании антибиотикоустойчивых штаммов и антибиотиков наблюдается высокая приживаемость ацидофильных бактерий колипаратифозной группы в кишечнике.

    Эксперименты, выполненные Сизовой А.В. в 1974 году, Зеленковым Н.Т. в 1990 году, Тимошко М.А. в 1990 году показали, что скармливание пропионовокислых бактерий стимулирует развитие молочнокислых бактерий в кишечнике и увеличивает их количество в 2,4 раза.

    Эксперименты, выполненные нами, показали, что под влиянием препарата Ветом 3 повышается уровень неспецифической резистентности организма цыплят и устойчивость его к действию неблагоприятных факторов внешней среды. При назначении препарата в дозе 75 мг на один кг живой массы с кратностью 1 раз в сутки повышается количество (в пределах физиологических норм) лимфоцитов, по сравнению с контролем, на 1,4%, а при назначении препарата в дозе 75 мг на кг живой массы с кратностью 2 раза в сутки на 3,5%.

    Анализ литературных источников показал, что аналогичными свойствами обладают пробиотики бактерин SL, Ветом 1.1., бактисубтил, биоспорин, споробактерин, колибактерин, ПАБК, АБК, сухой ацидофилин, ацидофильное молоко, сухой бифидумбактерин из живых культур бифидобактерий, специфических для желудочно-кишечного тракта человека, ПКБ и другие (Тимошко М.А. 1990; Ноздрин Г.А., Наумкин И.В. 1996; Тараканов Б.В. 1999 и другие).

    Из данных, полученных в выполненных нами исследованиях можно предположить, что механизм действия препарата Ветом 3 весьма многообразен. После приема препарата бактериальные клетки пробиотика (Bac. Subtilis), активно продуцируют ферменты, аминокислоты, антибиотические вещества и другие физиологически активные субстраты, оказывают антибактериальное действие, усиливают обмен веществ и повышают общую резистентность организма.

     Таким образом, препарат Ветом 3 оказывает как прямое антагонистическое действие на патогенные и условно патогенные микроорганизмы, так и опосредованное – путем активизации защитных сил макроорганизма. Результаты наших исследований согласуются с данными, полученными в экспериментах, выполненных ранее другими авторами в процессе исследования аналогичных препаратов – пробиотиков: Шманенко Н.А. 1976; Антипов В.А. 1981; Тараканов Б.В. 1987, 2000; Муллакаева Л.А. 1991 и другими исследователями.

    Таким образом, с учётом полученных нами данных, можно говорить о том, что в условиях промышленного производства, применение препарата Ветом 3, способствует нормализации процессов обмена веществ, повышению резистентности организма, продуктивности и сохранности птицы.

    

ВЫВОДЫ И ПРЕДЛОЖЕНИЯ

  1. Ветом 1.1. повышает интенсивность роста и развития цыплят.
  2. При применении препарата Ветом 1.1. с 1-дневного возраста повышается среднесуточный прирост у цыплят-бройлеров на (12,5-18,7)%, с 5-дневного возраста- на 5%, а со 120-и дневного возраста - на (7,3-9,4)%.
  3. Характер изменения скорости роста у птиц зависит в большей степени от возраста цыплят, чем от кратности применения препарата. Наибольшая скорость роста наблюдается у цыплят, которым применяли препарат с однодневного возраста. По скорости роста они превысили аналогов из контроля на (10,3-15,3)%, а при применении с пятидневного возраста только – на 3,7%.
  4. Препарат Ветом 1.1. изменяет биохимический состав крови птиц. Содержание общего белка в сыворотке крови у цыплят опытной группы на 39,9% выше аналогов из контроля.

    5. Введение в традиционную схему коррекции микро- и макроэлементов препарата Ветома 1.1 обеспечивает более высокий терапевтический эффект.

    6. Введение в традиционную схему лечения и профилактики гиповитаминозов препарата Ветом 1.1, обеспечивает более высокий терапевтический эффект.

