Биологически активные добавки к пище (БАД)  

   

Косметические гели серии Биосептин  

   

Парфюмерно-косметическая продукция  

   

Леляк А.И. 21.09.2017 - Ветом, программа "Тема дня" Радио "Комсомольская правда" (часть 1)


Леляк А.И. 21.09.2017 - Ветом, программа "Тема дня" Радио "Комсомольская правда" (часть 2)

РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ
МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА
ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ
ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ
«БЕЛГОРОДСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ
АКАДЕМИЯ»
 

СОГЛАСОВАНО:   УТВЕРЖДАЮ:  
В.В. Крупко
Директор «ТД ИЦ Биославтрейд»

 

Ректор Белгородской ГСХА

А. В.Турьянский

 

 



 

О Т Ч Е Т по НИР по теме:

«Изучить влияние пробиотика Ветом 1.1. и АКД «Фаворин»
отдельно и в комплексе на физиологический статус и продуктивные качества телят, поросят и цыплят - бройлеров»


Заказчик: «ТД ИЦ Биославтрейд»


Исполнитель Научно исследовательской работы:
руководитель Центра Аграрных Проблем БелГСХА кандидат биологических наук Хмыров А.В.

 

 

 

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы.

В данном отчёте приведены результаты исследований проведенных на трех видах животных, при применении нового пробиотического препарата Ветом 1.1, автолизата кормовых дрожжей «Фаворин» отдельно и совместно. Впервые изучены влияние этих препаратов на физиологический статус организма телят поросят и цыплят-бройлеров.

Работа представлена тремя этапами:

- первый - влияние препаратов на рост и развитие телят;

- второй - поросят;

- третий соответственно цыплят - бройлеров.

Этап  1

1. Влияние препаратов Ветом 1.1. и АКД «Фаворин» отдельно и совместно на рост и развитие телят

1.1. Роль микрофлоры, заселяющей желудочно-кишечный тракт телят в норме и патологии

Выращивание молодняка условно делят на четыре периода: первый - молозивный; второй - молочный; третий - созревания; четвертый - полового развития (О. Косова, 1986 г.).

Самым ответственным является выращивание телят в молозивный и молочный периоды. Это связано с особенностями приспособления организма новорожденного к новым для него условиям. Поэтому от того, как будет подго­товлен организм животного за молочный период, зависит в последующем со­стояние его здоровья, развитие, эффективность использования корма и продук­тивность (Т.А. Мисостов, 1982 г.).

Примерно (70-80) % гибели молодняка сельскохозяйственных жи­вотных приходится на первые (2-3) недели жизни, а общие потери по причине желудочно-кишечных болезней, сопровождающихся диареей, в течение многих лет составляют около 50 % от общего падежа молодняка. Причиной малозначи­мых успехов в профилактике данной группы заболеваний является то, что лишь в немногих хозяйствах к решению проблемы подходят комплексно, с учетом этиологических факторов, предрасполагающих к заболеванию, осложняющих течение патологического процесса.

В первые дни жизни качественный и количественный состав кишеч­ной микрофлоры животных таков, что он не способен предотвращать заселение кишечника посторонними микроорганизмами, включая и патогенных. Станов­ление кишечного нормобиоза, характеризуется преобладанием, прежде всего бифидо - и лактобактерий (в норме их суммарное количество достигает (80—90) % всей микрофлоры кишечника), в основном завершается к (20-25)-суточому возрасту. С этого момента животные наряду с факторами клеточного и гумо­рального иммунитета (общего и местного, специфического и неспецифического) приобретают еще одну «линию обороны» от патогенов в виде защиты слизистой оболочки кишечника антагонистически активной нормальной микро­флорой (колонизационная резистентность). Однако в первые (3-4) недели жизни состав кишечной микрофлоры молодняка может быть охарактеризован как дисбактериоз. Животные лишены первичного неспецифического барьера - роль его выполняет кишечная нормофлора, которая вступает в борьбу с патогенной и условно патогенной микрофлорой еще до инициации других неспецифических, а затем и специфических механизмов защиты (В.В. Субботин, М.А. Сидоров, 2004).

Возникший отход и другой ущерб при выращивании телят происходит главным образом из-за нарушений процесса пищеварения и обмена веществ в ранний период жизни, задержки становления биологических процессов в пищеварительном тракте и низкой иммунной компетентности организма. Это связа­но со многими причинами, в том числе с неправильным кормлением стельных коров. При содержании стельных коров на неполноценных и недостаточных по питательности рационах в желудочно-кишечном тракте телят доминируют ус­ловно - патогенные бактерии, а среди них - энтерокиназные кишечные палочки (Л.А. Яковлев, П.Я. Сорокин, 1971 г.).

Профилактику и лечение телят в этот период проводят с помощью ан­тибиотиков, нитрофурановых и других химиотерапевтических соединений. Применение соединений данного направления действия имеет положительные и отрицательные стороны. В частности, применение антибиотика омомицина повышает целюлозолитическую активность, образование пропионата, на (4-5) % ->переваримость основных, питательных веществ и на 12 % - рост (И.А. Долгов, Т.В. Тоноян, Н.Г. Макарцев, 1991 г.).

К отрицательной, побочной стороне относится развитие дисбактериозов, появление резистентных штаммов бактерий, уменьшение количества молочнокислых бактерий и резкое увеличение условнопатогенных, что приводит к сни­жению продуктивности (В.А. Антипов, 1981 г.; П.В. Пенегин, В.П. Мальцев, В.М., Коршунов, 1984 г.; А.С. Селиванова, АЛ. Морозов, 1984; А.С. Хоменко, А.О. По­горелый, 1984 г.).

Так, например, скармливание антибиотиков ведёт к исчезновению мо­лочнокислой микрофлоры кишечника. В то же время, после инокуляции без­микробным животным (ягнятам) содержимого рубца овец преджелудки их раз­виваются нормально, появляется жвачка (R.J. Lisons et al., 1976 г.).

Вот почему ведущим фактором в возникновении патологического со­стояния пищеварительного тракта в таких условиях следует считать естествен­ную резистентность и адаптивные способности макроорганизма, а вторичным - в основном условно патогенную микрофлору, которая в большинстве случаев проявляет и вырабатывает в себе высокую устойчивость к большинству анти­бактериальных препаратов, в том числе широкого спектра действия.

Дисбактериозы молодняка сельскохозяйственных животных и птиц в про­мышленных комплексах имеют полиэтиологический характер и проявляются резким сдвигом в кишечной нормограмме в сторону увеличения числа предста­вителей условно патогенной микрофлоры зачастую без участия инфекционного агента (Р.В. Тузова, 1985 г.).

Вследствие этого, желудочно-кишечные заболевания продолжают доминировать среди других заболеваний молодняка всех видов домашних живот­ных и птицы. Это связано с тем, что в условиях хозяйств большинство из при­меняемых антимикробных средств приводит к тяжёлым патологическим изме­нениям в составе микрофлоры пищеварительного тракта, которая не восстанав­ливается длительное время после прекращения их введения (В. Кондратьева, Н. Наумова, 1980 г.; В. Федотов, Е. Останина, 1981 г.; К. Аржиков, 1983 г.; А.В. Голиков, В.Д. Духанов, 1985 г.).

Однако оказалось, что условно патогенные микроорганизмы с трудом колонизируются в кишечнике животных с обычной микрофлорой, не образуя больших популяций. Если эти же микроорганизмы ввести энтерально безмикробным животным, то они бурно размножаются и интенсивнее колонизируют кишечный тракт. Если же предварительно, до заражения условно патогенными микробами, безмикробным животным ввести строгие анаэробы нескольких ви­дов (бифидобактерии, лактобациллы, бактероиды и др.), тогда не происходит интенсивного размножения условно патогенной микрофлоры. Такие экспери­менты помогли выяснить, что именно происходит при системном и длительном применении некоторых антибиотиков широкого спектра действия. Они унич­тожают или сильно подавляют видовое разнообразие и количество облигатных анаэробов, занимающих в кишечнике животных многих видов и человека доминирующее положение. Именно они играют основную роль в создании так на­зываемой колонизационной резистентности пищеварительного тракта к зара­жению патогенными и условно патогенными микроорганизмами (О.В. Чахаева, 1986 г.; Van der D. Waaji, 1986 г.).

В случае первичного введения антагонистов ворсинчатый слой эпители­альных клеток полностью покрыт микробными клетками испытуемых видов микроорганизмов, и дополнительное, пероральное, введение тест - микробов не позволяет последним проникать в стенку кишечника. Этим, вероятно, объясняется защищённость животных от инфекционного процесса при экспериментальном заражении возбудителями кишечных заболеваний (М.М. Интизаров, 1986г.).

Эффективность трансформации питательных веществ корма у жвачных животных, в том числе у молодняка, во многом определяется метаболической активностью заселяющей преджелудки микрофлорой (ТА. Николичева, Б.В. Тараканов, 1982 г.; И.А. Бойко, Г.А. Водяницкий, 1992 г.; Б.В. Тараканов, Т.А. Ни­количева, 1992 г.).

Простейшие микроорганизмы в преджелудках жвачных появляются ес­тественным путём при контакте с взрослым животным. Это происходит не ра­нее трёхнедельного возраста, но иногда заселение отмечают даже через три дня после рождения. Имеются предположения, что простейшие попадают в желудочно - кишечный тракт телят при контактировании их со взрослыми животными в результате облизывания, через предметы ухода и другими путями (A. Bekker, N. Heing, 1981г.). Отсюда вытекает важность контакта телят со взрослыми животными, что при нынешней технологии молочного скотоводства далеко не всегда осуществляется (Н.Г. Беленький, 1958г.).

1.2. Попытки искусственной фаунизации

Теоретические исследования и попытки искусственной фаунизации те­лят рубцовой микрофлорой, получаемой от взрослых животных, не нашли положительного отклика на практике. Это, прежде всего, можно отнести за счёт сложности имевшихся технологий. Для этого из ротовой полости взрослого скота брали жвачку путём вызывания рвоты или с помощью зондов и в свежем виде давали телятам (Н.М. Носков, 1956 г.; R.E. Hungate, 1967г.).

С целью стабилизации деятельности микрофлоры, более раннего развития рубца и эффективного использования жвачными грубых кормов исследова­тели включали в рацион при каждом кормлении сухие бактерии рубца. Предполагали, что бактерии будут расти, и усиливать деятельность имеющихся, обеспечивая повышенное использование клетчатки грубых кормов, увеличение син­теза белка и витаминов группы В. Результаты исследований подтвердили это предположение (Ч.У. Тернер, 1957 г.).

Аналогичные данные получены при скармливании телятам-молочникам стабилизированного сухого содержимого рубца, взятого при убое взрослого рогатого скота (A. Ziolecki, 1989 г.). Высушенный порошковый экстракт рубцового содержимого не только стимулировал развитие преджелудков телят, повышая интенсивность роста и развития организма, но и предотвращал и излечивал катаральные и воспалительные заболевания пищеварительного тракта, оказывал положительное влияние на микрофлору кишечника и соотношение ЛЖК в его содержимом (Ю.Ю. Балаж. 1980 г., J. Balais, 1974г.).

При общем положительном эффекте эти методы имеют существенные недостатки, заключающиеся в сложности получения рубцовой массы, возможности заражения телят от случайных животных, неспецифичности микрофлоры для конкретной микрозоны обитания телят, отмирание части жизненно важных для телёнка микроорганизмов при высушивании и другими.

В связи с этим результаты, полученные экспериментаторами по ранней инокуляции телят рубцовой микрофлорой, весьма разноречивы. Это связано с тем, что использованы разные методики инокуляции, получения и культивирования рубцовой микрофлоры, а также с факторами, определяющими физиологическую зрелость телят, обеспеченность надлежащими кормами, стимулирующими функции желудочно-кишечного тракта, и др.

Из этого следует, что проблема акселерации заселения специфической микрофлорой ЖКТ молодняка остаётся одной из важнейших в скотоводстве. Особенно молочного направления, в котором повсеместно используется неподсосный метод выращивания телят, лишающий их контакта с взрослым поголовьем. Эта проблема обостряется попытками уменьшить расход молока на выращивание телят за счёт ЗЦМ, раннего использования грубых и сочных кормов, а также выращиванием телят в индивидуальных профилакториях.

1.3 Пробиотики

1.3.1 Определение. Первые упоминания и первоначальные попытки использования

Пробиотики - биологические препараты представляющие собой стабилизированные культуры симбионтных микроорганизмов или продукты их ферментации, которые способствуют росту последних (Gros M., Jhielm G., 1997 г.).

Термин «пробиотики» впервые предложен в 1974 г. Паркером, как жи­вые микроорганизмы, оказывающие положительное влияние на здоровье жи­вотных. К ним относят такие виды, как Lactobacillus, Enterococus, Pedicoccus, Bacillus. Другие препараты относятся к грибам типа дрожжей Saccharomyces genus. Некоторые являются обычной микрофлорой ЖКТ хозяина (Lactobacillus и Enterococus). Обычно даются с кормами, чаще - в период роста животного. Механизм действия досконально не изучен. Результаты опытов с пробиотиками противоречивы и зависят от вида животных. Пробиотики действуют эффективнее в условиях несбалансированной микрофлоры ЖКТ.

Первоначально название пробиотик применяли для описания субстанций, продуцируемых одним простейшим, который стимулировал рост других, а позднее- кормовых добавок, оказывающих полезный эффект на животное - хозяина путём влияния на его кишечную микрофлору. В последней роли его определяли как «организмы и вещества (субстанции), которые делают вклад в микробный баланс кишечника».

В 1981 году T. Riise (Дания) предложил под названием «пробиотик» понимать «увеличение полезных микроорганизмов в пищеварительном тракте жи­вотного - хозяина путём введения больших количеств желательных бактерий для переустановления и поддержания идеальной ситуации в кишечнике», а в 1989 году R. Fuller “живую микробную кормовую добавку, которая оказывает полезное действие на животное-хозяина путём улучшения его кишечного мик­робного баланса» (R. Fuller, 1989 ). Последнее определение пробиотиков было принято в научной литературе и до настоящего времени не модифицировалось. В 1994 г. ЕЭС выпустила рекомендации, в которых пробиотики и фер­менты представлены в качестве добавок к рациону сельскохозяйственных животных.

Наиболее перспективными для профилактики желудочно-кишечных заболеваний и повышения продуктивности молодняка являются молочнокислые, пропионовокислые бактерии и бифидобактерии. Такое мнение выработано в результате испытания в нашей стране пропиоацидофильной и ацидофильной бульонных культур (ПАБК и АБК.). Но в связи с нестандартностью жидких форм препаратов, непродолжительным сроком их хранения и отсутствием массового промышленного производства они не нашли широкого применения в практике животноводства. С учётом изложенного, в нашей стране созданы сухие формы пробиотических препаратов с использованием этих культур микроорганизмов, в частности ацидофилин и пропиовит (М.С. Полонская, Л.Ф. Абы-зова, 1987г.; Б.В. Тараканов, 1987г.).

В результате исследований, проведённых во Всесоюзном НИИ незаразных болезней животных, МВА и в Рязанском с/х институте, доказано, что такие препараты нормализуют рост и развитие молодняка, эффективны для профилактики и лечения болезней ж.к.т. у телят, поросят и цыплят, повышают общую резистентность организма молодняка животных (В.А. Антипов, В.М. Субботин, 1980г.).

1.3.2 Влияние на макроорганизмы

Пробиотики обладают разносторонними фармакологическими дейст­виями. Положительный эффект обусловлен их участием в процессах пищеваре­ния и метаболизма организма хозяина, биосинтезом и усвоением белка и мно­гих других биологически активных веществ, обеспечением резистентности макроорганизма.

Мнение о полезном эффекте пробиотиков базируется на следующих фак­тах: безмикробные животные (гнотобиоты) более чувствительны к заболеваниям, чем их близнецы с полной кишечной флорой. Например, безмикробные морские свинки могут быть убиты 10 клетками Salmonella enteritidis, тогда как для свинки с нормальной микрофлорой необходимо 109 клеток.

Нормальная деятельность многих систем и органов животных в значи­тельной степени зависит от видового состава и межвидового соотношения микроорганизмов, заселяющих их с момента рождения (S. R. Cerguiglini, 1974г.).

Пробиотики применяют для нормализации микрофлоры желудочно-кишечного тракта. Такие биологические препараты, как ацидофилин, пропиовит, лактиферм, лактобактерин, проплацид, флавобактерин, бифидумбактерин и другие, представляют собой лиофильно высушенные культуры непатогенных микроорганизмов - симбионтов желудочно-кишечного тракта. Поскольку мик­роорганизмы, входящие в состав пробиотиков, выделяют из ЖКТ, они хорошо приживаются в естественной среде их обитания и продуцируют биологически активные вещества (БАВ): витамины, антибиотики, ферменты и другие метаболиты. Покрывая тонким слоем эпителий слизистых оболочек, вытесняют условно патогенную микрофлору, нормализуют физиологические процессы, предотвращают дисбактериозы и другие расстройства органов пищеварения у животных и птиц. Всё это способствует усвоению корма, увеличивает привесы, повышает резистентность организма.

Это объясняется участием симбионтных микроорганизмов в азотистом (белковом) питании, что является одной из основных их функций. В результате сложных биохимических процессов, протекающих в ЖКТ хозяина, микроорганизмы, усваивая поступающие питательные вещества, размножаются, растут и быстро увеличивают свою биомассу. Отмирая, они перевариваются и усваиваются организмом хозяина, являясь источником белка.

За счёт микроорганизмов жвачные получают 1/3 необходимого для них белка. Средняя рубцовая бактерия, в пересчёте, содержит (38-55) % истинного протеина, 20 % нуклеиновых кислот, (6-23) % полисахаридов и (3-7) % липидов.

Если у моногастричных взаимосвязи между потреблением белка и последующим всасыванием аминокислот осуществляется относительно просто, то у жвачных кормовые белки, расщепляясь под действием микрофлоры, удовлетворяют её потребность в азоте, а синтезирующийся при этом микробный белок служит существенным источником белка уже не растительного, а животного происхождения, то есть более полноценного для организма хозяина. Иными словами, весьма важным является то обстоятельство, что низкокачественные кормовые белки в результате микробной деятельности в значительной мере «облагораживаются» или «стандартизируются».

Протеолитические ферменты обнаружены как у бактерий, так и у простейших. Все компоненты микрофлоры рубца обладают протеолитической активностью. Она наблюдается также в бесклеточной жидкости после разрушения микроорганизмов. Протеазы рубцовых бактерий преимущественно связаны с клеткой. Наиболее важными продуцирующими эндопротеазы бактериями являются грамотрицательные виды, тогда как внеклеточные ферменты обычно образуют грамположительные виды (А.А. Алиев, 1997г.).

Микроорганизмы рубца обладают многими дисахаридазами: α и β - глюкозидазами и β -галактозидазами с различной степенью специфичности. Кроме гидролаз у них обнаружены фосфорилазы, обеспечивающие внутриклеточное расщепление дисахаридов. Ферменты лактобацилл расщепляют целлюлозу с образованием молочной, уксусной и масляной кислот. Образующиеся в результате биохимической деятельности бактерий ЛЖК используются организмом животных в качестве источников энергии и в биосинтетических процессах, а также являются стимуляторами роста многих видов бактерий рубца.

Благодаря ферментационной активности симбионтная микрофлора способна синтезировать многие БАВ: органические кислоты, спирты, липиды, витамины, особенно группы В, соединения тетрапирольной структуры. Всасываясь в кровеносное русло, многие из них активно участвуют в энергетическом и витаминном обменах, играя важную роль в жизнеобеспечении организма хозяина (Г. Готшалк, 1982 г.).

Органические кислоты усиливают перистальтику и секрецию кишечника, чем способствуют перевариванию корма и повышают резорбцию Са и Fe (R. Schuler, 1968г.).

Полифосфаты бактерий принимают участие в переносе сахаров в клетку, выполняя функцию гексокиназ, а также функцию трансфераз, переносящих азотистые группы. Большое значение имеет аланинаминотрансфераза, катализирующее двустороннее перенесение аминогруппы (L-Аланин + 2-Оксоглутарат = Пируват + L-Глутамат), и аспартатаминнотрансфераза, учавствующая в процессах переаминирования. О наличии этих процессов свидетельствует высокая активность ферментных систем (А.И. Кононский, 1992г.).

Вместе с тем симбионты способны синтезировать метаболиты, обладающие антитоксическим действием. Так, болгарская палочка вырабатывает вещество, способное нейтрализовать энтеротоксин кишечной палочки, патогенной для свиней. Флора принимает участие и в инактивации избытка некоторых пи­щеварительных ферментов, детоксикации отдельных эндогенных и экзогенных веществ (О.В. Чахаева, 1972г.).

Другой функцией симбионтных микроорганизмов является защитная роль, которая обеспечивается разными механизмами. Неспецифическую защиту ки­шечника от патогенных бактерий и вирусов, обладающих генетическими детерминированными инвазионными свойствами, местная микрофлора выполняет путём создания антагонистического барьера так называемой колонизационной резистентности кишечника. Вступая в тесный контакт со слизистой оболочкой кишечника и покрывая поверхность тонким слоем, она механически предохраняет её от внедрения патогенных микробов (Э.Т. Телямейстер, 1977г.).

Антибактериальная активность симбионтов обусловлена способностью продуцировать спирты, перекись водорода, молочную, уксусную и другие ор­ганические кислоты, синтезировать лизоцим и антибиотики широкого спектра действия (лактолин, низин, ацидофилин и другие). Они могут угнетать рост других видов также за счёт более высокого биологического потенциала, быстрого размножения и достижения М-концентрации, более короткой lag-фазы, изменения рН или окислительно-восстановительного потенциала среды (R. Freter, 1974 г.).

Благодаря тому, что симбионтные серотипы обладают перекрёстными ан­тигенными свойствами с патогенными, макроорганизм, вырабатывая иммуноглобулины по отношению к первым, организм хозяина приобретает механизм защиты и к патогенным серотипам, хотя никогда и не имел с ними контакта (А. Feske, 1974 г.).

Антагонизм обеспечивается также продукцией бактерицинов (колицинов). Губительное действие на патогенных микроорганизмов симбионты могут проявлять за счёт активации ферментов слюны и поджелудочной железы, а также секреции желез желудка и кишечника, деконъюгации солей желчных кислот (И.Б. Куваева, 1976).

Симбионтная микрофлора способствует повышению общей неспецифиче­ской резистентности организма хозяина, активно участвуя в обменных процессах и поставляя ему жизненно важные пластические вещества.

В наибольшей степени антагонистическая активность выражена у ацидофильных бактерий, бифидумбактерий, молочнокислого стрептококка и других.

1.3.3 Формы выпуска и примеры применения

Пробиотики выпускают в виде сухих препаратов лиофильно высушенных микроорганизмов в чистом виде или в технической форме с питательной сре­дой. В качестве наполнителя для первых используют сухое молоко, сахарозу, а для технической формы - кукурузную, рыбную или другую муку. Последние более удобны при группрвом назначении животным с кормом. Также сущест­вуют жидкие препараты симбионтных микроорганизмов, такие как ПАБК, АБК, которые широко применялись в нашей стране в начале 60-х годов в жи­вотноводстве, их изготавливали во многих хозяйствах и ветеринарных лабора­ториях. Они положительно зарекомендовали себя при желудочно-кишечных болезнях и гиповитаминозах группы В, для повышения роста цыплят, поросят, ягнят, телят, резистентности организма, для улучшения развития плодов. Одна­ко такие недостатки указанных препаратов, как нестандартность продукции, неудобство хранения и транспортировки, быстрая потеря активности; способст­вовали сокращению, а затем и прекращению их выпуска и применения.

Развитие лиофилизационной техники позволило разрешить эти проблемы и выпускать указанные пробиотики в виде сухих и стандартных белково-витаминных препаратов. По сравнению с жидкими препаратами симбионтных микроорганизмов  лиофильно  высушенные  культуры  лучше  сохраняются,  а также более удобны при массовом применении.

Микроорганизмы, входящие в состав пробиотических препаратов, сочетают высокую энергию роста с синтезом значительных объемов питательных и биологически активных веществ, что улучшает обмен веществ, рост и продуктивность животных. Так, сроки удвоения биомассы для бактерий и дрожжей составляют (1-6) часов. Микроорганизмы также способны использовать пищевые источники, недоступные для высших животных, так как образуют большое количество разнообразных ферментов. Они в значительной степени определяют колонизационную резистентность, то есть защищают организм хозяина от внедрения транзиторной патогенной микрофлоры. Селекционная и генно-инженерная работа со штаммами дает возможность в значительной сте­пени модифицировать свойства препаратов в соответствии с поставленными задачами (Н.В. Данилевская, В.В. Суботин, О.А. Батурин, Ю.В. Пятышева, 2003 г.).

Многокомпонентный состав (аминокислоты, витамины, ферменты, другие БАВ) и разносторонние фармакологические действия позволяют применять пробиотики с высоким эффектом для профилактики и лечения желудочно-кишечных болезней и дисбактериозов, нарушений обмена веществ (гиповитаминозов, анемии и др.), регуляции послестрессовых состояний, особенно в период технологически обязательных мероприятий, коррегирования антимикробной терапии, предупреждения рецидивов болезней, повышения продуктивности и стимуляции роста животных.

Целесообразно применять пробиотики для лечения и стимуляции роста молодняка сельскохозяйственных животных. Они являются эффективными лечебно - профилактическими, ростостимулирующими препаратами, безвредны для организма, нормализуют его экологические системы, что особенно важно при содержании животных в помещении.

Во Франции для этих целей предложен препарат, в который входят антибиотикоустойчивые штаммы молочнокислых бактерий, ацидофильной и бол­гарской палочек и молочнокислого стрептококка (W. Camarer, 1961 г.). Новорожденным телятам сразу после рождения, а затем однократно в день в течение 13 суток назначают кишечную микрофлору от здоровых телят (фекальные стрептококки и ацидофильные палочки). Заболеваемость диареей снижается с 82 до 35 % и смертность - с 10,2 до 2,8 %. Болезнь при этом протекает в более лёгкой форме (Flouteaux J., 1968 г.).

В борьбе с дисбактериозами при нормализации микрофлоры ЖКТ, форми­ровании биоценозов в его содержимом перспективно обогащение кишечной микрофлоры не одной культурой, а комплексом подобранных штаммов, спо­собных легко приспособиться и прижиться в данной среде обитания.

Среди перечисленных способностей важнейшей функцией микрофлоры рубца является витаминообразование. Она синтезирует рибофлавин, тиамин, никотиновую, фоливую и пантотеновую кислоты, биотин, пиридоксин, витамин В12, то есть практически все витамины группы В, а также витамин К в количе­ствах достаточных для удовлетворения потребностей организма животных (И.Г. Пивняк, Б.В. Тараканов, 1982г.).

Что же касается витамина А, то в настоящее время считается, что живот­ные получают каротин исключительно из растительных кормов, который в организме под влиянием каротиназы превращается в витамин А. Однако имеются данные о том, что в содержимом пищеварительного тракта обнаруживается больше каротинов, нежели поступает с кормом. Это даёт основание предположить, что микрофлора синтезирует каротин и, таким образом, принимает активное участие в обеспечении животных витамином А (А.А. Алиев, 1997г.).

Проведённые в лаборатории микробиологии ВИЖ исследования показали, что в рубце и других отделах пищеварительного тракта обитают каротинсинтезирующие микроорганизмы (И.Г. Пивняк, 1976г.).

Установлено, что рубцовые микроорганизмы образуют α, β и γ каротины. Следует, однако, отметить, что микрофлора способна и к разрушению витамина А. Показано, что при инкубации в рубцовом содержимом ацетата витамина А 36  % последнего распалось. Имеющиеся данные свидетельствуют о том, что роль микрофлоры в А-витаминном питании жвачных выяснена ещё недостаточно (А.А. Алиев, 1997г.).

1.3.4 Состав исследуемых препаратов

Продуцируемые ими биологически активные вещества и оказываемый ими эффект на макро и микроорганизмы

Ветом 1.1 является иммобилизированной высушенной споровой биомас­сой рекомбинантного штамма ВКПМ В 7092 бактерий Bacillus subtilis, продуцирующих α-2-интерферон человеческий лейкоцитарный. Ветом 3 является иммобилизированной высушенной споровой биомассой бактерий Bacillus subtilis, штамма ВКПМ В-7048. Препараты пред­ставляют собой мелкокристаллический порошок белого цвета, без запаха легко растворимый в воде. Препараты обладают высокой антагонистической активностью к широкому спектру патогенных и условно патогенных микроорганизмов за счёт свойств В. subtilis, способствуют стимуляции клеточных и гуморальных факторов иммунитета, повышают неспецифическую резистентность организма, стабилизируют аллергическую устойчивость, стимулируют регенерационные процессы тканей, нормализуют обмен веществ. АКД «Фаворин» - является автолизатом кормовых дрожжей.

2. Объект, материалы и методы исследования

2.1 Объект исследований

Для решения поставленных задач на комплексе Учебного хозяйства “Центральное” Белгородского района Белгородской области выполнено три на­учно-производственных опыта в период с июня по октябрь 2006 года.

Опыты проводили на телятах черно-пестрой голштинской породы. Группы формировали по принципу аналогов с учетом происхождения, возраста, физиологического состояния и живой массы (ЖМ).

Согласно принятой в хозяйстве технологии отёлы коров проводят в родильном отделении, и далее телят выращивают в типовых помещениях, изолированно от маточного поголовья. До 20-и суточного возраста утром и вечером выпаивали согласно схеме, представленной производителями.

Объектами для биохимических, зоотехнических исследований служили: корма, рубцовое содержимое (РС), кровь и экскременты. Переваримость питательных веществ кормов, баланс азота изучали по результатам обменного опыта.

2.2 Схемы и условия проведения опытов

Во всех опытах из новорожденных телят были сформированы опытные и контрольные группы по 10 голов. Телят кормили из расчёта получения средне­суточного прироста живой массы (750-850) г. В течение суток телята находились на подсосе, а затем получали одинаковый рацион, состоящий из молока. Телята контрольных групп получали названный рацион (ОР), а опытным, помимо ОР, в порцию молока утром и вечером добавляли испытуемые препараты (табл. 1,2,3). Введение испытуемых препаратов начинали от рождения и продолжали до 21-го суточного возраста.

К поеданию сена телят приучали со второй недели жизни. Их содержали на привязи в профилакторном отделении на деревянном полу без подстилки. Интенсивность роста учитывали путем индивидуального взвешивания при рождении, в начале и в конце балансового опыта, что совпало с окончанием профилакторного периода, а также в 45-и суточном возрасте для выявления эффекта последействия препарата.

На основании данных лабораторного анализа кормов, а также справочных данных о переваримости питательных веществ этих кормов, была рассчитана их питательность. Принципиальная схема кормления телят дана в таблице 1.

Таблица 1. - Схема кормления телят

возраст

Корма, кг

месяц

декада

молозиво

молоко

Сено

комбикорм

I

1

20

-

приучение

-

2

-

50,0

1,0

приучение

3

-

60,0

2,0

2,0

II

4

-

60,0

3,0

2,0

5

-

40,0

6,0

3,0

Всего за опыт

20

210

12,0

7,0

Контроль клинико-физиологического состояния телят осуществляли ежесуточно.

В первом опыте проверяли влияние испытуемых препаратов на обмен кальция, фосфора, азота, переваримость питательных веществ (жира, клетчатки, безазотистых экстрактивных веществ (БЭВ)). В сыворотке крови определяли концентрацию белка и мочевины, в плазме крови - свободные аминокислоты (САК), показатели прироста живой массы телят. В учетный период у телят брали рубцовое содержимое и кровь. Кроме того, контролировали при­рост живой массы.

2.3 Материалы исследования

В ходе эксперимента отбирали и учитывали:

1.  кровь у телят из ярёмной вены через 21 и 45 суток от начала эксперимента за полчаса до кормления;

2. рубцовое содержимое от телят 21 и 45 суточного возраста в те же временные периоды, что и кровь;

3.  экскременты при выполнении балансовых опытов;

4. корма рациона и их остатки.

2.4 Изучаемые показатели и методы их определения

В процессе выполнения работы были проведены анализы крови, рубцового содержимого, кормов, кала, мочи.

В крови исследовали следующие показатели (количество проб):

а)неспецифической резистентности (гемоглобин - 50, эритроциты - 50, лейкоциты - 25, иммуноглобулины - 25, альбумин - 25, глобулины - 25: альфа -25, бета - 25, гамма - 25);

б)витаминного и антиоксидантного статусов (витамин А - 25, витамин Е- 25, витамин С - 25, активности глютатионпероксидазы - 25, глютатионредуктазы - 25, глютатионтрансферазы - 25, каталазы - 25, супероксиддисмутазы - 25, уровни МДА (Fe) - 25, МДА св. - 25, диеновых конъюгатов - 25);

в)азотистого обмена (свободные аминокислоты - 30, общий белок - 30, мочевина - 30, небелковый азот - 30).

В рубцовом содержимом определяли: >кислотность (рН) - 30, концентрацию ЛЖК - 30, аммиака - 30, общего азот - 30, небелковый азот - 30.

В экскрементах анализировали кал на содержание протеина (30), жира (30), клетчатки (30), БЭВ (30), сухого вещества (30), кальция (30) и фосфора (30) и мочу (общий азот - 30, азот мочевины - 30, кальций - 30, фосфор - 30).

2-4.1 Химические, биологические и другие методы исследования

Гематологические анализы

Проводили по общепринятым методикам подсчёт количества лейкоцитов и эритроцитов в камере Горяева. Гемоглобин - гемиглобинцианидным методом. Расчёт цветового показателя крови, среднее содержание гемоглобина и средне­го объёма эритроцитов по общепринятым формулам.

Биохимические показатели

1. Сыворотку крови исследовали: на общий белок биуретовой реакцией, бел­ковые фракции сыворотки крови - методом электрофореза на плёнках из ацетата целлюлозы, мочевину - по цветной реакции с диацетилмоноксимом (Conlambe, Favreon), свободный аминный азот - по методу Узбекова в моди­фикации З.С. Чулковой, согласно справочному изданию по клинической ла­бораторной диагностике в ветеринарии (И.П. Кондрахин, Н.В. Курилов и др., 1985). САК - на аминокислотном анализаторе фирмы Хитачи.

2. Мочу исследовали на общий азот колориметрическим методом с реактивом Неслера; мочевину, аммиак - диффузионным методом по Конвею-Байрону; кальций - осаждением и обратным титрированием раствором КМnО4; фос­фор - по Пулсу в модификации В.Ф. Коромыслова и Л.А. Кудрявцевой. Ис­следования проводили, используя справочное издание по клинической ла­бораторной диагностике в ветеринарии (И.П. Кондрахин, Н.В. Курилов и др., 1985), за исключением мочевины, которую определяли согласно инструкции к набору химических реактивов для определения мочевины в биологи­ческих жидкостях (Производитель - научно-производственный центр «ЭКОСЕРВИС». Санктпетербургское общество естествоиспытателей (W. Marsh, B. Fingerhut, H. Miller, 1965).

3. Характер течения процессов ферментации в преджелудках определяли, ана­лизируя рубцовую жидкость. Изучали рН - электрометрически, концентра­цию ЛЖК - отгонкой в аппарате Маркгама; общий и остаточный азот – по Кьельдалю; аммонийный азот - микродиффузным методом Конвея; белковый азот - методом Барнштейна.

5.Анализ химического состава корма и кала проводили по общепринятым ме­тодикам.

2.4.2 Балансовые опыты

Опыты по изучению переваримости питательных веществ рациона проводили по методике А.И. Овсяникова (1976 г.). В каждой группе было по десять бычков, которые находились в отдельном помещении. По окончании опыта у четырёх животных из каждой группы отбирали пробы крови, рубцовое содержимое, кал и мочу.

2.4.3 Зоотехнические методы исследования

В процессе опытов изучали:

1)   динамику  прироста живой массы тела изучали  путём индивидуального взвешивания;

2) относительную скорость роста по формуле Броди Шмальгаузена;

3) переваримость питательных веществ кормов, баланс азота, кальция и фосфора - по результатам обменного опыта (А.И. Овсяников, 1976г.).

Экономическую эффективность рассчитывали по общепринятым методикам (ВНИИПИ, 1983 г.) и ценами, установленными на период проведения эксперимента.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Искусственная фаунюация преджелудков телят

В отечественной и зарубежной литературе имеются сведения о том, что при раннем включении в процессы пищеварения стабилизированных культур симбионтных микроорганизмов частота возникновения и тяжесть течения заболеваний желудочно-кишечного тракта телят в раннем онтогенезе значительно снижается. Это подтолкнуло ученых разработать методики искусственного за­селения желудочно-кишечного тракта телят путем введения пробиотических препаратов в раннем онтогенезе. Однако эта идея не получила широкого рас­пространения из-за отсутствия стройной, научно обоснованной и легкодоступной технологии искусственной фаунизации телят. В арсенале способов искус­ственной фаунизации телят имеются предложения задавать телятам рубцовое содержимое взрослых животных, добытое путём отбора посредством зонда. Или после убоя на мясокомбинате - воздействием на животного фармакологи­ческими средствами, вызывающими рвоту, отбирать ком жвачки из ротовой по­лости с последующим скармливанием его телёнку.

Эти методы для производственной практики имеют негативные стороны. Отсутствует чётко разработанная концепция о виде, качестве и количестве самого пробиотика, подлежащего введению в желудочно-кишечный тракт телёнка, возможность заражения гельминтами, аргументация сроков проведения этого мероприятия.

Всё это побудило нас осуществить разработку единой научно обоснованной и легкодоступной технологии искусственной фаунизации телят в раннем онтогенезе и испытать пробиотические препараты в условиях эксперимента и производственной практики.

Данная серия включает в себя три опыта.

3.1.1 Опыт 1

Эффективность инокуляции телятам пробиотического препарата Ветом 1.1

Живая средняя масса телят при рождении в момент постановки на опыт составляла (31,6±0,39) кг. Контроль над динамикой живой массы телят в возрасте 21 день показал, что добавление пробиотического препарата Ветом 1.1 оказало различное влияние на прирост живой массы (рис. 1). Расчет интенсивности при­роста живой массы подопытных телят за период опыта показал, что в среднем она была более высокой у телят, подвергнутых искусственной фаунизации препаратом Ветом 1.1.

Дни от рождения                Контроль                          Ветом 1.1

Рис 1 - Изменение живой массы телят при скармливании Ветом 1.1.

Во второй группе прирост живой массы достоверно превышал контроль на 7,8 % (Р>0,99). Слабый прирост живой массы в контроле обусловлен, очевидно, более низкими процессами пищеварения, обмена и усвоения питательных веществ и, как следствие, скорости роста, что, повидимому, и привело к заболеванию и гибели одного телёнка от диспепсии. В возрасте 45 суток, при переходе к растительным кормам, прирост живой массы искусственно фаунизированных те­лят по-прежнему оставался более высоким: на 7,8 % (Р>0,999). Это связано с луч­шим усвоением рациона и, следовательно, большей обеспеченностью питатель­ными веществами и энергией (табл. 5).

Таблица 5. - Показатели среднесуточного прироста живой массы телят, г

Группы

Периоды исследования, сутки

с 1 по 21

с 21 по 45

I (контроль)

<652,5±1,8

643±3,3

II

702,7±9,26**

693±7,7***

Примечание здесь и далее: * - Р>0,95; ** - Р>0,99; *А* - Р>0,999.

Сравнительную оценку состояния здоровья телят контрольной и опытных групп проводили путём наблюдения. Состояние здоровья телят было удовлетворительным. Выраженных различий между группами не установлено. Животные активно потребляли корм, были подвижны, адекватно реагировали на различные раздражители. В ранний период жизни у телят данного хозяйства отмечались случаи возникновения диареи, при этом аппетит и потребление корма у животных снижались, они становились слабыми и малоподвижными, температура тела была в пределах нормы, иногда наблюдались истечения из носа. Однако у животных из групп, потреблявших пробиотики, практически не отмечалось явлений диареи, а у кого они были, то протекали в легкой форме.

Животные активно потребляли корм, при этом на протяжении всего опыта у телят, получавших пробиотические препараты, прослеживалось более высокое потребление растительных кормов - сена и концентратов (табл. 6).

Так, поедание концентратов было выше в первые три недели на 21,5 % (Р>0,99) - у телят, получавших Ветом 1.1 по сравнению с контрольной группой потреб­ление сена увеличилось на 80 % (р>0,999). Это свидетельствует о том, что фаунизация желудочно кишечного тракта стимулирует аппетит телят в сторону по­требления растительных кормов и, следовательно, активизирует поллигастричный тип пищеварения.

Таблица 6. - Влияние пробиотика на потребление телятами растительных кормов.

Показатели, г

Группы

1 контр

II

Концентраты

99±5,3

122±1,7*

Сено

118±5,5

<212±0,8***

При исследовании рубцового содержимого выявлено, что показатель уровня водородных ионов в нём у телят был оптимальный для данного возраста. Концентрация аммонийного азота в рубцовом содержимом телят опытной группы трёхнедельного возраста была достоверно выше на 56,7 % (Р<0,95) - у телят, получавших Ветом 1.1, по сравнению с контролем. На достоверно более высоком уровне, чем в контроле, поддерживалось количество общего азота в рубцовой жидкости телят опытной группы, которая была выше по сравнению с контролем на 22,2 % (Р<0,99).

Более высокое содержание ЛЖК в PC у опытных групп на 52 % (Р<0,999), видимо, вызвано активизирующим действием комплекса веществ, возникших вследствие деятельности микрофлоры, в том числе расщепляющей белковые соединения, о чём свидетельствует более высокое содержание общего азота (на 19 % (Р<0,99) и аммонийного азота - на 59 % (Р<0,99) по сравнению с контроль­ной группой (табл. 7).

Таблица 7. - Показатели рубцовой ферментации у телят при инокуляции в 21 - суточном возрасте пробиотического препарата.

Показатели Группы

Отношения

I (контр.)

II

II : I

РН

6,10 ±0,14

6,00 ±0,15

98

лжк

мМоль/ЮОмл

3,93 ±0,17

5,95 ±0,16***

152

Аммон. азот, мг/ 100мл

14,98 ±0,8

23,80 ±0,67**

159

Общий азот, мг/100мл

114,33+3,82

135,67 ±1,05**

119

Помимо большего потребления питательных веществ за счет растительных кормов результаты обменного опыта противоречивы по своим показателям и при незначительно отличающейся переваримости жира между контрольной и опытной группами, телята, получавшие пробиотик обладали достоверно повышенным процентом переваримости клетчатки и БЭВ по отношению к контрольной группе на 9,7 % (Р<0,95) и 5,8 % (Р<0,99) соответственно (табл. 8).

8. - Переваримость питательных веществ корма

Показатели, %

Группы

I (контр)

III

Клетчатка

83,3+1,91

91,4±0,95*

БЭВ

87,9±0,84

<93±0,63**

Жир

95,1+0,51

95,8±0,37

При расчете баланса азота видно, что процент использования азота телятами опытной группы был соответственно выше, чем в контрольной, и 6,1 % (Р<0,999) от принятого и на 3,51 % (Р<0,99) от переваренного. Эта тенденция характерна и для переваримости азота, которая на 2,46 % (Р<0,999) выше в опытной группе по сравнению с контрольной (табл. 9).

Показатели баланса Са и Р противоречивы по сравнению с таковыми у азо­та. Если процент переваримости кальция достоверно выше в опытной группе на 19,8 % (Р<0,95). Достоверного повышения процента переваримости фосфора не было отмечено. Процент усвояемости Са от принятого на 25,2 % (Р<0,95) у группы, получавшей Ветом 1.1 соответственно больше, чем в контрольной.