    7. Содержание витаминов, кальция и фосфора в сыворотке крови под влиянием препарата Ветом 1.1 повышается.

  1. Препарат Ветом 1.1. при применении в указанных в отчете дозах не вызывает побочных действий у цыплят-бройлеров и кур-молодок.
  2. Препарат Ветом 3 обладает ростостимулирующим действием преимущественно в первые две недели его применения. Среднесуточный прирост живой массы у цыплят-бройлеров в период с 7-го по 14-й день жизни при назначении его в дозе 75 мг на кг живой массы 1 раз в сутки через 24 часа повышает на 1,7%, а в дозе 75 мг на кг живой массы 2 раза в сутки через 24 часа на 5,7%.
  3. Применение препарата Ветом 3 в дозе 75 мг на кг живой массы с кратностью 2 раза в сутки с интервалом между введениями в 24 часа обеспечивает оптимальный прирост живой массы цыплят-бройлеров.
  4. Под влиянием препарата Ветом 3 повышается уровень неспецифической резистентности организма и устойчивость цыплят к действию неблагоприятных факторов внешней среды, так за опытный период, количество лимфоцитов в крови увеличивается на (0,2-0,4)%. Сохранность цыплят за весь опытный период повышается на (1,5-4,5)%.
  5. Препарат Ветом-3 оказывает положительное влияние на микробный пейзаж кишечника, увеличивая количество молочнокислых бактерий на (6,6-13,2)%, бифидобактерий на (4,12-8,25)% и кишечной палочки с нормальными ферментативными свойствами на (1,8-2,7)%.

    14. При назначении препарата в дозе 75 мг на кг живой массы с кратностью 1 раз в сутки с интервалом через 24 часа экономическая эффективность на рубль затрат составляет 1,4 рубля, а в дозе 75 мг на кг живой массы с кратностью 2 раза в сутки с интервалом через 24 часа – 3,6 рубля.

    15. Препарат Ветом 3 в применяемых дозах не вызывает видимых реакций аллергического характера и побочного действия.

    16. Препарат удобен в применении групповым методом в условиях промышленного производства.

    17. Для повышения интенсивности роста и сохранности цыплят, птицефабрикам можно рекомендовать применение препарата Ветом 1.1. в дозе 75 мг/кг с кратностью 1 раз в день 5 дней подряд с первого дня жизни цыплят. Для увеличения сохранности кур - молодок и взрослой птицы препарат следует назначать по 100 мг/кг с кратностью 1 раз в день в течение 5-ти дней.

    18. Препарат Ветом 3 для стимуляции роста, развития и повышения сохранности у цыплят-бройлеров целесообразно применять внутрь с 1-дневного возраста в дозе 75 мг/кг с кратностью 2 раза в сутки через 24 часа в течение 2-х недель.