Таблица 9. Баланс азота, кальция и фосфора телят 21 суточного возраста

Показатели

Азот Кальций

Фосфор

  I II

I

II

I

II

Принято с кормом, г

36,3±0,14

36,9±0,04

9,18±0,09

10,11±0,02

6,92±0,05

7,23±0,01

Выделено с калом, г

5,23 ±0,03

4,54±0,04

2,52±0,27

1,11±0,08

0,88±0,12

0,29±0,03

Переварено, г

31,1±0,38

32,4±0,05**

6,66±0,2

9,01±0,3 1

6,04±0,11

6,94±0,04

Переваримость, %

85,6±0,32

87,7±0,1 * * *

72,52±2,67

89,07±5,9**

87,30±0,88

96,02±0,42**

Выделено с мочой, г

10,2±0,11

9,8±0,04

0,19±0,02

0,21±0,01

3,36±0,25

4,32±0,43

Отложено, г

20,9 ±0,5

22,5±0,04**

6,47±0,2

8,8 ±0,11

2,69±0,21

2,62±0,47

% от: принятого

57,5 ±045

61,01±0,05**

70,45±2,64

86,97±0,85**

38,82±3,07

36,25±6,43

% от: переваренного

67,2   ±0,43

69,57±0,09**

97,14±0,32

97,65±0,09

44,47±3,76

37,75±6,54

3.1.2 Опыт 2. Комплексное использование пробиотического препарата Ветом 1.1 и АКД «Фаворин»

Помимо пробиотического препарата в нашем эксперименте одной из групп опытных телят был задан эубиотический препарат - сочетание бактери­ального препарата и назначением других средств, в данном случае автолизата кормовых дрожжей «Фаворин».

В процессе эксперимента проводили наблюдение за состоянием животных: контролировали аппетит, потребление корма, наличие заболеваний и других признаков, характеризующих здоровье животных.

Проведённые наблюдения показали, что состояние здоровья телят было удовлетворительным, выраженных различий между группами не установлено. У животных из опытных групп не отмечалось явлений диареи, а у кого они были, то протекали в легкой форме.

Анализ прироста живой массы подопытных телят подтвердил, что скармливание препаратов благоприятствовало её приросту. Причём положительный эффект был получен не только в молочный период, но и по окончании, то есть в период прекращения дачи испытуемых препаратов. Так, в 45-и суточном возрасте телята опытных групп весили больше во второй опытной группе на 3,8 % и 4,4 % (Р>0,99) в третьей по сравнению с первой - контрольной (рис 2).


                                            I группа                   II группа              III группа

Рисунок 2. Изменение живой массы телят.

На достоверно более высоком уровне по сравнению с контрольной на­ходились показатели среднесуточного прироста телят II и III опытных групп, которые превышали таковой в контрольной,  в  21 - суточном  возрасте  на  7,2 % (Р>0,999)  и 7,3 % (Р>0,99 ), а также на 4,8 % ( Р>0,95 ) и 9,2% (Р>0,99) - с 21 по 45 суточный возраст соответственно (табл. 12 ).

Таблица 12. - Показатели прироста живой массы телят, г.

Группы

Период  исследования, сутки

с 1 по 21

с 21 по 45

I (контроль)

643±1,4

640±3,8

II

689±3,0***

670±7,4*

III

690±9,0**

699±5,8**

В таблице 12 даны результаты, полученные при скармливании телятам растительных кормов. Здесь видно, что в конце опытного периода телята второй и третьей опытных групп в среднем в течение суток съедали достоверно больше на 12 % (Р>0}99) и 19 % (Р>0,999) соответственно сена и на 8 % (Р>0,95) и 17 % (Р>0,99) - концентратов по сравнению с телятами первой, контрольной, группы (табл. 13). Это свидетельствует о повышении аппетита телят и, следова­тельно, скорейшему становлению полигастричного типа пищеварения.

Таблица 13. - Влияние препаратов на потребление телятами растительных  кормов.

Показатели, г

Группы

I (контроль)

II

III

Концентраты, г

161±4,3

<174±2,1*

188±3,9**

Сено, г

<105±1,4

118±1,7**

125±1,6***

Это, в свою очередь, прослеживается при анализе рубцового содержи­мого, который является одним из биохимических тестов, характеризующих течение процессов ферментации потреблённого корма, образование метаболитов, их всасывание и использование животными. Потребление телятами комплекса пробиотических препаратов отдельно - группа II и совместно с АКД «Фаворин» - группа III достоверно увеличило концентрацию ЛЖК в рубце телят 21-суточного возраста на 6,6 % (Р>0,95) и 13,8 % (Р>0,95) соответственно по отноше­нию к контрольной, что свидетельствует о лучшем протекании ферментацион­ных процессов (табл.  14).

В свою очередь увеличение концентрации общего азота на 32,4 % (Р>0,95) и 44,1 % (Р>0,95) во второй и третьей группах по отношению к контрольной и снижение аммиака на 28,1 % (Р>0,95) и 30,9 % (Р>0,95) соответственно, очевидно, связанно с более интенсивным использованием аммонийного азота для синтетических целей микрофлорой, заселённой в ЖКТ телят-молочников посредством использованного в данном опыте пробиотического препарата.

Таблица 14. - Показатели рубцовой ферментации у телят при совместном скармливании
пробиотического препарата и АКД «Фаворин» в 21 - суточном  возрасте.

Показатели

Группы

Отношение

I

II

III

II:I

III:I

РН

6,56±0,14

7,23±0,1*

6.35±0,1

110,3

96,8

ЛЖК, мМоль/100мл

2,94±0,03

3,14±0,07*

3,35±0,12*

106,6

113,8

Аммиак, мг/100мл

35,33±3,4

25,42±0,81*

24,43±1,88*

71,9

69,1

Общий азот, мг/100мл

50,2±5,21

66,47±3,07*

72,33±1,75*

132,4

144,1

Данные обменного физиологического опыта показывают чёткую разницу по переваримости питательных веществ телятами опытных и контрольной группами (табл. 15).

Таблица 15. Переваримость питательных веществ корма.

Показатели, %

Группы

I (контроль)

II

III

Клетчатка

72,0±5,90

92,9±0,77*

87,9±0,94*

БЭВ

91,7±2,08

97,5+0,25*

97,4±0,36*

Жир

87,6±2,41

97,4+0,36*

97,0±0,80*

Примечание: * - Р>0,95; ** - Р>0,99; *** - Р>0,999.

Результаты баланса азота, исходя из табличных данных (табл. 16 ), показали, что процент использования азота в опытных группах был выше, чем в контрольной на 11,2 и 9,7 % (Р>0,999) от принятого и на 2,7 (Р>0,95).

Таблица 16. – Баланс азота, кальция и фосфора телят-молочников 21 – суточного возраста.

Показатели

Азот

Кальций

Фосфор

I

II

III

I

II

III

I

II

III

Принято с кормом, г

37,9±0,1

38±0,2

38,6±0,1

9,8±0,1

10,0±0,1

10,3±0,1

7,4±0,0

7,4±0,0

7,6±0,0

Выделено с ка­лом, г

4,8±0,2

2,1±0,1

2,2±0,0

2,5±0,5

0,6±0,1

0,9±0,1

0,7±0,2

0,1±0,0

0,4±0,0

Переварено, г

33,1±0,2

35,9±0,2

36,4±0,1

7,3±0,5

9,4±0,1

9,4±0,1

6,7±0,2

7,3±0,1

7,3±0,1

Переваримость, %

87,3±0,5

94,5±0,3

94,4±0,1

74,7±5,3

94,2±0,9

91,4±1,0

90,0±1,2

98,8±0,5

95,4±0,4

Выделено с мо­чой, г

12,3±0,2

12,7±0,3

13,2±0,1

0,5±0,1

1,0±0,2

0,9±0,2

1,2±0,1

1,9±0,2

1,5±0,4

Отложено, г

20,8±0,1

23,2±0,1

23,2±0,1

6,9±0,5

8,4±0,2

8,5±0,3

5,4±0,2

5,5±0,2

5,8±0,5

%  от принятого

54,9±0,1

61,0±0,5

60,2±0,2

69,8±4,8

84,6±1,8

82,6±2,5

73,5±2,7

73,8±3,6

76,2±6,0

% от перевареного

62,8±0,2

64,6±0,6

63,8±0,2

93,5±0,6

89,8±1,7

90,3±2,0

81,7±1,0

74,8±2,4

80,0±6,1

и 1,5 % (P>0,95) - от переваренного соответственно. Процент переваримости на 8,2 % (Р>0,999) и 8,1 % (Р>0,999) больше в опытных группах по сравнению с контрольной (табл. 9).

Исходя из показателей баланса кальция и фосфора, достоверно более высокими были значения уровня переваримости по кальцию на 26,1 % (Р>0,95) во второй и 22,4 % (Р>0,95) - в третьей группе, а также процент использования от принятого на 21,1 % (Р>0,95) и 18,3 % (Р>0,95) соответственно - по отношению к первой. Снижение процента использования от переваренного в II и III опытных группах по сравнению с контролем было незначительно и малодостоверно. Среди показаний баланса фосфора на достоверно более высоком уровне находился только процент переваримости, который был на 9,8 % (Р>0,99) и 6,01 % (Р>0,95) больше во II и III группах, соответственно, по отношению к контрольной.

Таким образом, скармливание телятам пробиотического препарата от­дельно и в комплексе с автолизатом кормовых дрожжей положительно отрази­лось на организме телят-молочников. Это выразилось в более интенсивном потреблении кормов растительного происхождения, следствием чего явилось улучшение процессов ферментации в преджелудках. В опытных группах интенсивнее протекали процессы азотистого обмена в сторону анаболизма. Все это, в конечном итоге, отразилось на более интенсивном росте опытных животных.

3.1.3 Опыт 3

Морфофункциональные показатели и антиоксидантный статус крови телят при использовании
 пробиотического препарата Ветом 1.1 и автолизата кормовых дрожжей «Фаворин» в отдельности, а также совместно

Инокуляция телятам пробиотика в значительной степени отразилась на морфологии крови. Так, из приведённых в таблице 18 данных видно, что у телят исследуемых групп содержание эритроцитов в крови колебалось в пределах (5,08-9,78) млн/мкл. При этом важно отметить, что повышение количества эритроцитов у телят II, III, IV, опытных групп было статистически достоверным (р>0,99).

На количество гемоглобина скармливание пробиотика и АКД «Фаворин» от­разилось по-разному. Так, по отношению к контролю уровень Hb достоверно сни­зился по отношению к контролю в крови телят III группы на 6,3 %(р>0,99), тогда как у животных IV группы обнаружено его достоверное повышение на 7,9 %(р>0,95). Статистически достоверное увеличение по сравнению с контролем количества эритроцитов у телят всех опытных групп оказало соответствующее влияние на гематокритную величину, которая также достоверно повысилась у телят II, III и IV групп на 9,6 % (р>0,99); 6,6 % (р>0,99) и 8,2% (р>0,95) соответственно.

Существенные изменения кислородной ёмкости установлены у телят III группы, получавшей АКД «Фаворин», которая снизилась на 7,4% (р>0,99).

Таблица 19. - Морфофункциональные показатели телят в 21 - суточном возрасте.

Показатели

Группы

I

II

III

IV

Эритроциты,  млн./мкл

5,06±0,12

6,08**±0,05

6,99**±0,02

9,78**±0,15

Лейкоциты тыс./мкл

4706±176

8350*±1087

5459±89

8791***±86

Гемоглобин, г/л

116,5±2,78

111,00+1,18

109,2**±0,48

125,67**±1,35

Гематокрит, л/л

30,25±0,57

33,16**±0,23

32,24***±0,05

32,72*±0,35

Кислородная ёмкость, об.%

16,06±0,42

15,08+0,20

14,87**±0,06

17,07±0,19

СОЭ, мкм3

59,88±2,2

54,20+0,89

45,90***±0,11

32,93***±0,12

Средний диа­метр, мкм

6,11±0,54

6,18±0,14

5,63*±0,004

5,01***±0,01

Средняя концен­трация гемогло­бина, %

37,75±0,91

33,85*±0,50

33,97**+0,13

38,77±0,90

ССЭ, пг

22,73±0,54

18,28***±0,05

15,50***±0,08

12,48***±0,44

Иммуноглобулин (ед.)

16,73±0,36

17,73*±0,1

19,17*±0,81

18,60*±0,25

Альбумины

53,45±1,47

48,8*±0,44

56,6±1,67

52,02±0,16

Глобулины: a

20,69±1,29

20±0,39

18,6±1,67

20,88±0,79

b

10,5±0,49

13,9**±0,39

9,9±0,51

12,68*±0,24

g

15,3±0,83

15,4±0,54

14,8±1,14

14,43±0,72

Достоверно и существенно при р>0,999 было снижение СОЭ и у телят III, IV групп по сравнению с контрольной группой на 23,3 и 45 %. Средняя концентрация эритроцитов (СКЭ) достоверно снизилось во второй и третьей опытных группах на 10,3 % (р>0,95) и 10 % (р>0,99) соответственно. Среднее содержание (ССЭ) гемо­глобина в эритроцитах достоверно снижалось во всех опытных группах, что ока­зывало столь заметное влияние на содержание гемоглобина. Достоверно снизился средний диаметр эритроцитов у телят III, IV, групп на 7,9 % (р>0,95) и 18,0 % (р>0,999).

Показатели альбуминов и глобулинов изменялись незначительно и недосто­верно за исключением достоверного увеличения β-глобулинов во второй, четвёр­той группах по сравнению с контрольной, клинического значения, находясь в пределах нормы, они не имеют. В свою очередь, достоверное (р>0,95) повышение количества иммуноглобулинов во II, III, IV опытных группах на 6,0; 14,6; 11,2 % соответственно по сравнению с контрольной показывает повышение гуморальной резистентности организма опытных телят за счёт используемых добавок.

Различие в показаниях мы наблюдаем у телят на 45-е сутки, то есть через 24 дня после прекращения дачи пробиотика (табл. 19). У телят III, IV групп досто­верно повышалось не только число эритроцитов, но и количество гемоглобина, гематокритная величина, кислородная ёмкость, СОЭ, средняя толщина и средний диаметр эритроцитов [р>(0,95-0,99)]. У телят второй опытной группы достоверно увеличились кислородная ёмкость на 12,2 % (р>0,99), скорость оседания эритроцитов на 10,7 % (р>0,95), средняя толщина эритроцитов на 4,0 % (р>0,95), ССЭ и средний диаметр на 13,5 и 3,7 % при (р>0,95) соответственно.

Эритроциты телят контрольной и опытных групп функционально неравно­значны. На фоне применения пробиотика они более насыщены гемоглобином.

Таблица 20. - Морфофункциональные показатели телят в 45-и суточном возрасте.

Показатели Группы
 

I (контр.)

II

III

IV

Эритроциты, млн./мкл

5,95±0,18

5,91±0,20

7,22**±0,005

7,88***±0,07

Гемоглобин, г/л

7,25±0,19

7,93***±0,19

9,27**±0,11

9,67**±0,27

Гематокрит, г/л

0,30±0,01

0,34±0,01

0,42**±0,02

q, 49* * * ±0,01

Кислородная ёмкость, об.%

9,76±0,20

11,02**±0,07

12,58***±0,16

13,29**±0,45

СОЭ, мкм3

51,40±1,05

56,90*±1,09

60,03*±2,90

63,90***±0,50

Средняя толщи­на, мкм

0,50±0,004

0,52*±0,004

0,53*±0,01

0,53** ±0,003

Средняя концен­трация гемогло­бина, %

24,20±0,49

23,73±0,42

21,17+1,27

22,47±0,63

ССЭ, пг

12,25±0,27

13,90*±0,40

12,83±0,16

12,27±0,47

Средний диаметр, мкм

5,83±0,06

6,04*±0,02

6,13*±0,11

6,25**±0,02

Что касается витамина А, то из литературных источников установлено, что рубцовые микроорганизмы образуют β и γ каротины. Следует, однако, отметить, что микрофлора способна и к разрушению витамина А. Так, при инкубации в рубцовом содержимом ацетата витамина А 36 % последнего распалось. Имеющиеся данные свидетельствуют о том, что роль микрофлоры в А - витаминном питании жвачных выяснена ещё недостаточно (А.А. Алиев. 1997 г.).

Заключение

В рубце жвачных животных благоприятные условия для развития микробов: постоянная температура [(37-39) °С], постоянная рН (5,8-7,3), бесперебойная пода­ча слюны (70 л/сут), периоды поступления измельченного корма и его перемеши­вание в результате сокращения рубца. Образующиеся газы [до (700-1000) литров в сутки]- углерода диоксид (65%), метана (30%), аммиака, сероводорода, азота, во­дорода - создают анаэробные условия (Н.Р. Ассонов, 1989г.).

В первые дни жизни и в течение молочного периода основная микрофлора ЖКТ жвачных животных представлена молочнокислыми бактериями. При по­треблении грубых кормов и с развитием преджелудков появляются другие физио­логические группы микроорганизмов, а в (2-3)-х месячном возрасте животного микробное население рубца становится более или менее постоянным (S. Peach, 1979 г.).

Благоприятный эффект от воздействия препарата Ветом 1.1 достигается за счет антагонизма с патогенными бактериями, участия в процессах пищеварения и обмена, поступления витаминов, особенно группы В, синтезируемых микробами, а также других биологически активных веществ обладающих антитоксическими свойствами. Анти­токсическое действие микрофлоры проявляется в защите эпителия, устранении или нейтрализации гистаминогенных микроорганизмов, повышении порога резистентности организма эндотоксину Е. colli (Gros М.,1968).

В данной работе описаны исследования проведённые в Политотдельском отделении учхоза Центральное, Белгородского района, Белгородской области, ла­боратории биологических исследований БГСХА.

Выполнено три серии опытов на телятах в возрасте от рождения до 21-и и 45-и суточного возраста.

По результатам исследований мы изучали влияние названых препаратов на белковый, жировой и углеводный обмен, неспецифическую резистентность, фи­зиологическое состояние организма, потребление кормов и интенсивность роста телят.

В процессе работе исследованы и выявлены закономерности акселерации заселения ЖКТ телят молочников с первых суток жизни симбионтной микрофло­рой с использованием заведомо известных штаммов микроорганизмов, входящих в используемый пробиотический препарат. Исследовали влияние автолизата кор­мовых дрожжей при совместном использовании последнего с пробиотиком Ветом 1.1, что правомерно можно назвать эубиотическим препаратом.

Интенсивность роста телят

Исследуя среднесуточный прирост живой массы телят опытных групп и исходя из того, что уровень кормления в опытных и контрольной группах был одинаковым, видно, что все испытуемые препараты, а также их сочетания между собой оказывали стимулирующее влияние на рост молодняка. Особенно это про­явилось при сочетании препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворин», где среднесуточ­ный прирост живой массы превышал контроль на 8,1 % в 21- суточном и на 9,2 % в 45-и суточном возрасте(рис 3).


Соответственно  порядку  расположения: 1-й опыт, II-я гр.;  1-й опыт, III-я гр.; II-й опыт, II-я гр.; 2-й опыт, III-я гр..

Рисунок 3. - Процентные отношения прироста живой массы опытных групп к контрольным по первому и второму опытам.

Потребление корма

Использование пробиотика повлияло на поедаемость телятами сена и концентратов. Телята контрольной группы были более индиферентны к кормам растительного происхождения после начала опыта (рис 4).

В трехнедельном возрасте опытные телята потребляли грубых кормов достоверно больше своих контрольных сверстников как в первом опыте, так и во втором, более интенсивно потребляли их телята, получавшие препарат Ветом 1.1 (сена на 80 %, комбикорма на 23 % ).


Соответственно порядку расположения: Конц., 1-й опыт; Сено, 1-й опыт; Конц., 2-й опыт; Сено, 2-й опыт.

Рисунок 4. Поедаемость кормов телятами опытных групп по отношению к контрольной в первом и втором опытах.

Показатели азотистого метаболизма

Показатели обмена азота, при постановке балансового опыта, показывают явные изменения концентрации в сторону увеличения его ретенции у телят опыт­ных групп, как в первом, так и во втором опыте.

Концентрация общего белка в плазме крови телят опытных групп по от­ношению к контрольным отличались незначительно. Суммарная концентрация САК в крови телят с разной степенью достоверности была ниже у телят опытных групп по всем опытам.

Концентрация мочевины в крови телят всех опытных групп в обоих опы­тах была ниже по сравнению с контрольными группами, особенно во втором опы­те, во второй и третей группах (рис 5).

 II гр.,      III гр.,      II гр.,       III гр. 
Опыт 1    Опыт 1  Опыт 2  Опыт 2
 САК

II гр.,          III гр.,      II гр.,        III гр.
Опыт 1      Опыт 1   Опыт 2    Опыт 2
Мочевина, мг/%

Рисунок 5. - Концентрация САК и мочевины в крови опытных групп по от­ношению к контрольным по первому и второму опыту.

Учитывая, что концентрация мочевины в определённой мере отображает степень деградации аминокислот, обычно делают вывод о том, что, чем меньше мочевины в крови, тем меньше распадается аминокислот или лучше идут процессы синтеза белка в организме.

Таким образом, судя по изменениям концентрации общего белка, мочеви­ны и САК в крови телят, использование пробиотика и АКД «Фаворин» благоприятно отразилось на азотистом обмене. Особенно это прослеживается во втором опыте при использовании пробиотика.

Переваримость питательных веществ кормов

Показатели переваримости жира, клетчатки, БЭВ показывают, что телята опытных групп были лучше обеспечены не только пластическими, но и энергетическими веществами (рис 6).


% отношение к контрольным группам

В порядке расположения слева направо: клетчатка, 1 опыт; БЭВ, 1 опыт; жир, 1 опыт; клетчатка, 2 опыт; БЭВ, 2 опыт; жир, 2 опыт.

Рисунок 6. - Отношение переваримости питательных веществ опытных групп по отношению к контрольным по первому и второму опыту.

Метаболиты рубцовой ферментации

Количество ЛЖК, общего азота в рубцовом содержимом телят всех опытных групп трёхнедельного возраста, как видно из рисунка 7, достоверно превы­шало таковое у телят контрольных групп второго и третьего опытов, что, видимо, связано и с лучшей поедаемостью растительных кормов телятами опытных групп. Однако содержание общего азота и мочевины у телят контрольных групп и опытных (первого и второго опытов) противоречивы по своим показателям. Если в первом опыте концентрация аммонийного азота выше у телят опытных групп, что, видимо, связанно с активизирующим действием комплекса веществ, в том числе расщепляющих белковые соединения за счёт микрофлоры, входящей в со­став исследуемых препаратов, то во втором опыте концентрация аммонийного азота была достоверно выше в контрольной группе. При более высокой концентрации общего белка в рубцовом содержимом опытных групп можно сделать вывод о более интенсивном использовании аммиака микрофлорой на синте­тические цели для построения своих клеток и следовательно, анаболическом влиянии исследуемых препаратов на организм телят.

Рисунок 7. - Метаболиты рубцовой ферментации.

Резистентность организма телят

Высокие показатели морфофункционального состава крови у растущих те­лят, в пределах нормы, при равных условиях выращивания и кормления, являют­ся признаком более интенсивного развития физиологических функций организма - роста, обмена веществ, кровообращения, резистентности (рис. 8, 9).


Рисунок  8. - Отношение  морфофункционального  состава  крови  опытных групп к контрольной (третий опыт) в 21- суточном возрасте телят.

Рисунок  9.   Отношение  морфофункционального  состава крови  опытных групп к контрольной (третий опыт) в 45- суточном возрасте телят.

Следовательно, применение Ветом 1.1 и комплекса его с АКД «Фаворин» существенно влияет на морфофункциональные свойства эритроцитов. Число эритроцитов увеличивается, однако концентрация гемоглобина у одних снижает­ся (II-III гр.), а у других - повышается. Отчётливо снижается СОЭ, а затем и ССЭ. Это свидетельствует о перестройке в организме телят эритрообразования и раз­ных его механизмов.

Появление в крови телят II, III, IV групп эритроцитов большего размера при одновременном увеличении содержания гемоглобина, гематокрита и кислородной ёмкости свидетельствуют о большей интенсивности эритропоэза, являющегося одним из пусковых механизмов сложных процессов, лежащих в основе окислительного потенциала крови и неспецифической резистентности организма телят-молочников.

На основании полученных результатов можно сделать вывод о положительном влиянии пробиотика на резистентность телят. Но резистентность обу­словлена не только перечисленными показателями, но и связанна с антиоксидантным статусом организма.

Пробиотик Ветом 1.1 способствует повышению содержания витамина Е как главного липидного антиоксиданта блокирующего цепные реакции свободно-радикального окисления, что, видимо, связано с мобилизацией в кровь α-токоферола.

Литературные данные Е.Б. Бурлакова, В.Л. Владимирова убеждают, что именно обеспеченность организма витамином Е является основным фактором антиоксидантной защиты в липидных мембранах клеток и липопротеидов в крови. Эти данные указывают, что добавка Ветом 1.1 является стимулятором выхода в кровь (возможно, из печени) (рис. 10).


Рисунок 10. Уровень токоферола в плазме крови телят 21 сут. возрасте.

Таким образом, комплексное введение двух препаратов способствует увеличению антиоксидантной защиты крови за счет накопления витамина Е.

При добавлении к пробиотику АКД «Фаворина» (IV группа) можно предположить определённое регуляторное влияние на снижение активности антиоксидантных ферментов в эритроцитах, которое отнюдь не приводит к увеличению концентрации первичных и вторичных продуктов ПОЛ в плазме крови, что объ­ясняется накоплением в крови двух мощных антиоксидантов (витаминов С и Е), обладающих синергичным механизмом действия, причём водорастворимый антиоксидант витамин С неферментативно регенерирует из окисленной в восстановленую форму, токоферол - гидрофобный, мембранный, липоидный антиоксидант. Возможно, адсорбируя в кишечнике экзогенные токсины указанных бактериаль­ных форм, адсорбент способствует накоплению в крови витаминов Е и С, что приводит к существенному снижению концентрации в плазме крови продуктов пероксидации, и это в свою очередь обусловливает снижение активности антиоксидантных ферментов эритроцитов.

Этап 2.

ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ, ИНТЕНСИВНОСТЬ РОСТА И ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНЫЕ КАЧЕСТВА СВИНЕЙ ПРИ РАЗ­ДЕЛЬНОМ, А ТАКЖЕ СОВМЕСТНОМ ПРИМЕНЕНИИ ПРЕПАРАТОВ ВЕТОМ 1.1 И АКД “ФАВОРИН”

1. Материал и методы исследования

В соответствии с поставленной целью и вытекающими из неё зада­чами в период с августа по ноябрь 2006 года было проведено пять опытов по применению препаратов Ветом 1.1. и АКД «Фаворин» отдельно и совместно, на племенной свиноферме учхоза «Центральное» ГСХА, Белгородского района Белгородской области.

Препараты Ветом 1.1. и АКД «Фаворин» испытывали на свиньях разных возрастных групп: поросятах-отъёмышах (2-4) - месячного возраста, ремонтных свинках 4-9 - месячного возраста, супоросных и лактирующих свиноматках. Всего проведено 7 опытов, в каждом из них были опытные и контрольная груп­пы (см. схему опытов, табл. 1).

1. Схема опытов

Группы

Кол-во жи­вотных в группе

Продолжительность опыта, сут.

Условия опыта, препарат

Опыт 1.

Поросята-отъёмыши (2-4)- месячного возраста.

I

II

III

30

30

30

60

Основной рацион (ОР)

ОР+Ветом 1.1

ОР + АКД «Фаворин»

Опыт 2.

Ремонтные свинки (4-9)- месячного возраста

I

II

III

18

17

20

60

ОР

ОР +Ветом 1.1

ОР + АКД «Фаворин»

Опыт 3.

Свиноматки в   супоросный и лактационный периоды

I

II

III

IV

12

12

12

12

55

ОР

ОР+Ветом 1.1

ОР + АКД «Фаворин»

ОР + Ветом 1.1+АКД «Фаворин»

Опыт 4.

Поросята-отъемыши (2-4) - месячного возраста

I

II

III

16

17

15

60

ОР

ОР+Ветом 1.1

ОР + АКД «Фаворин»

IV

17

 

ОР+Ветом 1.1+АКД «Фаворин»

Опыт 5.

Свиноматки в супоросный и лактационный периоды

I

II

III

IV

16

16

16

16

55

ОР

ОР+Ветом 1.1

ОР+АКД «Фаворин»

ОР+Ветом 1.1+АКД «Фаворин»

Производственная проверка

Опыт 6.

Свиноматки в супоросный и лактационный периоды

I

II

III

11

11

11

106

ОР

ОР+Ветом 1.1

ОР+АКД «Фаворин»

Опыт 7.

Поросята-отъемыши (2-4) - месячного возраста

I

I

III

30

35

35

60

ОР

ОР+Ветом 1.1

ОР+АКД «Фаворин»

Перед раздачей животным препараты задавали с половинной нормой комбикорма, который поедался животными в течение не более двух часов.

В первой серии опытов (опыты 1, 2 и 3) определяли биологическую дос­тупность и эффективность препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворин» для свиней, во второй серии (опыты 4 и 5) выявляли различия в эффективности Ветом 1.1 в сравнении с АКД «Фаворин». После установления оптимальных доз препара­тов проводилась проверка полученных результатов в научно-производственных испытаниях на супоросных свиноматках и поросятах-отъемышах (опыты 6 и 7). Для каждого опыта подбирали животных в группы по принципу пар-аналогов с учетом возраста, живой массы, продуктивности, физиологического состояния и происхождения (эстонская беконная порода).

Содержание подопытных свиней было групповым, в станках: (2-4) -месячные - по 15 гол, (4-9) - месячные - по 9-10; свиноматки содержались в ин­дивидуальных станках. Кормление было двухразовым по нормам ВИЖ (1985 г.). Рационы балансировались по основным питательным веществам (А.П. Калашников с соавт., 1985 г.). Поение осуществлялось из корыт вволю.

Во всех опытах учитывались следующие показатели: клиническое со­стояние животных, живая масса при постановке на опыт и в конце опыта, сред­несуточный прирост живой массы, затраты корма на 1 кг прироста живой массы, количество поросят в приплоде, их сохранность, основные морфологические и биохимические показатели крови, показатели естественной резистентности. В производственном эксперименте определялась экономическая эффективность применения Ветом 1.1 и АКД «Фаворин».

Для определения качества продукции по окончании производственной проверки проводили контрольный убой 3 гол из каждой группы (опыт 7) согласно методике A.M. Поливоды с соавт. (1979 г.). Для исследования химического состава, калорийности мяса и проведения органолептической оценки мяса и бульона из него отбирали средние пробы мякоти полутуш.

Формирование групп и организация нормированного кормления животных, учет их роста, развития и продуктивности, взятие проб крови осуществля­ли на основании действующих государственных стандартов, а также методиче­ских положений и установок, разработанных ВИЖ и РАСХН, в описании раз­личных авторов (А.И. Овсянников, 1976 г.; С.П. Кулаченко, Э.С. Коган, 1979 г.; 1981; Л.В. Куликов, 1987 г.).

Физиолого-биохимическое состояние оценивали по целому ряду показа­телей крови, отражающих состояние белкового, углеводно-жирового и витаминно-минерального обмена, а также естественную резистентность (Кондрахин И.П. с соавт., 1985 г.). Пробы крови брали из ушной вены через (3-4) часа от начала утреннего кормления животных.

В крови определяли: общее количество эритроцитов и лейкоцитов - путём подсчета в камере Горяева; гемоглобин - гемометром Сали; лейкограмму - в мазках, окрашенных по Романовскому-Гимза (на двух стеклах по 600 клеток на каждом); общий белок сыворотки - рефрактометрически; белковые фракции -методом электрофореза на бумаге; иммуноглобулины - нефелометрически; ре­зервную щелочность - по А.В. Неводову (1971 г.); кетоновые тела (КТ) - спектрофотометрически по Энгфельду в модификации С.М. Лейтеса и А.И. Одинова (1971 г.); общий кальций - титрометрически по де Ваарду; неорганический фос­фор - колориметрически с ванадат-молибденовым реактивом; витамин А - спектрофотометрически; аспартатаминотрансферазу (АсАТ) и аланинами-нотрансферазу (АлАТ) - по Ройтману и Френкелю; лизоцимную активность сы­воротки крови (ЛАСК) - колориметрически с культурой клеток Micrococcus lysodeikticus (марка А); бактерицидную активность (БАСК) - на культуре Staphylococcus aureusпо П.А. Емельяненко; фагоцитарную активность лейкоци­тов (ФА) - по В.С. Гостеву в описании С.И. Плященко, В.Т. Сидорова (1979 г.) и О.В. Мерзленко с соавт., (2001 г.).

Органолептическую оценку вареного мяса и бульона проводили согласно Методическим рекомендациям (1982 г.).

Полученный экспериментальный материал обрабатывали статистически с использованием персональной ЭВМ. Результаты рассматривали как достоверные, начиная со значения р<0,05 (Г.Ф. Лакин, 1973 г.).

2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Изучение биологической доступности и эффективности препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворина».

Биологическое воздействие препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворин», а также степень их трансформирования в организм свиней изучали на фоне полнорационного кормления подопытных свиней.

Опыты на поросятах-отъёмышах

Интенсивность роста поросят, сохранность и затраты корма на прирост представлены в табл. 2.

Из данных таблицы видно, что за два месяца наблюдения живая масса подопытных поросят увеличилась по сравнению с контролем от препарата АКД «Фаворин» на 7,3, от Ветом 1.1 - на 11,3 %. Среднесуточный прирост за это время также был больше чем в контрольной группе на 7,4 и 11,7 % соответ­ственно. Заслуживает внимания тот факт, что препарат Ветом 1.1 оказал ростостимулирующее влияние: приросты в третьей группе были на 10,7 г, или на 4,0 % выше, чем во второй группе.

Затраты корма на прирост массы тела у поросят контрольной группы со­ставили 6,36 корм, ед., тогда как во второй группе на 6,8 % меньше, а в третьей - еще меньше (на 10,2 %).

Таблица 2. - Продуктивность и затраты корма на прирост живой массы.

Показатели

I  группа  (кон­трольная)

II      группа (опытная)

III      группа (опытная)

Живая масса, кг в начале опыта

17,2+0,6

17,3+0,6

17,6±0,9

в конце опыта

32,2±1,0

33,4± 0,9

34,3+ 1,1

Прирост живой массы, кг

15,0+0,8

16,1±0,9

16,7±1,0

% к контрольной группе

-

<107,3

111,3

Среднесуточный прирост

250,0+15,0

268,5±18,0

279,2+ 16,0

% к контрольной группе

-

107,4

111,7

Затрачено на 1 кг прироста, корм. ед.

6,36

5,93

5,71

% к контрольной группе

-

93,2

89,8

Отмечено также положительное влияние препаратов на общее состояние поросят, морфологический и биохимический состав их крови. Они отличались большей подвижностью, хорошим аппетитом. Показатели температуры тела, частота пульса и дыхания при контрольных замерах соответствовали физиологическим нормам для животных данного возраста. Респираторные и желудочно-кишечные заболевания не регистрировались на протяжении всего времени наблюдения. Тогда как в контрольной группе у двух поросят (6 %) наблюдался кашель и у трех (10 %) регистрировали клинические признаки желудочно-кишечных расстройств, однако температура тела у больных оставалась в пределах нормы.

Через два месяца от начала введения в корм АКД «Фаврин» в группе, получавшей его, содержание эритроцитов оставалось на исходном уровне, число лейкоцитов уменьшилось на 11,4 % (р>0,05), а содержание гемоглобина увели­чилось на 5,3 % (р<0,01). В группе, получавшей препарат Ветом 1.1, происходили те же по направленности изменения: увеличение содержания в крови гемоглобина (на 4,1 %, р<0,05) и статистически малозначащее снижение числа лейкоцитов (на 11,9 %, р>0,05). Однако на этом фоне отмечалось также сущест­венное увеличение числа эритроцитов (на 6,0 %, р<0,05).

Что касается лейкограммы, то в ней не отмечено каких-либо существен­ных, подтвержденных статистическим анализом, перемен. В сравнении с контрольной группой в конце опыта наблюдалась лишь тенденция повышения доли эозинофилов и снижения сегментоядерных нейтрофилов за счет увеличения доли лимфоцитов, что следует оценивать положительно (снижение стрессорной реакции и повышение иммунного надзора в крови).

При анализе данных биохимических исследований сыворотки крови в исходном состоянии выявлены: низкий уровень общего белка, сниженная доля в нем альбуминов [(35,5-36,2) %], пониженное содержание витамина А, что мож­но считать показателем А-гиповитаминозного состояния.

В процессе роста поросят контрольной группы наблюдалось повышение в сыворотке крови уровня общего белка (на 40,3 %, р<0,001), доли в нем альбу­минов (на 51,3%, р<0,001), незначительно увеличивалась активность АсАТ (на 10,6 %, р>0,05) и существенно - концентрация кальция (на 27,8 %, р<0,01). Дру­гие исследуемые показатели колебались в пределах статистической ошибки разницы с исходным состоянием.

Эти положительные интерьерные сдвиги наблюдались также и у поросят опытных групп. Однако они были более рельефными и находились в прямой зависимости от препарата. Так, во второй группе повышение содержания обще­го белка было на 50,5%, что существенно больше чем в контроле (на 10,2 %, р<0,05); доля альбуминов увеличивалась на 69,4%, или на 18,1% больше чем в контроле (р<0,05); соотношение А:Г сдвигалось в сторону альбуминов на 8,1 %. Несколько в большей мере возрастала активность ферментов переаминирования, но так же, как и в контроле, эти изменения не подтверждались статистически. Отмечалось существенное различие с контролем по содержанию кальция. Если в контроле наблюдалось его повышение по сравнению с исходным состоянием, то в опытной группе это повышение было незначительным, из-за чего разница с контролем оказалась существенной (17,3 % в пользу контроля при р<0,05).

В сыворотке крови поросят второй группы было больше неорганического фосфора (на 10,4 %, р<0,05), а кальций-фосфорное соотношение составило 1,32 против 1,72 в контроле. В сыворотке крови поросят, получавших АКД «Фаворин», отмечалось более выраженное чем в контроле повышение содержания иммуноглобулинов (на 22,6 % при р<0,05), что в конечном итоге оказалось больше контроля на 10,1 % при р>0,05.

В третьей группе под влиянием препарата происходили те же изменения в биохимических показателях крови, что и во второй группе: повышалось содер­жание общего белка (на 35,6 % против 40,2 % в контроле, р>0,05), увеличивалась доля в нем альбуминов (на 54,7 % против 51,3 % в контроле), соотношение А:Г превышало контроль на 12,9 %, увеличивалась резервная щелочность (на 15,4 % против 3,4 % в контроле, р<0,05). По остальным изучаемым показателям, за исключением менее значимого повышения содержания кальция (на 11,0 % против 27,8 %), какие-либо статистически подтверждаемые различия с контролем не от­мечались.

В подопытных группах отмечались также следующие положительные тенденции в изменении обменных процессов: повышенная активность трансаминаз, что можно связать с интенсификацией синтеза белков; увеличенное со­держание иммуноглобулинов, что характеризует более надежную иммунную защиту организма.

Опыты на ремонтных свинках

У ремонтных свинок наблюдались признаки легкого отставания в росте. Анализ рациона позволил определить алиментарную форму гиповитами­ноза. В рационе отсутствовали корма, богатые каротином (травяная мука и др.). При исследовании сыворотки крови перед проведением опыта у них обнаружено низкое содержание витамина А [(0,68-0,79)мкг/мл). Кроме того, у трех свинок (5,5 %) отмечался кашель, а у двух (3,6 %) регистрировались признаки расстройства желудочно-кишечного тракта.

Среднесуточный прирост живой массы свинок второй группы оказался больше чем в контроле на 29,6 г, или на 9,4 % (р>0,05), третьей - на 50,7 г, или на 16,6% (р<0,05). Затраты корма на прирост массы тела были меньше во второй группе - на 9,0 %, в третьей - на 14,3%.

Сохранность поголовья в контрольной группе составила 88,9 %, во второй и третьей (опытных) - на 5,2 %и 11,1% выше.

По данным морфологических исследований крови существенных различий между группами по содержанию эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина не наблюдалось. Отмечалась лишь слабо выраженная тенденция увеличения числа эритроцитов и концентрации гемоглобина при незначительном снижении количества лейкоцитов в опытных группах.

Биохимический статус сыворотки крови имел тенденцию к улучшению, однако, на статистически малозначимые величины, за исключением белкового индекса, щелочного резерва. Соотношение между альбуминами и глобулинами во второй группе было выше чем в контроле на 0,08 %, или 11,9 % (р>0,05), в третьей - на 0,09 %, или 13,4 % (р=0,05). У поросят, получавших АКД «Фаворин», щелочной резерв увеличивался на 3,01 об% СО2, или 6,8 % (р>0,05), у получав­ших Ветом 1.1 - на 3,99 об% СО2, или 9,0 % (р<0,05).

Под влиянием АКД «Фаворина» наблюдалась тенденция увеличения в сыворотке крови свинок общего белка соответственно группам на 8,0 % (р>0,05) и доли в нем альбуминов (на 0,37 г% соответственно, р>0,05). Из тяжелых фракций белка отмечено возрастание доли альфа-глобулинов (на 0,25 г%, р>0,05) и снижение доли γ-фракции (0,22 г%, р>0,05). Эти, хотя и небольшие, сдвиги в фракциях белков свидетельствуют о стимуляции процессов протеосинтеза. На это указывают также увеличение белкового индекса, небольшая ак­тивация ферментов переаминирования (на 15,8 % к контролю, р>0,05), сниже­ние в общей циркуляции мочевинного азота (на 21,2 %, р>0,05).

Полученные данные свидетельствуют о положительном влиянии АКД «Фаворин» на организм ремонтных свинок. Применение препарата способство­вало оптимизации метаболических процессов, росту и развитию свинок, про­филактике респираторные и желудочно-кишечные заболеваний.

Физиологическое состояние свиноматок и впоследствии родившихся от них поросят

АКД «Фаворин» им Ветом 1.1 вводили в рацион свиноматок в последнюю треть супоросного периода в соответствии со схемой опыта 3 (см. табл. 1) и не отменяли до отъема поросят.

По питательности рационы соответствовали нормам кормления свиноматок. Во второй опытной группе мы вводили АКД «Фаворин», в третьей - совместно АКД «Фаворин» и Ветом 1.1, четвертая группа животных - Ветом 1.1. Полученные на этот счет результаты представлены в табл. 3.

Таблица 3. Продуктивность свиноматок, в среднем на 1 животное.

Показатели

I        группа (контроль)

II       группа (опытная)

III     группа (опытная)

IV     группа (опытная)

Количество свинома­ток, гол

12

12

12

12

Родилось жизнеспо­собных поросят

10,4±0,3

10,9±0,3

11,1±0,4

11,4±0,4

Живая масса, кг при рождении

<1,25±0,01

1,27±0,02

1,32±0,02*

1,35±0,03*

в % к контролю

-

101,6

105,6

108,0 "

при отъеме

7,42±0,3

8,02±0,5

8,25±0,4

8,46±0,4

в % к контролю

-

108,1

111,2

114,0

Прирост за подсосный период, кг-гол -1

6,17±0,4

6,75±0,4

6,93±0,3

7,11±0,4

Среднесуточный при­рост, г

137+13

150±10

154+15

158+14

в % к контролю

-

109,5

112,4

115,3

Число поросят при отъеме

8,7±0,2

9,3±0,3

9,8±0,2**

10,0±0,3*

Сохранность, %

83,6

85,3

88,3

87,7

Как видно из таблицы, при введении в рацион препаратов во второй, третьей и четвертой опытных группах родилось жизнеспособных поросят больше чем в контроле на 4,4; 6,1 и 8,8 % соответственно. Живая масса одного поросенка при рождении была также больше на 0,02 (р>0,05); 0,07 (р<0,05) и 0,1 кг(р<0,05).

Препараты, назначенные свиноматкам, оказывали положительное влия­ние на последующий рост поросят. Так, к моменту отъема средняя масса поро­сенка контрольной группы составила 7,42 кг, тогда как в опытных группах – (8,02-8,46) кг (р>0,05). Количество поросят к отъему в гнездах свиноматок опытных групп было больше чем в контроле соответственно на 6,9 (р>0,05); 12,6 (р<0,01) и 14,9 % (р<0,05). Использование препаратов в рационах свиноматок позволило обеспечить и несколько большую сохранность поросят [на (1,7-4,7) %]. Это объясняется тем, что препараты АКД «Фаворин» и Ветом 1.1 по отдельности и вместе улучшали общефизиологическое состояние организма свиноматок. На этот счет можно привести данные гематологических исследований.