      ЛИТЕРАТУРА


       1 Абашидзе У.Э. Влияние цинка, магния и наличие их в рационе на активность некоторых металлоэлементов в тканях кур. Scientific Associate – Боровск, 1987.
       2 Агеев Н.А. Промышленное птицеводство. М+n Колос, 1987.
       3 Алексеев Ф.Ф., Аспирян М.А., Бахтин И.А. и др. Промышленное птицеводство. М+n Агропромиздат, 1985.
       4 Аликаев В.А., Данилевский В.М. Болезни птиц. М+n Колос, 1974.
       5 Аликин Ю.С., Мосычева В.И. Перспективы разработки и применения препаратов нового поколения БАВ, в качестве лечебных и профилактических средств при болезнях молодняка. // Актуальные вопросы ветеринарии.: Тез. Докл. 1-й научн. Практ. Конф. Факт. Вет. Мед. НГАУ. Н-ск, 1997., с. 11-12.
       6 Аликин Ю.С., Мосычева В.И., Клименко В.П. Ветеринарные препараты на основе БАВ- новый класс эффективных, экономических препаратов. // Новые фармакологические средства в ветеринарии: Тез. Докл. 1-й межгос., межвуз. Научно-практич. Конф.- Сиб., 1996 г., с. 37-38.
       7 Алипов В.В. Минеральное питание сельскохозяйственных животных. Scientific Associate – ВАСХНИЛ, 1987, с.12-18.
       8 Андервуд Э.Н. Микроэлементы в животноводстве. В. Pilipenko Микроэлементы. М., 1987, с.51-52.
       9 Андреева Н.Л. Ростостимулирующие свойства иммуномодуляторов. // Новые фармакологические средства в ветеринарии.: Тез. Докл. Научн. - практ. L. Klimova 1990, с. 32.
       10 Андреева Н.Л. Ростостимулирующие свойства тимогена. // Сб. науч. Трудов. Л-д вет. Ин-т, 1990, № 106, с. 71-73.
       11 Апатенко В.М. Болезни птиц при интенсивных методах ведения отрасли. Харьков, 1996, с. 3-5.
       12 Артемичев Н.А. Рецептурный справочник по болезням птиц. М+n Колос, 1988.
       13 Барабина М.Т. Профилактика возрастных иммунодефицитов и гастроэнтеритов у цыплят-бройлеров.: Автореф. Дис. Канд. С-х наук. Витебск, 1996, с. 16.
       14 Беклова А.В. Птицеводство, № 4, 29, 1967.
       15 Бессарабов Б.Ф. Дифференциальная диагностика и профилактика заболеваний сельскохозяйственной птицы. М+n Россельхозиздат, 1989.
       16 Бессарабов Б., Крыканов А. И др. Влияние пробиотиков на рост и сохранность цыплят. // Птицеводство, 1996, № 1, с. 25.
       17 Бессарабов Б.Ф. Болезни кур. М+n Россельхозиздат, 1974.
       18 Бессарабов Б.Ф. Болезни сельскохозяйственной птицы. М+n Колос, 1983.
       19 Бессарабов Б.Ф., Обухов Л.М., Штильман И.Д. Методы контроля и профилактики незаразных болезней птиц. М+n Росагропромиздат, 1988.
       20
       21 Богатырева Г.А., Соколов В.М. Организация полноценного питания животных и птицы, за счет использования биологически активных веществ. Novosibirsk 1999
       22 Богданов Г.А., Власова К.А. Рост и развитие сельскохозяйственных птиц. Scientific Associate – УСХА, 1986.
       23 Болотников И.А. Словарь иммунологических терминов. М., 1991, с. 125.
       24 Бурделев Т.Е., Жильцов В.Г., Соболев В.А. Основы ветеринарии. М+n Колос, 1971.
       25 Бутырина П.С., Селиванова А.С. Болезни птицы и меры борьбы сними. Омск, 1972.
       26 Вейсман И.А., Худ Л.Е., Вуд У.Б. Введение в иммунологию. – М. Высшая школа, 1983, с. 153.
       27 Венидиктов А.М., Ионас А.А. Химические кормовые добавки в животноводстве. – М.: Колос, 1989.
       28 Therefore Vetom 1.1 is an effective preparation for prevention and treatment of digestive apparatus diseases of animals. Рекламации. / НГАУ Н-ск, 1996., с. 15.
       29 Георгиевский В.И., Анненков Б.Н., Самохин В.Т. Минеральное питание животных. – М.: Колос, 1989.
       30 Двинская Л.М. и др. Птицеводство. № 10, 41, 1969.
       31 Дмитроченко А.П. Минеральное питание сельскохозяйственных животных. – Научные труды – ВАСХНИЛ, 1986.