При скармливании препаратов в крови свиноматок увеличивалось количество эритроцитов: от АКД «Фаворин» - на 2,5 (р>0,05); совместное введение препаратов АКД «Фаворин» и Ветом 1.1 - на 12,3 (р<0,05); введение Ветома 1.1 - на12,8 %(р<0,05).

Концентрация гемоглобина также повышалась, причем в прямой зависимости от комбинации применяемого препарата - на 5,6 (р<0,01); 7,8 (р<0,001) и 10,4 % (р<0,001) соответственно. В содержании лейкоцитов статистически значимых различий по группам не наблюдалось.

Существенные изменения отмечались по общему белку сыворотки крови. Его содержание повышалось во второй группе - на 4,9, в третьей - на 6,5 и в четвертой - на 8,3 % (во всех случаях р<0,05).

В общем белке несколько увеличивалась доля альбуминов и α-глобулинов, тогда как β- и γ-глобулинов было меньше, хотя ни одно из этих из­менений не подтверждалось статистически. Содержание кальция и фосфора имело небольшую тенденцию к повышению (р>0,05).

У поросят-сосунов к моменту отъема также имелись некоторые различия между группами по тем же показателям, что и у их матерей: в подопытных группах тенденция большего содержания эритроцитов [на (3,4-6,9) %, р>0,05], достоверное повышение концентрации гемоглобина (во второй группе - на 7,3 %, р<0,05; в третьей - на 7,6; р<0,01; в четвертой - на 9,7; р<0,01). Число лей­коцитов в крови практически не изменялось, тогда как содержание общего бел­ка в сыворотке неуклонно возрастало от первой группы к четвертой. Во второй группе его было больше чем в контроле на 1,5 %, р>0,05; в третьей - уже на 14,0; p<0,001; в четвертой - на 15,4; р<0,001. Отмечалось несущественное уменьше­ние мочевины [на (6,5-10,0) %, р>0,05]и общего кальция [на (1,5-2,6) %, р>0,05]. Тогда как неорганического фосфора обнаруживалось несколько больше [на (1,5-2,7) %, р>0,05], хотя это мало отражалось на фосфорно-кальциевом соотношении (в контроле 1:1,67, в четвёртой группе - 1:1,71). Регистрировалось незначитель­ное повышение активности трансаминаз, не выходящее за пределы допустимых физиологических границ и со статистически недостоверной разницей по отношению к контролю.

Улучшение гематологических показателей сопровождалось положитель­ными изменениями клинических данных: у поросят опытных групп, особенно третьей и четвертой, отмечали большую подвижность, улучшение аппетита, выраженную реакцию на внешние раздражители, их кожный покров был более чистым. За время наблюдения желудочно-кишечные расстройства не выявля­лись, в то время как в контроле они наблюдались у 6 (5 %) животных (диарея). Поскольку и контрольные и опытные группы поросят-отъёмышей, ремонтных свинок и взрослых свиноматок находились в одном помещении и получали одинаковые корма, отмеченные изменения не были связаны с улучшением мик­роклимата или других условий содержания. Мы объясняем их оптимизацией витаминного питания.

Таким образом, применение препаратов АКД «Фаврин» и Ветом 1.1 отдельно и совместно поросятам-отьёмышам, ремонтным свинкам и свиномат­кам (в супоросный и подсосный периоды) положительно отразилось на их фи­зиологическом состоянии, сохранности и продуктивности.

Опыты на поросятах-отъёмышах

Опыт проводили на 4 группах поросят-отъёмышей согласно приведенной выше схеме опыта (см. табл. 1).

В предварительный период исследования установлено, что клини­ческое состояние животных и их продуктивность в различных группах были практически одинаковыми. У отдельных поросят (8 гол.) регистрировались клинические признаки респираторных заболеваний (ринит, кашель, отставание в росте и развитии); у десяти других наблюдались расстройства функции желудочно-кишечного тракта.

Назначение АКД «Фаворин» и Ветом 1.1 оказало положительное влияние на клиническое состояние животных: в опытных группах исчезли при­знаки угнетения, поросята становились более энергичными, охотнее поедали корм, прекращался кашель и поносы [на (4-7)-е сут.], кожный покров становился гладким и более чистым, исчезала взъерошенность щетины.

Более тщательное изучение состояния поросят проводилось в от­дельном опыте, результаты которого отражены в табл. 4.

Из данных таблицы видно, что сохранность поросят и в контроле и в опытных группах была 100%-ной. Среднесуточный прирост поросят, получав­ших препараты, превышал данные контрольной группы на (8,3-11,2) % (р<0,01).

Отмечено также терапевтическое влияние препаратов. На фоне применения АКД «Фаворин» исчезали клинические признаки диареи, а Ветом 1.1, кроме того, способствовал выздоровлению и от респираторных заболева­ний, подобное наблюдали и при совместном применении препаратов. По окончании основного периода опыта наблюдение за поросятами продолжалось еще в течение двух месяцев/ Какого-либо ухудшения общего состояния, заболеваемости поросят не наблюдалось. Преимущество в интенсивности роста опытных групп над контрольной сохранялось.

4. Результаты учета интенсивности роста, сохранности и заболеваемости поросят.

Показатели Группы

I (контрольная)

II (опытная)

II (опытная)

V (опытная)

Количество животных в начале опыта

16

17

15

17

в конце опыта

16

17

15

17

Сохранность, %

100

100

100

100

Живая масса поросят, кг. в начале опыта

15,8±1,05

15,7±0,93

15,5±0,87

15,9±1,02

в конце опыта

38,3±1,70

40,1±1,98

40,2±1,84

40,4±1,92

в % к контрольной группе

-

+4,7

+5,0

+5,5

Среднесуточный прирост, г

375,0±6,85

406,1±5,78**

411,0±6,02**

408,4±6,13**

Разница с  контрольной  группой, г

в % к контрольной группе

 

+31,1

+36

+33,4

-

+8,3

+9,6

+8,9

Получено дополнительно прироста, кг

-

1,9

2,2

2,0

Затрачено  корм.   ед.   на   1   кг прироста

4,2

3,9

3,9

3,9

в % к контрольной группе

-

-7,1

<-7,1

-7,1

Было   больных респираторными заболеваниями в начале опыта

1

2

1

1

в конце опыта

2

1

0

0

Было больных желудочно-кишечными заболеваниями в начале опыта

3

1

2

3

в конце опыта

2

0

0

0

В конце учетного периода опыта (в 120-суточном возрасте) проведено морфологическое и биохимическое исследование крови поросят. Результаты лабораторного анализа крови представлены в табл. 5.

5.Гематологические показатели крови поросят, получавших препараты.

Показатели

Группы

I (контрольная)

II (опытная)

III (опытная)

V (опытная)

Гемоглобин, г/л

105,3+3,2

109,8+4,1

110,2+5,3

111,1±4,7

Эритроциты, млн./мкл

5,12+0,15

5,14±0,21

5,21+0,32

5,28±0,36

Лейкоциты, тыс./мкл

14,04+1,10

13,24+1,04

13,02±1,40

12,76+1,27

Общий белок, г%

5Д2±0,6

5,28±0,2

5,51±0,3

5,79±0,4

Альбумины, %

37,83±2,40

38,14+2Д0

38,60+1,92

41,90±1,72

α - глобулины, %

23,17+2,30

24,07+2,41

25,00±2,10

25,1З±2,21

β - глобулины, %

20,83±2,14

18,87+1,99

17,39± 2,04

13,84+1,74*

γ - глобулины, %

18,17+2,04

18,92+2,13

19,01+2,17

19,1З±1,90

Белковый индекс

0,61+0,03

0,62±0,04

0,63±0,03

0,72+0,05

АсАТ, ммоль/л

1,23±0Д7

1,29+0,16

1,38+0,19

1,50+0,22

АлАТ, ммоль/л

1,28+0,16

1,32+0,18

1,42+0,20

1,44±0Д8

Кальций, мг%

11,0+0,6

10,6±0,4

10,3±0,5

10,0±0,6

Фосфор, мг%

6,6+0,3

6,9+0,4

7,4±0,3

7,6+0,4

Мочевина, мг%

26,4+2,8

22,7±3,0

21,0±3,2

20,8±3,4

Резервная щелочность, об.% СО2

43,36+1,12

45,20± 1,16

49,18+1,19**

49,96+1,18**

Из данных таблицы видно, что назначение препаратов не вызывало ухудшения интерьерных показателей организма поросят. Напротив, по ряду тестов наблюдалась тенденция их улучшения (гемоглобин крови, общий белок, альбумины сыворотки, белковый индекс, мочевина). В остальных случаях можно говорить лишь о тенденциях изменений показателей либо в сторону увеличения, либо, наоборот, уменьшения. Так, содержание гемоглобина в опытных группах было больше, чем в контроле на (4,3-5,6) %, эритроцитов - на (0,4-3,1) %, общего белка - на (3,1-13,1) %, доли альбуминов в общем белке - на (0,8-10,8) %, альфа-глобулинов - на (3,9-8,5) %, гамма-фракций - на (0,4-5,3) %, фосфора - на, (4,5-15,1) % (р>0,05). Содержание лейкоцитов, кальция и мочевины снижалось соответст­венно на (5,7-9,1); (2,7-9,1); (13,3-21,2) % (р>0,05).

Несмотря на статистически низкую разницу с контролем (р>0,05) не­большие сдвиги в интерьерных показателях все-таки следует оценивать поло­жительно. Это касается, прежде всего, общего белка и его фракций. По инте­гральному показателю особенно от Ветом 1.1 белковообразовательная функция печени: соотношение А:Г увеличивалось в первом случае на 18,0 %,  во  втором - на  4,9 %;  также  повышалась активность АсАТ на (4,9-21,9) %, АлАТ - на (3,1-12,5)  %.

Поскольку активность трансаминаз не выходила за пределы физиологических границ её повышение можно отнести на счет активизации в печени протеосинтетических процессов, на что указывает повышение соотношения между фрак­циями альбуминов и глобулинов.

Заметное изменение наблюдалось по резервной щелочности. Её повыше­ние отмечалось во всех группах опыта и подтверждалась разница с контролем. Во второй группе разница составила - 15,2 (р<0,01)., в третьей , где вводили в рацион совместно препараты АКД «Фаворин» и Ветом 1.1 - 13,4 (р<0,01), в четвертой - 4,2 (р>0,05). Повышение резервной щелочности указывает на улучшение общего состояния поросят. Судя по этому показателю наиболее благоприятным оказалось влияние Ветом 1.1.

Наряду с тенденцией к увеличению в составе общего белка сыворотки крови альбуминов, альфа- и гамма-глобулинов фракция бета-глобулинов уменьшалась: во второй группе - 33,6 % (р<0,05), в третьей (совместно АКД «Фаворин» и Ветом 1.1 - на 16,5 % (р>0,05), в четвертой - на 12,0 % (р>0,05).

АКД «Фаворина» и Ветом 1.1 оказали положительное влияние и на естественную резистентность организма опытных поросят. Бактерицидная активность сыворотки крови во второй группе была выше контроля на 34,8 % (р<0,001), а в четвертой получавшей Ветом 1.1 38,7 % (р<0,001).

Лизоцимная активность также была повышенной: во второй группе - на 39,3 %, в четвертой - на 54,2 % (во всех случаях р<0,05).

Однако по фагоцитарной активности лейкоцитов разница между группа­ми оказалась не столь значительной: во второй группе она оставалась почти на уровне контроля, в третьей превышала контрольные показатели на 18,2 %, в четвертой - на 22,5 % (р<0,05).

В содержании иммуноглобулинов регистрировались несущественные из­менения: повышение во второй группе на 14,5 %; третьей - на 11,6 % (во всех слу­чаях р>0,05).

Как видно из представленных данных, по влиянию на естественную рези­стентность Ветом 1.1 оказался эффективнее АКД «Фаворин». Он существенно повышал все исследованные факторы защиты. По содержанию иммуноглобу­линов отмечалась лишь тенденция к повышению. АКД «Фаворин» статистиче­ски достоверно увеличивал лишь бактерицидную и лизоцимную активность.

Ветом 1.1 и АКД «Фаворин» способствовали полной сохранности поросят, тогда как в группе контроля отход составил 3,3 %. На фоне их применения прекратились респираторные заболевания (в контроле они регистрировались к концу наблюдения у 13,3 %). АКД «Фаворин» полностью устранял желудочно-кишечные расстройства, Ветом 1.1 снижал их с 22,9 до 2,9 %, т.е. почти в 8 раз. За тот же период в контрольной группе поросят с признаками диареи остава­лось 13,8 % против 20,0 % в начале опыта.

Экономическая эффективность применения препаратов в расчете на 1 поросенка составила: от АКД «Фаворина» - 221,1 руб., и от Ветом 1.1 - 234,6 руб.. На 1 рубль затрат в контрольной группе получено прибыли 2,4 руб., в группе, получавшей АКД «Фаворин», - ЗД, Ветом 1.1 - 3,2 руб., или соответственно на 0,7 и <0,8 руб. больше.

В конце исследований эффективности препаратов произведен убой поросят (по 3 головы из группы). При врачебном осмотре органов и полостей тела каких-либо патологических изменений не выявлено. Визуально не отмечены различия между продуктами убоя из контрольной и опытных групп, поэтому мясо убойных животных было подвержено еще и химическому исследованию.

Результаты исследования показывают, что в химическом составе мяса происходили несущественные изменения: повышалось содержание белка и доля в нем триптофана, увеличивался БКП, снижалось содержание жира. Однако даже эти небольшие сдвиги являются показателями улучшения качества мяса.

Качество бульона по среднему баллу оказалось самым высоким в случае применения Ветом 1.1. Бульон контрольной группы и получавшей АКД «Фаворин» оценивался одинаково.

Качество мяса от животных третьей группы по среднему баллу также оценивалось выше двух других вариантов. На втором месте было мясо от животных, получавших бетавитон.

Однако при статистической обработке достоверных различий ни по одному из анализируемых показателей не выявлено. Единственное, о чем можно утверждать по результатам этой дегустационной экспертизы, - подкормка животных Ветом 1.1 и АКД «Фаворин» не сказывается отрицательно на вкусовых качествах мяса и приготовленного из него бульона.

Этап 3.

ПРОДУКТИВНЫЕ КАЧЕСТВА ЦЫПЛЯТ - БРОЙЛЕРОВ ПРИ

ПРИМЕНЕНИИ НОВЫХ ПРЕПАРАТОВ ВЕТОМ 1.1 И АКД «ФАВОРИН»

1. Применение пробиотиков в птицеводстве

Сейчас, повидимому, нет нужды вести дискуссию о целесообразности использования пробиотиков в птицеводстве. Уже доказано, что эти представители защитной микрофлоры человека и животных обеспечивают повышение жизнеспособности и прироста живой массы молодняка птицы.

В России список пробиотиков насчитывает около 80 наименований отечественных и импортных пробиотических препаратов и кормовых добавок с пробиотическим компонентом. (Панин А. Н., Малик Н. И., Малик Е. В.-ФГУ ВГНКИ, г. Москва . 1-й международный ветери­нарный конгресс по птицеводству.).

Известно, что бифидобактерии составляют большую часть микроорганизмов, населяющих в норме кишечник птиц. Располагаясь в примембранных слоях слизистой, они создают защитный слой на ее поверхности, блокируя рецепторы ко многим видам энтеробактерий. Не происходит инвазия патогенных возбудителей в глубокие слои ки­шечной стенки, снижается возможность инфицирования птицы колибактериозом, сальмонеллезом, повышается устойчивость к кокцидиозу и гельминтозам. Бифидобактерии связывают аммиак в толстом кишеч­нике, преобразуя его в полноценные микробные белки, которые затем используются в обмене веществ. Лактобактерии обеспечивают межмикробный антагонизм, участвуют в различных видах обмена веществ, синтезируют витамины, биологически активные и ростостимулирующие вещества. Они продуцируют органические кислоты, которые препятствуют размножению патогенной, гнилостной, газообразующей микрофлоры. Молочная и другие органические кислоты обладают са­нирующим действием, нейтрализуют многие токсины, обеспечивают нормальную моторику кишечника. Естественная стимуляция лимфоидного аппарата, синтез иммуноглобулинов, цитокинов, пропердина обеспечивает высокий иммунитет.

Таким образом, заселение желудочно-кишечного тракта цыплят активной нормальной микрофлорой с первых дней жизни обеспечивает профилактику кишечных инфекций, большую эффективность вакцинаций, снижение заболеваний со стороны пищеварительной системы рез­ко снижается поступление в организм субстратов с потенциальной токсичностью. Уменьшение использования лекарственных препаратов позволяет снизить себестоимость и получать продукцию, соответствующую современным экологическим стандартам. Если в состав пробиотика введены штаммы с сильными ферментативными свойствами, то улучшается и конверсия корма без дополнительного применения энзи­мов.

Существует большое число препаратов, содержащих бифидобактерии, молочнокислые бактерии, энтерококки. Однако практический опыт показывает, что наибольший эффект достигается при использова­нии сложных пробиотиков поливидового состава - мультипробиотиков. Зачастую бактерии, входящие в мультипробиотики, обладают синергидным эффектом, значительно усиливающим протективные свойства каждого штамма.

Второй фактор эффективности пробиотиков - происхождение штаммов. Строгого требования к источнику выделения штаммов не >существует, тем не менее, считается, что штаммы, выделенные из кишечника птицы, будут обладать более сильными защитными свойствами и легче колонизировать слизистую кишечника своего эволюционного хозяина.

Хозяйствам, которые хотят использовать пробиотики, следует обратить внимание не только на состав пробиотика, но и на способ его применения. Штаммы бактерий-пробионтов, как правило, чувстви­тельны к нагреванию и повышенной влажности. Бифидобактерии, энтерококки и молочнокислые бактерии в большинстве случаев погибают при гранулировании кормов. Введенные в состав рассыпного комбикорма, имеющего естественную влажность более 8 %, штаммы быстро прорастают и гибнут, а самонагревание кормов ускоряет процесс их гибели.

Сложилось мнение, что технология производства пробиотиков не требует высокой культуры производства и доступна каждому, имеющему желание и оборудование. Однако это далеко не так. Пробиотики - одна из самых наукоемких областей ветеринарной фармации, вклю­чающая селекцию штаммов, технологию культивирования и сушки. Поэтому фирма, производящая пробиотики, должна иметь свою историю на рынке. Как правило, такая фирма осуществляет научное сопровождение своей продукции, имеет широкий ассортимент продукции, поддерживает связь с потребителями, проводит учет эффективности применения пробиотиков.

Схема и длительность выпаивания конкретного пробиотика прописана в наставлении по применению, тем не менее, существует ряд общепринятых рекомендаций. Возможно раннее их использование, желательно, сразу после посадки в цех, применяется для опережающей колонизации кишечника цыплят нормальной микрофлорой. Далее, рассуждая о запрете на использование антибиотиков в технологии выращивания птицы, нельзя не забывать того факта, что разумная антибиотикотерапия - необходимая профилактическая и лечебная мера для предупреждения легочных инфекций и ряда других инфекционных патологий, в том числе и кокцидиоза. С помощью пробиотиков можно снизить негативные последствия антибиотикотерапии, назначая их птице сразу после окончания лечения антибиотиком. Желательно на­значать пробиотики в период подготовки птицы к вакцинациям. Эта мера усиливает эффект вакцинации и снижает гибель птицы от поствакцинального стресса.

В процессе выращивания цыплят в промышленных условиях всегда сохраняется риск вспышки в стаде какой-либо болезни. На предприятиях с высокой концентрацией птицы желудочно-кишечные забо­левания занимают второе место после вирусных инфекций и являются основной причиной гибели молодняка. По данным Н. Придыбайло, ко­личество птицы, павшей от колибактериоза в хозяйствах РФ, достигает 55 % от общих потерь. Не менее остра и проблема сальмонеллеза. Известен феномен адаптации видов S. enteritidisи S. infantis к экологической нише, обычно заселяемой S. gallinarum-pullorum. В странах СНГ за последние 15 лет заболеваемость людей и птицы сальмонеллезом возросла в 7 раз, при этом этиологическое значение S. enteritidis в заболевании людей увеличилось на 30 %, у животных — на 75 %, а число случаев обнаружения возбудителя в продуктах питания возросло на 50 %.

Микробиологические исследования, проведенные на ряде птицефабрик нашей страны, показали, что из тушек птицы выделяются сальмонеллы видов S. gallinarum-pullorum, S. thyphimurium, S. enteritidis, S. hodar, S. anatis, S. dublin, S. infantis, S. haifa, S. arizonae, S, havana и др. Причем число их постоянно пополняется. В связи с широким применением антибиотиков в промышленном птицеводстве наблюдается высокая циркуляция эшерихий с множественной лекарственной резистентностью, что представляет серьезную угрозу благополучию птицы промышленных стад.

Понятие нормофлоры определяется тем, что у каждого вида животных есть примерно очерченный круг полезных непатогенных микроорганизмов, которые с определенной долей вероятности можно выделить из кишечника большинства его представителей и на которые не вырабатывается защитный иммунный ответ. В связи с особенностями размножения птицы иммунологическая толерантность к нормальной микрофлоре развивается у цыпленка не во время внутриутробного развития, а уже после вылупления и формируется под воздействием микробиоценоза окружающей среды. Становится понятным, насколько важно применение в составе корма цыплят пробиотической добавки, обеспечивающей стабильное заселение желудочно-кишечного тракта полезными микроорганизмами. Оценка эффективности пробиотика в этот период состоит из оценки показателей приживаемости и биологического действия. Приживаемость оценивается путем микробиологического анализа микрофлоры фекалий до и после применения на наличие лакто- и бифидобактерий. Появление в фекалиях полезной анаэробной микрофлоры - основной показатель приживаемости. Показателем биологического действия является физиологическое состояние молодняка после применения пробиотика - скорость роста, усвоение кормов, уровень заболеваемости, сохранность поголовья.

Вторым важным аспектом применения пробиотических добавок является то, что цыплята довольно быстро начинают питаться твердой пищей. В ее усвоении зоб играет очень важную роль, так как в нем происходит подготовка пищи к ферментативному расщеплению. Наиболее важную роль в этом играют лактобациллы и молочнокислые стрептококки с амилолитической активностью. Следовательно, в этот период необходимо применять такие пробиотические добавки, которые содержат живые бактерии, выделенные из зоба птицы. Основным критерием эффективности пробиотической добавки в это время является скорость роста и набора веса. Критерием антагонистического действия пробиотика является наличие в фекалиях цыплят патогенной или условно-патогенной микрофлоры. Пробиотические микроорганизмы действуют по принципу вытеснения патогена и распространения в освободившейся нише. Именно поэтому количество условно-патогенных микроорганизмов в фекалиях может увеличиться. Поэтому если в хозяйстве практиковалась постоянная антибиотикотерапия, которая сформировала устойчивое сообщество микробов, однократной обработки пробиотиком недостаточно. Необходима хотя бы трехкратная обработка в соответствии с наставлением. В этом смысле пробиотик - экологическая вакцина как для птицы, так и для оздоровления окружающей среды, потому что новые поколения птицы будут уже исходно сталкиваться с полезным окружающим микробиоценозом.

Не менее важным является срок дачи пробиотических препаратов. У только что вылупившихся цыплят можно выявить слабую реак­цию формирования антител на введение антигена. Однако контакт с безвредными микроорганизмами способствует очень быстрому развитию реактивности лимфоидной ткани и появлению способности отличать свое от чужого. Сапрофитная микрофлора кишечника непосредственно участвует в формировании неспецифического иммунитета, способствует синтезу защитных иммуноглобулинов. Антигены кишечных бактерий стимулируют своевременное созревание систем, участвующих в специфической иммунной защите. Микробные, ассоциации (пробиотик) создают оптимальные условия для функционирования аппендикса и пейеровых бляшек. Следовательно, первая дача пробиотика должна проводиться как можно раньше, особенно это важно для бройлеров, для которых она должна совпадать с первым кормлением. Вто­рой возраст – (20-30) дней, так как на этот период приходится большинство стрессорных воздействий, связанных с вакцинацией, перемещением, сменой корма, которые могут способствовать развитию дисбиозов.

Кишечная микрофлора у взрослой птицы, выращенной без применения пробиотика, сформирована в соответствии с окружающим микробиоценозом, который повлиял на функционирование ее иммун­ной системы, определил уровень ее иммунного реагирования. В этой ситуации наблюдается недостаточность иммунных реакций, особенно в условиях применения антибиотиков. Поэтому необходимо сочетать применение пробиотического препарата с иммуномодулятором или применять комплексный пробиотик, в состав которого входят модулирующие добавки, наиболее адекватные для организма птицы, например растительные экстракты. Показания для применения: после антибиотикотерапии, при лечении диареи различного происхождения.

Препарат Иммунобак является совместной разработкой ООО «ВЕДА» и ВГНКИ ветпрепаратов, содержит 4 вида живых лиофилизированных пробиотических микроорганизмов - Bifidobacterium globosumс целлюлитической активностью, Bifidobacterium adolescentisс амилолитической активностью, Streptococcus faecium с амилолитической ак­тивностью, Lactobacillus acidophilus с целлюлитической активностью, устойчивостью к широкому кругу антибиотиков (ампициллин, бензилпенициллин, гентамицин, канамицин, карбенциллин, левомицетин, мономицин, неомицин, оксациллин, олеандомицин, полимиксин, ристомицин, рифампицин, стрептомицин, тетрациклин, фузидин, эритроми­цин). Все штаммы обладают синергетической активностью по отноше­нию друг к другу. Кроме того, препарат содержит фруктоолигосахариды в качестве пребиотической добавки и экстракты лекарственных трав; обладающих иммуностимулирующими (в частности интерфероногенными) свойствами. Благодаря этому препарат Иммунобак можно рекомендовать к применению, как для молодняка, так и для обработки взрослой птицы. Так как препарат выпускается в двух модификациях -100 доз в грамме и 1000 доз в грамме, его можно применять как с кормом, так и с водой. При введении в корм необходимо соблюдать следующие требования - корм до внесения препарата не увлажнять, чтобы добиться равномерного распределения. И второе - не подвергать корм с внесенным препаратом термической обработке. При введении препарата в воду необходимо учитывать ее качество - кислотность, жесткость, наличие различных солей. Активность лиофильно высушенных бактерий, входящих в состав препарата, будет зависеть от этих составляющих, поэтому желательно, чтобы вода была употреблена в течение 2 часов после растворения.

Пятилетний опыт применения препарата Иммунобак на птицефабриках показывает, что очевидное улучшение всех показателей, в том числе и экономических, наблюдается в течение года и требует постоянной поддержки экосистемы аутентичной нормофлоры. Поэтому не рекомендуется частая смена пробиотических препаратов, особенно если в них содержатся разные виды микроорганизмов.

Стимуляция пищеварения особенно важна для молодняка, так как ускоряет его развитие. С этой целью молодым животным, в том числе и птице, скармливают разные пробиотики. К их разряду относит­ся и споробактерин, представляющий собой живую культуру Bacillus subtilis, штамм 534. Аэробные спорообразующие бактерии рода Bacillus — активные продуценты антибиотических веществ. Описано более 70 различных антибиотиков, образуемых бактериями этого рода (микобациллин, субтилин, бацилломицин, субспорин и др.). При пероральном введении бактерии рода Bacillus существенно повышают неспецифиче­скую резистентность организма. Кроме того, они действуют в кишеч­нике как биокатализаторы, продуцируя ферменты, витамины и аминокислоты.

Споробактерин жидкий представляет собой взвесь (48-72)-часовой культуры штамма Вас. subtillis 534 в (1-7) %-ном растворе натрия хлори­да, взятую после смыва с плотных питательных сред. В 1 мл препарата содержится 10 млрд. микробных тел (споры и палочки). При пероральном введении его в организм у животного происходит нормализация микробных биоценозов желудочно-кишечного тракта, улучшаются процессы пищеварения под воздействием амилолитических, целлюлозолитических, липолитических и протеолитических ферментов, продуцируемых пробиотиком. Кроме того, споробактерин обладает лечебно-профилактическими свойствами в отношении инфекционных болез­ней, выделяя антибактериальные вещества, а также является иммуномодулятором.

Субтилис - пробиотик нового поколения, производимый в НИИ пробиотиков. Представляет собой жидкую массу спорообразующих бактерий. Действующим началом препарата являются пробиотические штаммы Bacillus subtilis (ВКМВ-2250 Д) и Bacillus licheniformis (ВКМВ-2252 Д), выделенные специальным скринингом из почвенного изолята. Ранее было установлено, что некоторые штаммы этих бакте­рий обладают четко выраженной антагонистической активностью по отношению к широкому спектру патогенных и условно-патогенных микроорганизмов. Помимо этого В. subtilis и В. licheniformis выделяют в кишечнике животного биологически активные вещества, продуциру­ют различные пищеварительные ферменты. В результате повышается усвоение кормов, увеличиваются приросты живой массы. Многие за­болевания желудочно-кишечного тракта, в частности диарея, либо пол­ностью купируются, либо протекают в более мягкой форме и в более короткие сроки.

Учеными НПФ «Исследовательский центр» и ГНЦВБ «Вектор» и ФГУН ВПО Новосибирский государственный аграрный университет расположенных в наукограде Кольцово и г. Новосибирске создан ряд биопрепаратов на основе спорообразующих бактерий Bacillus subtilis (сенная палочка), отличающихся высокой антагонистической активностью в отношении многих патогенных и условно-патогенных микробов, а также безвредностью для лакто- и бифидобактерий, находящихся в желудочно-кишечном тракте всех теплокровных. Помимо этого, пробиотик Ветом 1.1 благодаря α-2-интерферону лейкоцитарному человеческому, продуцированному рекомбинантным штаммом Bacillus subtilis, обладает антивирусными свойствами. В НПФ «Исследовательский центр» получена лекарственная форма препарата, эффективная при пероральном применении, удобная для хранения и транспортировки. Препарат предназначен для лечения и профи­лактики желудочно-кишечных заболеваний, диспепсии, бактериальных инфекций (сальмонеллез, колибактериоз,  стрептококкоз),  вирусных инфекций (рото- и парвовирусный энтерит, грипп, парагрипп, гепатит, чума плотоядных), кокцидиоза, для коррекции иммунодефицитных состояний, лечения и профилактики дизбактериозов у телят, поросят, плотоядных, собак, птицы, а также для стимуляции роста и развития молодняка.

Нормальная микрофлора у животных, поселившаяся как на кожных покровах, так и в ЖКТ, играет огромную роль в поддержании их здоровья. Функции микроорганизмов чрезвычайно многообразны - регуляция работы кишечника, участие в обмене протеинов, жиров, углеводов, наработка биологически активных соединений (витаминов, аминокислот, ферментов), нейтрализация токсинов и др. Кроме того, нормальная микрофлора противодействует многим возбудителям болезней, защищает животное от инфекций.

Лечебный эффект препаратов серии Ветом обеспечивается продуктами жизнедеятельности бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis в ЖКТ животных. Эти пробиотики подавляют широкий спектр патогенных и условно-патогенных микроорганизмов и обладают противовирусной, протеолитической, амилолитической, целлюлозолитической активностью, нормализуют клеточные и гуморальные факторы иммунитета теплокровных, повышают неспецифическую резистентность, стимулируют регенерационные процессы, нормализуют обмен веществ.

Пробиотики -: это, прежде всего профилактика, а профилактика всегда дешевле лечения. Наиболее целесообразно применять данные пробиотики в профилактических целях, а для коррекции иммунодефицитных состояний - сразу после рождения животных. Это важно и с экономической точки зрения, так как любой препарат задается молодняку с учетом массы тела.

Пробиотики серии Ветом можно использовать не только для профилактики, но и для лечения острых форм заболеваний как бактериального, так и вирусного происхождения, поскольку неспецифическая противовирусная резистентность животных и человека в значительной степени определяется интерфероновой системой и зависит от своевременности ее включения. К данным препаратам нет привыкания. Патогенная микрофлора не может в принципе приспособиться к бактериям, содержащимся в них, поскольку они столь же или даже более динамичны в борьбе с патогенными микроорганизмами. Важно так­же, что пути проникновения, как инфекции, так и бактерий препаратов в организм практически всегда одни и те же.

2. Материал и методы исследований

Работа выполнена в условиях физиологического комплекса ФГОУ ВПО «Белгородская ГСХА». В ходе первого этапа изучены и детализированы данные об эпизоотической ситуации, сложившейся в птичнике. Для этого нами были отобраны по 6 голов от каждой тысячи цыплят бройлеров. При этом была взята кровь при декапитации, проведен анализ внутренних органов и тканей, сделаны посевы на питательные среды с целью выявления культур микроорганизмов, которые могут быть источниками заболевания. Для этого были подготовлены посевы на питательные среды МПА, МПБ, агар Эндо, агар Плоскирева, среды Кларка и Симпсона, диагности­ческие агглютинирующие сыворотки для серогрупповой типизации Е. colli.

На следующем этапе нами были проведены работы по организации проведения опыта. Для этого в птичнике были отобраны четыре группы цыплят бройлеров по 100 голов в каждой аналогичных по массе, возрасту и т.п. При одинаковых условиях кормления, поения, содержания, были изучены эффективность профилактики и лечения заболеваний, выявленных в условиях данного поголовья.

Опытные и контрольные группы птицы были укомплектованы нами по принципу групп-аналогов по породности, возрасту, живой массе, условиям содержания и кормления. В течение экспериментального периода мы учитывали: сохранность поголовья - путем ежедневного учета выбракованной и павшей птицы с установлением причин падежа; живую массу - путем индивидуального взвешивания - в начале и в конце опыта; затраты корма на единицу продукции; интенсивность роста и развития птицы по О. И. Маслиевой (1967 г.), В. Н. Агееву с соавт. (1987 г.).

При исследовании крови учитывали: количество эритроцитов и лейкоцитов - методом подсчета в камере Горяева; уровень гемоглобина - гемоглобинцианидным методом; общий белок - биуретовой реакцией; кальций - титрометрическим методом по де Ваарду; фосфор - колориметрически с вандатмолибденовым реактивом; фагоцитарную активность псевдоэозинофилов, бактерицидную и лизоцимную активность сыворотки крови - по методикам, описанным В.М. Митюшниковым (1985 г.).

Концентрацию ионизированного кальция в сыворотке крови рассчи­тывали по Й. Тодорову (1961 г.).

При исследовании печени подопытной птицы учитывали содержание, кальция, титрометрическим методом по де Ваарду; фосфор - колори­метрически с вандатмолибденовым реактивом. При исследовании костной и мышечной ткани определяли: зольность - сжиганием в муфельной печи при (450-500) °С; содержание кальция - титрометрическим методом по де Ваарду; фосфора - по методу V.G. Puls (1961 г.).

При исследовании кормов, определяли: сухое вещество - гравитометрическим методом; сырую золу - методом сухого озоления; сырой жир - методом С.В. Рушковского; сырой протеин - по Къельдалю; сырую клетчатку - методом Генберга и Штомана в модификации Казановича; БЭВ - методом экстракции трихлоруксусной кислотой; кальций - титрометрическим методом по де Ваарду; фосфор - колориметрически с вандатмолибденовым реактивом.

Биохимические исследования проводились на базе лаборатории биологических исследований и кафедры физиологии, фармакологии и ветери­нарной санитарной экспертизы факультета ветеринарной медицины Белгородской государственной сельскохозяйственной академии, региональной лаборатории по птицеводству, областной производственной ветеринарной лаборатории.

Ветеринарно-санитарную оценку мяса птицы, убитой после приме­нения препаратов, мы проводили по общепринятым методам (Г. В. Колоболотский, 1974 г.; П. В. Житенко, 1998 г.; В. А. Макаров, 1992 г.; «Методические рекомендации по определению качества мяса», 1982 г.; «Методические рекомендации по проведению анатомической разделки и органолептической оценки качества мяса сельскохозяйственной птицы», 1984 г.; «Правила ветеринарно-санитарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мясных продуктов», 1985 г.). При этом учитывали органолептические, биохимические (ГОСТ 7702-74, ГОСТ 7702.2-74).

Химический состав мяса с учётом его влагоёмкости определяли экспресс-методом по Грау и Хамму, жир - по обезжиренному остатку методом С.В. Рушковского, влагу — высушиванием вещества до постоянной массы, золу - взвешиванием после сухого озоления, триптофан - по Снайзу и Чемберзу в модификации Геллера, оксипролин - по Ньюмену и Логану с применением кислого гидролиза мяса по Вербицкому, белковый показатель качества - по отношению триптофана к оксипролину, калорийность в кДж - по данным химического анализа.

Полученный во всех опытах цифровой материал был подвергнут статистической обработке на ЭВМ по общепринятым методам вариационной статистики с вычислением аргумента Стьюдента (td). Разница между сравниваемыми величинами будет считаться достоверной при (р<0,05).

3. Собственные исследования

Исследования новых препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворин» проводили в условиях учебно-физиологического комплекса ФГОУ ВПО «БелГСХА» в период с 16 марта по 26 апреля 2006 года.

В помещении учебно-научной птицеводческой фермы были установлены клетки для проведения опытов. При одинаковых условиях кормления, поения, содержания, были изучены эффективность профилактики и лечения заболеваний, выявленных в условиях данного поголовья.

Для этого было сформировано 4 группы по 100 голов в каждой, среди которых первая контрольная и четыре опытные (таблица 1).

Таблица 1. - Схема проведения исследований.

№ группы

Количество голов

Кратность введения
препаратов в сутки

Количество введенного препарата, %
к количеству корма

Препарат

1

100

1

-

 

2

100

1

0,35

Ветом 1.1

3

100

1

0,35

АКД «Фаворин»

4

100

1

0,35

Ветом 1.1+АКД «Фаворин»

Кросс цыплят - бройлеров – «ИЗА GV”. Опытные и контрольные группы птицы укомплектованы по принципу групп-аналогов по породности, полу, возрасту, живой массе, условиям содержания и кормления. В течение экспериментального периода учитывали: сохранность поголовья -путём ежедневного учёта выбракованной и павшей птицы с установлением причин падежа; живую массу - путём индивидуального взвешивания - в начале и в конце опыта; затраты корма на единицу продукции; интенсивность роста и развития птицы по О.И. Маслиевой (1967 г.), В.Н. Агееву с соавт. (1987 г.).

Дозы введения препаратов соответствовали рекомендациям по применению препаратов подготовленные производителями. Препараты вводили в комбикорм, после тщательного перемешивания с малым количеством того же корма, один раз в сутки во время утреннего кормления. Для поения основного стада использовали питьевую воду, подаваемую по трубам центрального водоснабжения (табл. 2).

Таблица 2. Качество питьевой воды.

№ п./п.

К (мг/л)

Na (мг/л)

Fе (мг/л)

Мn(мг/л)

Zп (мг/л)

Сu (мг/л)

Сd (мг/л)

Рb (мг/л)

1.

9,50

85,0

0,22

0,083

0,027

0,017

0,0025

0,01

Приведенные данные о качестве воды свидетельствуют о том, что вода питьевая имеет увеличенную жесткость, а остальные показатели соответствуют ГОСТу.

В контрольной группе корм представлял собой стандартный гранулированный комбикорм. Введение в питьевую воду антибактериальных препаратов (на основе энрофлоксацина) осуществляли в первые 5 дней жизни цыплят - бройлеров. После этого введения в корма и в питьевую воду антибактериальных средств, различных по происхождению и механизму действия, не проводили.

В процессе выращивания цыплят - бройлеров мы используем антибио­тики энрофлоксацинового ряда - энрофлокс, энромаг, колмик Е. Препараты представляют собой воднодисперсные растворы антибиотика энрофлокса 10 %. В питьевую воду вводили препараты в количестве (0,5-1,0) мл на литр. Введение осуществляли с первых по 6-е сутки включительно. Затем общему поголовью выпаивали растворы антибиотика в тех же дозах с 12 по 17 сутки. Во время проведения исследований мы применяли антибиотик Колмик Е. Контрольная группа получала препарат в дозах и кратности в соответствии с принятой технологией. Опытные группы получали антибиотик только первые 6 суток. Вторичного выпаивания антибиотика не проводили - не было показаний.

Схема проведения профилактических мероприятий в условиях лаборатории птицеводства Белгородской ГСХА.

Сутки проведения

Вакцина и дозировка

Метод введения вакцины

0

Ла-Сота НБ 0,25 д./гол.

спрей

0

ИБК (Н-120) 1 д./гол

спрей

7

ИББ (БГ)1 д./гол

выпойка

10

Ла-Сота НБ 5 д./гол

выпойка

13

ИБК (Н-120)1 д./гол.

выпойка

19

ИББ (БГ) 1 д./гол.

выпойка

22

Ла-Сота 5 д./гол

выпойка

В качестве антистрессовых препаратов мы применяли глюкозу и аскорбиновую кислоту. Вводили глюкозу в количестве 50 г на литр, а аскорбиновую кислоту - 1 г/литр. Препараты применяли с питьевой водой впер­вые 6 дней подряд, а в последующем за три дня до вакцинации. (См. приложение).

4. Результаты исследований и их обсуждение

 4.1. Физико-химическая характеристика Ветом 1.1 и АКД «Фаворин»

Ветом 1.1 является иммобилизированной высушенной споровой биомассой рекомбинантного штамма ВКПМ В 7092 бактерии Bacillus subtilis, продуцирующего α-2-интерферон лейкоцитарный человеческий. Препарат представляет собой мелкокристаллический порошок белого цвета, без запаха легко растворимый в воде. Препарат обладает высокой антагонистической активностью к широкому спектру патогенных и условно патогенных микроорганизмов за счет свойств В. subtilis, способствуют стимуляции и гуморальных факторов иммунитета, повышают неспецифическую резистентность организма, стабилизируют аллергическую устойчивость, стимулируют регенарционные процессы тканей, нормализуют обмен веществ, (по материалам наставления по при­менению препарата).

4.2.  Кормление цыплят бройлеров

Кормление цыплят-бройлеров осуществлялось полнорационными комбикормами, выработанными по рекомендациям РАСХН (А.П. Калашников, Н.И. Клейменов, В.В. Щеглов, 1993 г.). С рождения и до 10-суточного возраста цыплята получали комбикорм ПК-5.1, с 11 и до 20-суток ПК 5.2, с 21 до 30 суток - ПК 5, а с 31 по 42 сутки - комбикорм марки ПК-6. Убой проведен в возрасте 42 суток.

В настоящее время при выращивании и откорме цыплят бройлеров на крупных промышленных предприятиях используют комбикорма в следующие сроки и соответствующие марки. В условиях нашей птицеводческой фермы мы применяем технологию откорма цыплят - бройлеров принятую на предприятиях ООО «БЭЗРК-Белгранкорм холдинг» (табл. 3)

 3. Виды комбикорма и сроки их скармливания цыплятам - бройлерам

Вид корма

Период скармливания,
 сут.

Количество
корма на
1 голову в
сут.,  г

Общее
количество
на 1 голову за

5 сут., г

Общее
количество на 1
группу (100 голов)
 за 5 сут., г

Общее количество
на группу
за 10 сут., кг

ПК-5.1

0-5

17

85

8500

 
 

5-10

37

185

18 500

 
       

27 000

27,0

 

Итого за период скармливания ПК - 5.1

ПК-5.2.К

10-15

<62

310

31 000

 
 

15-20

<86

430

43 000

 
       

77 000

77,0

Итого за период скармливания ПК - 5.2

 
ПК-5

20-25

103

515

51500

 
 

25-30

120

600

60 000

 
       

111 500

111,5

 

Итого за период скармливания ПК - 5

ПК-6

30-35

143

715

71 500

 
 

35-40

159

795

79 500

 
       

151 000

<151,0

 

Итого за период скармливания ПК - 6

Итого:

   

3 635

366 500

366,5

При проведении исследований мы использовали стандартные комби­корма производства наших партнеров - ООО «БЭЗРК-Белтранкорм холдинг». Виды комбикорма и состав приведены в приложении 1, 2, 3, 4.

Как показали результаты исследований (таблица 4), применение исследуемых нами препаратов привело к тому, что среди опытных групп показатель поедаемости кормов оставался практически на одном уровне по всем группам.

4. Фактическое потребление комбикорма подопытными цыплятами, г/гол.

Учетный период, сут.