       32 Долгортавын У. Некоторые физиолого-биохимические показатели кур в зависимости от уровня марганца в рационе. – М.,1986, с. 45-46.
       33 Емелина Н.Т. и др. Витамины в кормлении сельскохозяйственных животных и птицы. М+n Колос, 1980.
       34 Ермакова В.И. Рекомендации по кормлению сельскохозяйственной птицы. Сергиев посад, 1992.
       35 Probiotics are stable cultures of symbiont microorganisms or products of their fermentation. Колос, 1979.
       36 Кальницкий Б.Д. Минеральные вещества в кормлении животных.
       37 Капарколет А, Устинов С.В. Птицеводство, № 1,19, 1969.
       38 Клименко П.Р. Минеральные премиксы-добавки к гранулам./ Сельские зори. 1986, с. 75.
       39 Кожемяка Н.В., Кудрявцев В.С., Грошева Л.И. и др. Справочник ветеринарного врача птицеводческого предприятия. М+n Колос, 1982.
       40 A.M. Bezborodov Колос, 1982.
       41 Кононов Г.А. Справочник ветеринарного фельдшера. Л.: Колос, 1974.
       42 Конюхов В.Н. Минеральное питание сельскохозяйственных животных. Научные труды. – ВАСХНИЛ, 1989.
       43 Probiotics are stable cultures of symbiont microorganisms or products of their fermentation. Л.: Колос, 1968.
       44 Кузнецов С.Г., Харитонов О.В. и др. // Бюл. ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных. 1981, с. 21-22.
       45 Лочеповский В.М. Охрана труда в животноводстве. М+n Колос, 1986.
       46 Мамедова О.М. Влияние подкормки комплексом некоторых солей, микроэлементов, мышьяковистого натрия и нафталана на рост и развитие и половозрелость цыплят // Науч. Труд. – Кировобад, 1988, с. 16-18.
       47 Маслиева О.И. Витамины в кормлении птицы. М+n Колос, 1979.
       48 Маслобоев А.Я. Эффективность скармливания премиксов различного состава в условиях промышленного содержания. – Боровск, 1984, с.106.
       49 Мимина Л., Бронникова К. Птицеводство. - № 7, 28, 1969.
       50 Мулланаева Л.А. Изучение влияния иммунных стимуляторов роста и развития на курах, содержащихся в условиях птицефабрики. // Новые фармакологические средства в ветеринарии: Тез. Докл. 7-й межгос. Межвуз. Научн. - практ. Конф. Сиб. 1995, с. 28-29.
       51 Мулланаева Л.А. Состояние и пути повышения естественной резистентности кур в промышленном птицеводстве.: Автореф. Дис. Канд. С-х. Наук. Казань. 1991, с. 24.
       52 Немитов Ю., Ивницкий Ю., Леккина О. Иммуномодулятор повышает продуктивность. // Птицеводство, 1996, № 6, с. 24.
       53 Ордынец Р.Н. Садыков Р.Э., Асанбеков О.Э. Микроэлементы в животноводстве и растениеводстве. Фрунзе: Илим, 1990.
       54 Орлов Ф.М. Болезни птиц. М+n Колос, 1981.
       55 Павлов В.И., Коницкий Б.Д. / Труд ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных. 1981, т.25, с. 45-50.
       56 Петрухин И.В. Применение химических и биологических веществ в кормлении птицы. М., 1980, с. 45-50.
       57 Португальская А.В. Витамины. Киев, 1969.
       58 Пташкин А.А., Алипова К.М. // Бюл. ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных. 1981, с. 56-57.
       59 Рекомендации по минеральному питанию сельскохозяйственных животных. – М.: Колос, 1972, с 77.
       60 Риш М.А. – В кн. Физиологическая роль и практическое применение макроэлементов. – Рига, 1989.
       61 Роберт А. О. Иммунная система птицы. // Птицеводство. 1996, № 2, с. 39-41.
       62 Роберт А.О. Плотность посадки птицы и другие факторы/ Птицеводство. – 1997, № 3, с. 38-40.
       63 Садовников Н.В. Влияние некоторых цитомедиков на клеточные и гуморальные факторы защиты организма цыплят разной степени физиологической зрелости. // Морфология, физиология и патология животных. С.-П. 1993, с. 39-41.