Группа

1 контрольная

2 опытная

3 опытная

4 опытная

1-10

275

312,7

292,1

291,2

11-20

656

787,48

785,0

783,6

21-30

1210

1122,2

1123,1

1124,1

31-42

1410

1439,7

1442,7

1447,75

Итого

3553

3662,1

3642,3

3649,65

± к контролю, %

 

9,2

8,63

8,85

Таким образом, новые препараты при применении их с кормом на цыплятах бройлерах в рекомендуемых дозах способствует увеличению поедаемости кормов.

Приведенные в таблице 5 данные свидетельствуют о неоспоримом положительном влиянии препаратов на сохранность и продуктивность цыплят-бройлеров.

Таблица 5. Результаты испытания препаратов на цыплятах - бройлерах.

Показатели Группы

1 - контроль

2 - опытная

3 - опытная

4 - опытная

Количество голов:

       

В начале опыта

100

100

100

100

В конце опыта

96

100

99

100

Падеж

4

0

1

0

Сохранность, %

96

100

99

100

Среднесуточный привес, г

40,0±0,4

49,7±0,5

40,4±0,6

43,5±0,3

± к контролю, %

 

+24,3

+ 1,0

+8,75

Средняя живая масса 1 головы, г

1723±0,3

2060±0,3

1840±0,4

1870±0,3

+ к  контролю, %

 

19,56

6,79

8,53

Вскрытие показало, что павшая птица в первой опытной группе погибла по причине эшерихиоза. В оставшихся группах не было отмечено поноса, других проявлений, а также патологических изменений при вскрытии тушек птицы после убоя. В группе 3 пала 1 птица по причине травматизма.

Среднесуточные привесы отличались по группам, следующим образом: во второй опытной группе (Ветом 1.1) привесы были выше контроль­ной группы на 24,3 %. Мы это связываем с позитивным воздействием препарата на физиологический и иммунный статус организма. Известно, что за сутки длина кишечника цыпленка увеличивается до 20 см. При этом обязательным является заселение стенки кишечника колониями микроорганизмов. В случае с Ветом 1.1 практически мы еще раз подтвердили, что пробиотики при постоянном их применении заселяя пристеночную область кишечника, оказывают положительное воздействие на рост, развитие и сохранность поголовья, за счет снижения количественного состава патогенной микрофлоры и увеличения доступности питательных веществ, а также положительного воздействия на иммунитет цыплят. В третьей опытной группе (АКД «Фаворин») среднесуточный привес составил 40,4 грамма, это самый низкий показатель среди опытных групп, это на 1,0 % выше, чем в контроле, и ниже на 7,85 %, чем в четвертой опытной (совместное введение Ветом 1.1 и АКД «Фаворин»).

Применение пробиотиков по нашему мнению является обязательным. Именно эта группа фармакологических средств позволяет получать экологически безопасные продукты питания из мяса цыплят - бройлеров.

Однако на основе проведенных наблюдений считаем крайне обязательным введение антибиотиков в первые 5 суток (с 01 по 06). Этим самым достигается прерывание передачи инфекционного начала по пути от родительского стада, инкубатора к молодняку.

Таким образом, в результате изучения показателей продуктивности цыплят-бройлеров показали, что введение новых препаратов в корма оказало положительное воздействие на организм цыплят бройлеров. Эффективность его подтверждена оптимизацией интерьерных показателей, повышением сохранности поголовья, увеличением среднесуточных приростов массы тела и лучшей конверсией питательных веществ в организме птицы.

4.3.  Исследование показателей крови

Давно уже известно, что не только при инфекционных процессах, но также и при спорадических страданиях, заболевание не ограничивается лишь чисто морфологическими изменениями пораженных тканей. Влияние патологического процесса обычно идет гораздо дальше, распространяясь на смежные системы, изменяя функцию сопряженных органов и, прежде всего, аппарата кроветворения (проф. А.В. Синев, 1946 г.).

Необходимым условием применения новых добавок в рационы сельскохозяйственных животных и птицы, является, прежде всего, выяснение их действия на физиологическое состояние, не влияют ли они отрицательно на продуктивность и главное здоровье птицы. Наиболее лабильным (по мнению Т.В. Ясинковской, 1980 г.) показателем функционального состоя­ния организма, быстро и точно реагирующим на достаточно сильные воз­действия, является качественный и количественный состав крови. Известно, что кровь является частью внутренней среды организма, выполняющей разнообразные физиологические функции. Через кровь осуществляется гуморальная регуляция деятельности организма. Она выполняет защитную функцию. Кровь отражает изменения, происходящие в организме. Исходя из этого, в ходе работы проводили исследования показателей крови, харак­теризующих состояние обмена веществ и защитных функций организма цыплят бройлеров при выпаивании фитопрепаратов.

По результатам исследований крови в начале опыта, существенной разницы по показателям между контрольной и опытными группами не было обнаружено. Все исследованные показатели находились в пределах физиологической нормы (табл. 6).

Таблица 6. Морфологический состав и биохимические показатели крови цыплят-бройлеров.

№ п./п.

Показатели

Группы

1

2

3

4

1

Гемоглобина, г/л

79,42±12,61

92,09±9,25

75,39±8,0

80,61±6,15

2

Эритроцитов, млн./мкл

2,27±0,05

2,58±0,30

2,36±0,30

2,56±0,33

3

Лейкоцитов, тыс./мкл

39,1±3,4

40,08±8,5

42,61±6,78

36,8±8,59

4

Общего белка,  г/л

2,74±0,39

3,38±0,117

3,29±0,35

3,28±0,16

5

Фракции белка: %

       

6

Альбумины

46,94±4,19

55,62±3,66

58,68±1,31

56,6±4,07

7

Глобулины

53,06±4,19

44,38±3,66

41,32±1,32

43,4±4,07

8

ACT

2,90±0,16

2,48±0,24

2,28±0,09

2,98+0,51

9

АЛТ

0,41±0,05

0,4±0,037

0,86±0,03

0,37±0,02

10

Кальция, мг%

10,27±0,66

11,8±0,16

11,06±0,68

11,5±0,25

11

Фосфора, мг%

6,85±0,25

7,5±0,99

7,75±0,74

8,12±0,46

Гемоглобин является дыхательным ферментом, содержащимся в эритроцитах (в плазме крови его очень мало). Значение гемоглобина в ор­ганизме заключается в том, что он переносит молекулярный кислород из легких в ткани, обеспечивая нормальное течение энергетических процес­сов в организме; транспортирует углекислый газ из тканей в легкие; вхо­дит в состав гемоглобиновой буферной системы крови, участвует в регуляции кислотно-щелочного равновесия. Содержание гемоглобина в крови здоровой птицы колеблется в пределах (82-138) г/л. В наших опытах была установлена следующая закономерность: птица контрольной группы имела снижение содержания гемоглобина в крови - олигохромемию, которая может быть при анемиях, возникающих вследствие острых и хронических кровотечений, дефицита или низкой биологической доступности железа, витамина В12 и фолиевой кислоты, ряда инфекционных заболеваний. В те­чение всего периода проведения исследований в контрольной группе было отмечено четыре случая падежа птицы. При вскрытии была описана классическая картина, наблюдаемая при эшерихиозе (возбудитель - патогенная форма Е. соlli см. приложение).

В опытных группах количество гемоглобина разнилось очень сильно: так, во второй (опытной) группе в которой мы давали с кормом пробиотик Ветом 1.1, обладающий высокой микробиологической активно­стью, количество гемоглобина составило (92,09±9,25) г/л, что выше по от­ношению к контрольной группе на 15,95 %. Мы это связываем с защитными свойствами данного препарата, оказываемыми на кишечник, при воздействии различных повреждающих агентов.

Наименьший результат на количество гемоглобина в крови оказал препарат, вводившийся с кормом в группе 3. Это АКД «Фаворин». По отношению к контрольной группе введение его в корм привело к снижению ко­личества гемоглобина в эритроцитах на 5,07 % . Наряду с этим такой пре­парат как Ветом 1.1 (группа 2) оказал положительное действие на процессы гемопоэза, а также на рост и развитие всего организма. Цыплята группы № 2 не только имели увеличение количества эритроцитов по отношению к контрольной группе на 13,66 %, но и на 19,56 % имели больший вес.

Нормальное количество лейкоцитов в крови цыплят - бройлеров по мнению многих авторов (в т.ч. и B.C. >Кондратьева) составляет от 20,0 до 40,0 тыс./мкл в нашем случае в контрольной группе этот показатель со­ставил 39,1±3,4 тыс./мкл минимальное количество лейкоцитов относи­тельно других групп мы обнаружили в группе 4, в которой в корм вводили совместно Ветом 1.1 и АКД «Фаворин». В данном случае этот показатель не выходит за рамки нормального (физиологического) количества лейкоцитов, однако он был ниже на 5,9 %, чем таковой в контрольной группе. В остальных же опытных группах количество лейкоцитов было выше на 2,51 и 8,98 % выше в сравнении с контролем.

В сыворотке крови из всех веществ сухого остатка больше всего содержится белка, который состоит из альбуминов и глобулинов (в плазме крови еще имеется и фибриноген). Альбумины (так же как и фибриноген) образуются в печеночных клетках; большая часть глобулинов (в основном альфа- и бета- глобулины и некоторое количество гамма - глобулинов) также синтезируются в печени. Роль белков сыворотки (плазмы) крови в организме велика и многогранна. В частности, сывороточные белки играют существенную роль в поддержании вязкости крови, коллоидно-осмотического давления, в обеспечении транспорта многих веществ, которые, соединяясь с белками, переносятся к тканям (витамины, антибиотики, >микро- и макроэлементы и т.д.), регуляции постоянства рН крови (белко­вая буферная система), свертывании крови, иммунных процессах организ­ма (многие глобулины являются носителями иммунных тел - иммуногло­булины).

Снижение содержания общего белка в сыворотке крови - гипопротеинэмия - развивается главным образом за счет уменьшения количества альбуминов и может наблюдаться при длительном недокорме животных; при низком содержании белка в рационе, не сбалансированном по амино­кислотному составу и т.п.. В нашем случае такого изменения в крови цып­лят подопытных групп не наблюдалось. Максимально высокое количество общего белка в крови мы наблюдали в группе 2 (Ветом 1.1). Введение с кормом этого препарата (с определенным количеством микробиального белка в составе) привело к увеличению количества альбуминов. При изучении глобулинов был выявлен наименьший показатель среди опытных групп. Во всех опытных группах этот показатель был значительно ниже, чем в контрольной группе. Мы это связываем с тем фактом, что произошло увеличение количества общего белка за счет альбуминовой его фракции.

Аминотрансферазы относятся к группе индикаторных ферментов. Аспартатаминотрансфераза (ACT) катализирует перенос аминогруппы с аспарагиновой кислоты на альфа-кетоглутаровую. ACT широко распространена в тканях животного организма.

Аланинаминотрансфераза (АЛТ) как и ACT содержится в скелетных мышцах, печени, сердце. В сердечной мышце ее значительно меньше, чем ACT. Самых больших концентраций АЛТ достигает в печени.

Аминотрансферазы локализуются, главным образом, в цитоплазме различных клеток (ACT расположена преимущественно в митохондриях). В физиологических условиях данные ферменты в периферической крови находятся в незначительных количествах.

При заболеваниях печени в первую очередь и наиболее значительно изменяется АЛТ по сравнению с ACT, однако в клинической практике ши­роко применяется одновременное определение в крови активности ACT и >АЛТ, так как оно несет гораздо больше информации о локализации и глубине поражения, активности патологического процесса, а также позволяет прогнозировать исход болезни.

Повышение активности индикаторных ферментов в сыворотке крови, как при остром, так и при хроническом течении гепатоза (если таковой имеется) у птицы может свидетельствовать о функциональной неполноценности и повреждении этого органа. Во всех группах эти показатели бы­ли ниже, чем в контроле. Таким образом, можно сделать заключение об отсутствии патологических изменений в печени (вскрытие цыплят, которое мы провели после убоя птицы, убедило нас в правоте хода наших рассуждений).

Физиологическое значение кальция в организме заключается в том, что он входит в состав минеральной части костей; участвует в процессе свертывания крови; повышает защитные функции организма, понижая проницаемость клеточных мембран для вредных веществ; обеспечивает нормальный уровень возбудимости нервов и мышечной ткани; уменьшает способность тканевых коллоидов связывать воду; усиливает систолическое сокращение сердца и повышает тонус сердечной мышцы, понижает порозность и проницаемость кровеносных сосудов.

Кальций всасывается в передней части тонкого отдела кишечника, выделяется главным образом толстым отделом кишечника, а также почками и печенью. В сыворотке крови общий кальций находиться в ультрафильтрующейся (дифундируемой) и коллоидной (недифундируемой) фракций. Среди разновидностей кальция еще различают белковый (альбу­миновый и глобулиновый), ионообменный и кислоторастворимый кальций. Снижение содержания общего кальция в сыворотке крови - гипокальциемия - наблюдается при рахите, остеодистрофии, голодании, нефро­зах, нефритах и тд.. Гиперкальциемия - повышение количества общего кальция в крови - встречается при остеодистрофии, гипервитаминозе Д, деформирующем артрите, сердечной недостаточности, она может быть алиментарного происхождения.

В нашем случае введение новых препаратов в корм привело к увели­чению содержания кальция в сыворотке крови. Так, в третьей группе этот показатель увеличился всего на 7,69 %. Мы полагаем, что совместное применение препаратов, привело к увеличению продукции альбуминов, а так как среди разновидностей кальция есть белковый (альбуминовый), то соответственно увеличенное количество альбуминов в третьей группе (на 25,0 %) привело к увеличению количества кальция. В остальных группах количество кальция в крови превышало таковой показатель в контрольной группе соответственно на 7,69 (3 группа) и 11,98 % (4 группа). Мы связы­ваем этот факт только с тем, что и в третьей группе и в четвертой мы вво­дили АКД «Фаворин» который воздействовал, в той или иной форме, на обмен веществ, что привело к увеличению количества кальция в сыворотке крови, так как дополнительного количества кальция в рацион опытной птицы мы не вводили, и при вскрытии птицы не выявили патологических изменений (кальцификации и т.п.) внутренних органов (сердце, почка, пе­чень).

Аналогичная ситуация сложилась и с другим элементом - фосфором. В опытных группах мы также не вводили дополнительного количества фосфора, однако, этот показатель в опытных группах превысил показа­тель контрольной, соответственно на 9,49; 13,14; 18,54 %. Эти показатели не превысили максимального уровня данного элемента в крови птицы в нор­ме. Аналогично кальцию перемещение фосфора в организме птицы под­чиняется витамину Д, а также он участвует в углеводном, жировом, белковом обменах. Являясь автолизатом кормовых дрожжей АКД «Фаворин» имеет в своем составе витамин Д, который в свою очередь оказывает особое влияние на обмен кальция и фосфора. К сожалению, доступные нам лаборатории по изучению биологических сред не обладают достаточным оборудованием, позволяющим делать заключение о количестве витамина Д в тканях и органах птицы.

Таким образом, получив достоверные данные о положительном влиянии (в большинстве показателей) испытуемых препаратов и их сочетаний мы смело можем утверждать о положительном влиянии данных кормовых добавок на организм быстро развивающегося цыпленка - брой­лера в условиях современного птицеводческого предприятия.

4.4.  Исследование мяса цыплят - бройлеров

Введение препаратов оказало влияние на химический состав и качество мяса цыплят бройлеров, табл. 7.

Как показали исследования, количество воды в мясе цыплят бройлеров в группе 2 и 4 снизилось соответственно на 1,49 и 1,34 %. Мы это свя­зываем с воздействием пробиотика Ветом 1.1 на организм цыплят бройлеров. Именно этот препарат был введен в состав корма либо самостоятельно (группа 2, либо совместно с АКД «Фаворин» (группа 4). В группе 3, в кото­рой в корма мы вводили АКД «Фаворин» количество влаги в мышечной ткани не изменилось. Количество сухого вещества в грудной мышце распре­делилось соответственно различиям, выявленным в показатели влаги в тканях цыплят бройлеров.

Жир мяса всех животных содержит ряд жирорастворимых витаминов, а также вещества, участвующие в образовании вкуса и аромата при варке мяса. Количество жира в грудной мышце цыплят - бройлеров во всех группах оказалось ниже, чем в контрольной группе, соответственно на 10,5; 14,13; 17,75 %. Мы этот факт связываем с тем, что препараты в своем составе имеют белковые составляющие и оказывают более выраженное воздействие именно на белковый обмен в организме.

Таблица 7. Исследование мяса бройлеров химический состав грудной мышцы.

Показатель

Группа

1

2

3

4

Вода

75,19±0,59

74,07±0,267

74,19±0,596

74,186±0,11

Сухое вещество

24,81±0,59

25,93±0,28

25,81±0,596

25э8±0,11

Жир

2,76±0,26

2,47±0,29

2,37±0,1968

2,27±0,199

Зола

1,25±0,045

1,28±0,012

1,313±0,066

1,287±0,0236

Азот общий

3,33±0,06

3,546±0,026

3,54±0э0535

3,56±0,028

Азот небелковый

0,48±0,014

0,557±0,004

0,56

0,57±0,0216

Протеин

20,80±0,35

22,17±0Д87

22,13±0,335

22,253±0,1678

Белок

17,79±0,28

18,69±0,185

18,62±0,334

18,687±0,134

Азот белковый

2,85±0,045

2,99±0,0029

2,98±0,0535

2,99±0,0216

Триптофан

1,07±0,02

1,087±0,009

1,143±0,021

1,167±0,049

Оксипролин

0,25±0,047

0,23±0,016

0,2±0,008

0,227±0,0047

БКП

4,47±0,21

5,29±0,50

5,72±0,196

5,15±0,2286

РН

5,85±0,05

5,87±0,05

5,86±0,0374

5,707±0,05

Интенсивность окра­ски

51,67±3,09

76±7,87

67± 11,343

83,33±3,4

Влагоемкость

49,84±2,37

53,4±1,057

54,72±1,418

50,633±0,502

Мраморность

9,69±0,84

8,28±1,009

7,96±0,522

7,607±0,71

Нежность

224,7±8,38

218±15,56

220,667±7,93

201,4+5,46

Калорийность

534,31±15,5

544,3±11,114

538,74±15,69

536,28±5,33

Из всех питательных веществ, содержащихся в мясе, наибольшее значение имеет белок. В нашем опыте во всех группах при введении новых препаратов произошло увеличение количества общего (соответствен­но на 6,49; 6,31; 6,91 %) и небелкового азота (на 16,04; 16,7; и 18,75 %), про­теина (6,59; 6,39; 6,99 %) и белка (5,06; 4,67; 5,04 %). Значение общего содержания белка в мясе не полностью отражает его качество. Это связано с тем, что наряду с полноценными белками в мясе содержаться и неполно­ценные белки (коллаген, эластин, ретикулин). Коллаген соединительнотканных белков содержит оксипролина больше, чем любой белок. Поэтому содержание оксипролина в мышцах используют как показатель содержания неполноценных белков. Количество протеина в контрольной группе составило (0,25±0,047). В группах 2-4 этот показатель был ниже соответственно на 8,0; 20 и 9,2 %, чем в контроле. Это говорит о том, что качество мяса цыплят - бройлеров при применении препаратов выше, полноценнее.

Такой показатель как рН мяса обусловлен количеством молочной кислоты, образующейся из гликогена при анаэробном гликолизе. У здоровых хорошо упитанных птиц, после убоя величина рН находится между 6-7, затем она снижается до 5,5-5,7. Низкая величина рН мяса птицы и животных, накормленных и отдохнувших до убоя, способствует образованию желательного цвета и улучшает качество мяса. В наших опытах данный показатель в контрольной группе составил 5,85, во второй и третьей опытных группах он был выше соответственно на 0,34; 0,17 % в а группе 4 он был ниже показателя контрольной группы на 2,44 %.

С упитанностью птицы, ее возрастом, породой, полом связан и такой важный показатель качества мяса, как интенсивность окраски, которая характеризует интенсивность окислительных процессов в организме. Цвет мяса определяется содержанием и состоянием водорастворимого пигмента мяса - миоглобина. Так, интенсивность окраски мяса в группах 2, 3, 4 был выше показателя контрольной группы, соответственно на 34,11; 29,67 и 61,27 % . Мы это связываем с различным воздействием препаратов при одинаковом кормлении, поении, породности полу, возрасту на организм цыплят бройлеров. Как видно из полученных данных именно совместное введение в комбикорм препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворин» привело к увеличению количества миоглобина и тем самым повлекло за собой увеличение интенсивности окраски мяса цыплят бройлеров опытных групп. И в дальнейшей работе этот показатель можно использовать при составлении различных комплексных препаратов для птицы.

Влагоудерживающая способность является важным показателем, характеризующим внешний вид мяса до варки, поведение мяса при варке и его сочность при пережевывании. В наших опытах мы также провели исследования и получили следующие результаты: во всех опытных группах влагоемкость была выше, чем в мясе цыплят - бройлеров контрольной группы (на 1,59 (четвертая группа - 7,14 % - группа номер 2). В данном случае этот показатель был выше в группе получавшей препарат Ветом 1.1. Можно предположить, что два показателя (количество воды в грудной мышце (1,49 % ниже, чем в контроле) и влагоемкость (7,14 % выше кон­троля) взаимосвязаны.

Нежность мяса зависит от свойств и распределения соединительной ткани, диаметра волокон и мышечных пучков, общей жирности и особенно количества и распределения жира внутри мышц (мраморности). В связи с низкими показателями жира в грудной кости и, как мы предположили, отсутствием какого-либо положительного воздействия препаратов на жировой обмен показатель мраморности был ниже контроля, во всех опытных группах.

Калорийность мяса в наших опытах мы также исследовали. Во вто­рой группе этот показатель был выше на 1,87 % , а в группе три на - 0,83 %, в группе 4 на 0,37 %, выше, чем в контрольной группе.

Таким образом, в общей массе показатели качества мяса цыплят-бройлеров групп, получавших препараты, оказались выше, чем таковые в контрольной группе. Это свидетельствует о положительном влиянии препаратов не только на увеличение интенсивности роста и развития цыплят-бройлеров, но и на качество продукции.