       64 Садовников Н.В. Влияние некоторых цитомедиков на показатели периферической крови. // Морфология, физиология и патология у животных. – С.-П., 1993, с. 41.
       65 Серый Г.П., Васильев В.Г. и др. Справочник по технике безопасности и производственной санитарии в промышленном птицеводстве. М+n Колос, 1978.
       66 Соколов А.В. Теория и практика использования иммсуномодуляторов в птицеводстве и новые фармакологические средства в ветеринарии // Мат. 8-й межгос. Межвуз. Науч. -практ. Конф. – Сиб., 1996, с. 76-77.
       67 Соколов В.Д., Ноздрин Г.А., Рыбаков Ю.Н. Лекарственные средства, применяемые в ветеринарной практике. Novosibirsk 1997 «Наука» Сибирское отделение, 1992.
       68 Солнцев К.М. Производство и использование премиксов. Leukocytes 1987 0.106/l
       69 Солнцев К.М., Редьков Г.Ф. и др. Эффективность различных солей и микроэлементов и антибиотиков в премиксах. // Науч. Труд. – Горки, 1984, с.167.
       70 Солнцева К.М. Производство и использование Премиксов Л.: Колос, 1980.
       71 Стеценко И.И. // Труд ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных. 1981, т.25, с. 69-70.
       72 Сурков А.А. Влияние плотности посадки бройлеров на их рост и естественную резистентность. // Птицеводство, 1998, № 9, с. 21-22.
       73 Сурков А.А. Изучение факторов естественной резистентности у кур чистых и гибридных линий мясных пород.: Автореф. Дис. Канд. С-х. Наук. – М. 1987, с. 18.
       74 Тертичная Л.П. Влияние марганца, серы и светового режима на продуктивные качества кур.// Науч. Труд. – Оренбург. – 1989.
       75 Труфанов А.В., Голеркин В.Е. Витамины в птицеводстве. Сельхозиздат, 1972.
       76 Probiotics are stable cultures of symbiont microorganisms or products of their fermentation. – М.: ВЩ «Аграпромиздат», 1991.
       77 Фисинина В.И., Егоров Т.Н., Околелова И.П. и др. Рекомендации по витаминному питанию сельхозживотных и птиц. Сергиев посад. ВНИТИП, 1994.
       78 Фисинина В.И., Ермакова В.И. и др. Рекомендации по витаминному питанию сельскохозяйственных животных и птиц. Сергиев посад. ВНИТИП, 1992.
       79 Чемодуров А.А. и др. Белкововитаминные добавки. М+n Колос, 1977.
       80 Шамов В.В., Капылова М.Г. Влияние тимогена и ИС-100 на показатели крови цыплят. // Теоретические и практические разработки некоторых проблемных задач современной ветеринарии и животноводства.: Мат. Науч. Конф. Омск, 1996, с. 83-84.
       81 Шиловский В.Г. Профилактика в птицеводстве, основа успеха. Ветеринария. № 5, 1971.
       82 A.I.Kornyuchin Труд УСХА. 1985, Вып.158, с. 177-178.
       83 Экнипьюнг Л.А. Ростостимулируещее влияние на цыплят лекарственных веществ микробного происхождения.: Автореф. Дис. Канд. С-х. Наук. М., 1990, с. 16.
       84 M. Luck, C. Scane, 1989
       85 M. Neathery, W. Miller, 1989
       86 Наставления по применению препарата Ветом 1.1 в ветеринарии № 13-5-2/1065 от 28.10.97г.
       87 Наставления по применению Ветома 3 в ветеринарии № 13-5-2/1317

   

Социальные сети  

vk 32  ok 32

   

Отчеты и акты производственных испытаний ветеринарных препаратов  

   

Презентации  

   

Внимание!
В связи с тем, что на сайтах некоторых компаний, продающих нашу продукцию, размещено много информации, уровень достоверности которой не всегда корректен или не соответствует действительности, официально заявляем:
ООО НПФ "Исследовательский центр" не несет ответственность за любую информацию, размещенную на сторонних сайтах, в том числе со ссылками на наш сайт www.vetom.ru

   
© НПФ «Исследовательский центр»
free counters Яндекс.Метрика