 Качество мяса птицы

В оценке мясной продуктивности птицы особое значение имеет качество мяса. Наиболее полную характеристику качества мяса дает анализ химического состава и органолептических свойств (аромата, вкуса, цвета, прозрачности и наваристости бульона)

Для изучения показателей качества мяса птицы проводили его ветеринарно-санитарную экспертизу. Убивали птицу в возрасте 42 суток по 6 голов из контрольной и опытных групп. При наружном осмотре тушек птицы из контрольной и опытных групп по внешним признакам имелись различия - цвет тушек опытных групп был более насыщенным. При осмотре внутренних органов и покровных тканей убитых цыплят - бройлеров на поверхности и в глубине (при разрезе) запах специфический для мяса птицы, а консистенция упругая. Об этом свидетельствовало быстрое исчезно­вение ямки после надавливания. На разрезе мясо плотное. Мышцы белые с розоватым оттенком. Консистенция мягкая, эластичная. Сухожилия блестящие, белые, упругие. Поверхность кожи сухая и внутренний жир приятного желтого цвета.

Дегустацию бульона и мяса проводили в условиях учебно-физиологического комплекса. Результаты проведения дегустации бульона приведены в таблице 8.

8. Результаты проведения дегустации мясного бульона

№ образца

Оценка в баллах

Внешний вид, цвет

Аромат

Вкус

Наваристость

Общая оценка

1

7,2

7,0

7,3

6,8

7,05

2

7,6

7,2

7,7

7,3

7,3

3

7,5

7,3

7,5

7,4

7,65

4

7,9

7,5

7,9

7,9

7,9

Дегустационная оценка бульона, приведенная в таблице 8 показала, что препараты оказали положительное влияние на свойства и показатели качества бульона. Так внешний вид бульона из мяса цыплят - бройлеров опытных групп был оценен комиссией на 5,6 % выше, чем мясо птицы из контрольной группы.

Аромат на 3 %, вкусовые качества бульона из мяса птицы на 13,8 %., наваристость на 7,7 %. Этот факт еще раз доказывает, что препараты оказывают положительное влияние при ведении их с кормом, не только с целью профилактики заболевания и повышения иммунного статуса орга­низма, но и улучшения качества получаемой продукции.

Дегустационная оценка мяса показывает, что препараты оказали положительное влияние на его качество и вкусовые свойства (табл. 9).

Таблица 9. Результаты проведения дегустации мяса.

№ образца

Оценка в баллах

Внешний вид, цвет

Аромат

Вкус

Наваристость

Общая оценка

1

8,2

8,0

8,3

7,8

8,05

2

8,6

8,2

8,7

8,3

8,3

3

8,5

8,3

8,5

8,4

8,76

4

8,9

8,5

8,9

8,9

8,9

5

8,7

8,1

8,7

8,3

8,5

Вареное мясо имело светло-серый цвет, было сочным, нежным, со специфическим, приятным запахом и вкусом. Посторонних запахов и привкуса при этом членами комиссии выявлено не было.

Таким образом, вкусовые качества мясного бульона и мяса птицы полученного от цыплят получавших препараты с целью улучшения качества продукции и повышения резистентности организма были выше. Бульон ароматный, приятный прозрачный, со скоплениями крупных жировых ка­пель на поверхности. Мясо имело приятный, внешний вид с консистенци­ей характерной для куриного мяса. Посторонних привкусов и запаха не выявлено. По нашему мнению положительное влияние на качество мяса и бульона препараты оказали за счет своего состава - сырье не синтетиче­ского, а натурального происхождения.

Влияние препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворин» на состав бедренной кости цыплят бройлеров

10. Состав бедренной кости цыплят бройлеров, получавших новые препараты Ветом 1.1 и АКД «Фаворин».

Показатели

Группы

1

2

3

4

Влага, %

43,15

<43,91

46,04

44,28

± к контролю, %.

 

0,09

6,69

2,62

Сухое    вещество, %

56,85

59,09

53,96

55,72

± к контролю, %

 

3,94

-5,08

-1,99

Кальций,%

20,63

<19,67

19,62

<19,84

± к контролю, %

 

-4,65

-4,89

-3,83

Фосфор, %

9,95

9,26

10,29

<9,65

± к контролю, %

 

-6,93

3,42

-3,02

Из таблицы 10 видно, что препараты оказали влияние и на состав бедренной кости цыплят бройлеров. Так по влаге все опытные группы имели более высокий показатель, чем контроле. Но количество сухого вещества лишь во второй опытной группе было выше на 3,94 % группы 3 и 4 имели более низкий показатель.

Количество кальция в опытных группах было ниже соответственно на 4,65; 4,89; 3,83 %. По нашему мнению это связано с тем, что затраты кальция на синтез альбуминов и других фракций превышали количество кальция поступающего с кормом.

В третьей опытной группе количество фосфора было выше показателей контрольной группы на 3,42 %, в остальных опытных группах этот показатель был ниже контрольной на 6,93 и 3,02; 5 % соответственно во второй и четвертой группах.

Заключение

Проведя исследования препаратов Ветом 1.1 и АКД «Фаворин» можно сделать следующие выводы.

1. Препараты Ветом 1.1. и АКД «Фаворин» не оказали никакого отрицательного воздействия на клинически здоровых цыплят - бройлеров во время проведения эксперимента.

2.  Введение Ветом 1.1 сказалось более выражено на росте и развитии цып­лят по отношению к АКД «Фаворин». Введение же совместное этих препаратов не вызывало снижения привесов и интенсивности роста, а корректировало  невысокие показатели группы в которой вводили АКД «Фаворин» самостоятельно.

3.  Увеличение количества потребляемого корма повлияло и на среднюю жи­вую массу цыпленка в группах получавших препараты.

4.Также положительное влияние препараты оказали на картину крови:
улучшение картины крови свидетельствует о влиянии на скорость обмена веществ, его полноту и интенсивность. Это касается белкового, углеводного, мине­рального и энергетического видов обмена.

5. Вкусовые качества мясного бульона и мяса птицы полученного от цыплят получавших препараты с целью улучшения качества продукции и повышения резистентности организма были выше. Бульон ароматный, приятный прозрачный, со скоплениями крупных жировых капель на поверхности. Мясо имело приятный, внешний вид с консистенцией характерной для куриного мяса. Посторонних привкусов и запаха не выявлено. По нашему мнению положительное влияние на качество мяса и бульона препараты оказали за счет своего состава - сырье не синтетического, а натурального происхождения.

6. Оценку микрофлоры в просвете кишечника мы проводить не стали: возможно это ошибка при проведении исследований: мы доставили кишечник в ла­бораторию в течении 6 часов. За это время мог произойти сдвиг микрофлоры в ту или иную сторону. Необходимо повторное проведение исследований.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1

Айлер Р. Химия кремнезема./Р. Айлер - М.: Мир, 1982. - 123 с.

2

Алиев А.А. «Обмен веществ жвачных животных» / А.А. Алиев - М: НИЦ «Инженер», 1997. - 564 с.

3

«Антибиотики и химиотерапия». / Н.И. Аманов - М., 1989. - 176 с.

4

Антипов В.А. «Биологические препараты симбионтных микроорганизмов и их применение в ветеринарии». / В. А. Антипов // Сельское хозяйство за рубежом. - 1981. - С. 43-47.

5

Антипов В.А. «Эффективность и перспективы применения пробиотиков». / В.А. Антипов, В.М Субботин // Ветеринария. - 1980. - № 12. - С. 55-57.

6

«Оценка действия in vitro сочетаний антибиотиков на патологи­ческие микроорганизмы». / К. Аржиков. // Эпозоотология и иммунопрофилакти­ка болезней с/х животных. - Новосибирск, 1983. - С. 59-64.

7

“Ферментные методы анализа». / В.С. Асатиани. -М.: Наука, 1969. - 843 с.

8

«Свойства и функции глутатион -s- трансферазы членистоногих» Е.И. Баканова, О.Ю. Ерёмина, Н.М. Кутузова и др. // Известия РАН. Сер. биологическая. - 1992. - № 4. - С4.

9

«Применение биологически активных веществ в кормлении крупного рогатого скота» / Ю.Ю.Балаж // Международный с.-х. журнал. - 1980. - № 2. - С. 75-78.

10

«Введение в фотохимию органических соединений» / Под ред. Г.О. Беккера - Л.: Химия, 1976. - 456 с.

11

Беленький Н.Г. «Проблема иммуноактивизации организма». / Н.Г. Беленький. – М.: 1958. - 278 с.

12

«Специфичность систем антиоксидантной защиты органов и тканей – основа дифференцированной фармакотерапии антиоксидантами». / В.Н. Бобырев , В.Ф. Почерняева, С.Г. Стародубцев и др. // Экспериментальная и клиническая фармакология. - 1994. - Т. 57. - N 1. - С. 47-54.

13

Бойко И.А. «Содержание хлорорганических пестицидов, нитратов и нитри­тов в мясе и субпродуктах». / И.А. Бойко, Г.Л. Бодяницкий. // Экология с.-х. производства: Материалы межвузовской конференции. - Белгород, 1995. - С. 12-13.

14

А.С.  1715283 «Способ выращивания телят» / И.А. Бойко, Г.А. Водяницкий, Ю.П. Лихолетов // Открытия. Изобретения. - 1992. - 8. - С.56.

15

Борисенко О.Н. «Влияние нитратов и нитритов на физиологическое состоя­ние животных и качество молока. Совершенствование технологии производ­ства молока и мяса». / О.Н, Борисенко // Сб. научн. тр. / Благовещенский СХИ. - Благовещенск, 1988. - С. 89-95.

16

«Влияние природных ингибиторов радикальных реакций на ав­тоокисление адреналина». / О.С. Брусов, A.M. Герасимов, Л.Ф. Панченко // Бюлл. эксп. биол. и мед. - 1976.-N 1. C. 33-35.

17

«Кинетические особенности токоферолов как антиоксидантов». / Е.Б. Бурлакова, С.А. Крашаков , Н.Г. Храпова. - Черноголовка, 1992. - 22 с.

18

«Роль кремния в питании растений и животных». / П. Ван-Соест // Сельское хозяйство за рубежом. -1971. – N 11. - С. 19-20.

19

«Теоретические и практические проблемы гнотобиологии». / В.Г. Витин и др.. - М.: Агропромиздат, 1986. - 178 с.

20

«Определение тяжелых металлов и металлоидов в живот­новодческой продукции». / В.Л. Владимиров // Зоотехния. - 1995. - N 11. - С. 22.

21

«Перекисное окисление липидов в биологических мем­бранах». / Ю.А. Владимиров, А.И. Арчаков. - М.: Наука, 1972. - С. 236.

22

«Уровень нитратов в рационах и метаболизм у жвачных жи­вотных». / Е.С. Воробьёв, А.И. Фицев. // Ветеринария. - 1994. - N 2. - С. 42-45.

23

«Кремний и жизнь». / М.Г. Воронков//Наука и человечество: Международный ежегодник. - М.: Знание, 1988. - С. 145-157.

24

«Влияние природных антиоксидантов на патологиче­ские процессы, связанные со старением». / О.Н. Воскресенский. // Итоги науки и техники. Общие проблемы биологии. - М., 1986. - Т. 5. - С. 163-201.

25

«Биоантиоксиданты - облигатные факторы питания». / О.Н. Воскресенский, В.Н. Бобырев. // Вопр. мед. химии. - 1992. - N 4. - С. 21-26.

26

«Хроническая полиантиоксидантная недостаточность как модель старения». /О.Н. Воскресенский, В.Н. Бобырев, В.Ф. Павленко и др. // Докл. АН СССР. -1983. -Т. 268. - N 2.- С. 18-23.

27

«Ангиопротекторы». / О.Н. Воскресенский, В.А. Туманов. - Киев: Здоровье, 1984. – 342 с.

28

«Влияние повышенного содержания нитратов в кормах на морфофункциональное состояние внутренних органов». / В.Ф. Вракин, В.К. Менькин    // Кормление и обмен веществ жвачных животных. - М., 1983. - Т. 231 - С. 119-127. - (Сб. научн. тр. / Моск. вет. акад. им. Скрябина К.И.).

29

«Гастроинтестинальная сорбция аэросилом при лечении желу­дочно-кишечных заболеваний телят». / Б.С. Гайдук, А.М. Стадник // Новые фармакологические средства в   ветеринарии: Тез. докл. 1-ой межвузовской научно-практ. конф. - Ленинград, 1989. - С. 17-18.

30

«Чувствительность к антибактериальным препаратам». / А.В. Го­ликов, В.Д. Духанов // Бюллетень ВНИИЭВ -1985. - № 60. - С.42-45.

31

«Метаболизм бактерий». / Г. Готшалк. - М.: Мир, 1982.

32

«Лактобиф для стимуляции продуктивности дойных коров». / Н.В. Данилевекая, В.В. Суботин, В.В. Вашурин и др. // Ветеринария. - 2003. - №2. - С. 50.

33

«Микрофлора и метаболические процессы в рубце откармливаемых бычков при содержании их на рационах с добавлением омомицина». / И.А. Долгов, Т.В. Тоноян,  Н.Г. Макарцев // Бюлл. ВНИИФБиП с.-х. животн. – Боровсю - 1991. - С. 16-20.

34

«Витамин Е и процессы биологического окисления». // Витамины. Биохимия витамина Е и селена. / Г.В. Донченко. - Киев: Наукова думка. - 1975. - Вып. 8. - С. 43-60.

35

«Процесс перекисного окисления липидов в клетках, органах и тканях человека и животных». / Е.Е. Дубинина, И.Ю. Таланова, Бурмистров СО. // Украинский биохимический журнал. - 1997. – Т. 69. - № 4. - С. 22-24.

36

«Спонтанная биохемилюминесценция животных тканей». / А.И. Журавлев // Биохемилюминесценция. - М.: Наука, 1983. -С. 3-29.

37

«Эффективность аэросила при желудочно-кишечных заболева­ниях новорожденных телят». / Л.Д. Зайцева,  А.П. Бакшеев // Новые фармаколо­гические средства в ветеринарии: Тез. докл. 1-й межвузовской научно-практ. конф. - Ленинград, 1989. - С. 20-21.

38

«Эстафетные механизмы в процессах перекисного окисления липидов биологических мембран». / И.И. Иванов // Успехи биологической химии. - М.: Наука, 1984. - Т. 25.-С. 110-124.

39

«Нитраты, как новый средовой фактор, оказывающий влияние на здоровье  населения». / А.П. Ильницкий // Тезисы  докл.  Всесоюз­ной конф. (10-13 октября 1989 г.). - Пущино, 1989. - С. 130.

40

«Возможности  гнотобиологического  эксперимента при изучении механизмов бактериального антагонизма и симбиоза». / М.М. Интиза­ров // Теоретические и практические проблемы гнотобиологии. - М., 1986. - С. 22-29.

41

«Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе». / М.В. Кения, А.М. Лукаш, Е.П. Гуськов // Успехи современной биоло­гии. - 1993. - Т. 13. - Вып.4. -С. 456-470.

42

«Свободные радикалы и их роль в нормальных и патологиче­ских процессах». / Ю.П. Козлов - М: Изд-во МГУ, 1973. - 345 с.

43

«Влияние метицилина на биохимические показатели крови». / В. Кондратьева, Н. Наумова, А. Ветшева и др.. // Профил. и ликвидация болезней домашних жи­вотных и птиц. - Ульяновск Т. 980. - С. 45-48.

44

«Справочное издание по клинической лабораторной диагностики в ветеринарии». : Сост.: И.П. Кондрахина и др.. - М: Агропромиздат, 1985. - 287 с.

45

«Бихимия животных». / А.И. Кононский. - М. : Колос,  1992. – 543 с.

46

«Ускорение воспроизводства стада крупного рогаторо скота». / О. Косова. - М., 1986. -321 с.

47

«Содержание нитратов в рационах жвачных». / А.Н. Кошаров , Н.В. Курилов// Бюлл. ВНИИ физиол.  и питания с.-х. животных. - 1973. - Вып. 3 (29). - С. 36-38.

48

«Обмен веществ организма и кишечная микрофлора». / И.Б. Курилов Н.В. -М: Медицина, 1976. - 384 с.

49

«О предельно допустимых концентрациях нитратов в кор­мах для скота». / Е.И. Кулебякин // Зоотехния. - 1989. - N 5. - С. 36-40.

50

«Физиология и биохимия пищеварения жвачных». / Н.В. Курилов, А.П. Кроткова. - М.: Колос, 1971. - 174 с.

51

«Роль перекисного окисления липидов в этиологии и патогенезе атероскле­роза». / В.З. Ланкин, А.М. Вихерт, А.К. Тихадзе и др. // Вопр. мед. химии. - 1989. - N 3. - C. 11-13.

52

«Проблемы животноводства и как их решать». / Ю.В. Любимов // Тез. докл. научно-практ. конф. - Новосибирск , 1990. - С. 12.

53

«Загрязнение природной среды нитратами, нитритами, и профилактика нитроинтоксикацииживотных». /Ф.И. Мандрик, М.Ф. Кондырева. - Кишинев, 1990. - 96 с.

54

«Образование активного кислорода в норме и патологии». // Н.Н. Маянская, Л.Е. Панин, Ю.А. Николаев, С.Д. Маянская: Вопр. мед. химии. -1990. - N 6. - С. 5-8.

55

«Канцерогенные и N-нитрозосоединения и их предшествен­ники - образование и определение в   окружающей среде». Д.В. Межевич. - Таллинн, 1984.- 150 с.

56

«Содержание нитратов в молоке и молочных продуктах в зависимости от их уровня в рационе коров». / В.К. Менькин,   М.А. Бурякова // Проблемы защиты кормов и продуктов животноводства от загрязнения токсическими веществами: Тез. докл. Всесоюзной научно-техн. конф. (4-6   де­кабря 1980 г.). - Москва, 1980. - С. 42-53.

57

«Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов». / Е.Б. Меньшикова, Н.К. Зенков. // Успехи современной биологии. - 1993. - ТЛ13. - Вып.4. - С. 442-453.

58

«Микробиология». / Н.Р. Асонов. - М.: Агропромиз дат, 1989. - 496 с.

59

«Становление микрофлоры телят при раннем включении в рацион растительных кормов» / Т.А. Николичева, Б.В. Тараканов // Биохимия питания и кормления молодняка с/х животных при раннем откорме: Сб. науч. тр.. – Боровск 1982. - С. 140-150.

60

«Основы выращивания телят». / Н.М. Носков. - М.: Госуд. изд. с. х. лит., 1956. - 295 с.

61

«Свободно-радикальные механизмы старения в биологической эволюции». / Л.К. Обухова // Итоги науки и техники. Общие проблемы биологии. - М., 1986. - Т. 5. - С. 36-68.

62

«Основы опытного дела в животноводстве». / А.И. М. Овсяников. М.: Колос, 1976. - 539 с.

63

«Нитраты». / Н.И. Опполь, Е.В. Добрянская. - Кишинев: Штиинца, 1976. - 35 с.

64

«Молекулярнi та фiзiологичнi механiзми дii вiтамiнi» Е : Автореф. дис.... докт. бiол. наук. — Киiв, 1996. - 47 с.

65

Пенегин П.В. «Дисбактериоз кишечника». / П.В. Пенегин, В.П. Мальцев, В.М. Коршунов. - М.: Медицина, 1984. - 285 с.

66

«Корма и кормовые добавки». : Справочник: Сост.: И.В. Петрухин. - М.: Росагропромиздат, 1989. - 684 с.

67

«Успехи микробиологии». / И.Г. Пивняк. - М., 1976. - 369 с.

68

«Микробиология   пищеварения жвачных». / И.Г. Пивняк, Б.В. Тараканов. - М.: Колос, 1982. - 371 с.

69

«Накопление некоторых тяжелых металлов в с.-х. про­дукции и меры по его предотвращению». / С.Ф. Покровская - М., 1984. - 152 с.

70

«Способ получения ацидофильного препарата». / М.С. Полонская, Л.Ф. Абызова, В.В. Леонович. - М. 1987.- 56 с.

71

«Влияние геропротекторов-антиоксидантое на иммунные реакции». / И.П. Садовникова // Итоги науки и техники. Общие проблемы биоло­гии. - М., 1986. - С. 69-109.

72

«Действие тиреоидных гормонов на каталазную активность эритроцитов in vitro и in vivo”. / Л.А. Сальникова. - Деп. в ВИНИТИ 16.07.82, № 3833-82.

73

«Антибиотики для практики». / А.С. Селиванова, А.П. Морозов, В.Ф. Ковалев и др. // Ветеринария. - 1984. - № 4. - С. 53-56.

74

«Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты». / И.Д. Стальная, Т.Г. Гаришвили. //Современные методы в биохимии. -М. Медицина, 1977. - С. 66-68.

75

«Основные элементы профилактики желудочно-кишечной патологии новорожденных животных». / В.В. Субботин, М.А. Сидоров. // Ветеринария. - 2004. - №1.- С. 3-6.

76

«Использование микробных препаратов и продуктов микробиологического синтеза в животноводстве». /Б.В. Тараканов. - М.,1987. - 263 с.

77

«Динамика становления микрофлоры в рубце телят на ограниченной   выпойке   цельного   молока». / Б.В. Тараканов, Т.А. Николичева, М.А. Ткачёв // Микроорганизмы в сельском хозяйстве: Тез. докл. 4 всесоюзной научн. конф. - Пущино, 1992.- С. 192.

78

«Микробиология». / Телямейстер Э.Т. и др. - М. 1977. - 397 с.

79

«Использование сухих микроорганизмов рубца при кормлении скота». /Ч.У. Тернер // Сельское хозяйство за рубежом. - 1957. - № 12. - С. 121-126.

80

«Микрофлора пищеварительного тракта молодняка с/х животных». / М.А. Тимошко. - Кишинёв: Штинца, 1990. - 361 с.

81

«Основные механизмы метаболизма ксенобиотиков в организме животных и человека» / Л.А. Тиунов //Итоги науки и техники. Сер. Токсико­логия. - М, 1981. - Т. 12. - С. 64.

82

«Перекисное окисление липидов телят, больных диспепсией». / В.А. Томчук, Д.А. Мельчук  // Ветеринария. - 2003. - № 8 . - С. 35-37.

83

«Микроорганизмы на службе животноводства». / Р.В. Тузова. - Минск: Ураджай, 1985. - 274 с.

84

«Питание и процессы биотрансформации чужеродных веществ». / В.А. Тутельян, Г.И. Бондарев, А.Н. Мартинсон. // Итоги науки и техники. Сер. Токсикология. - М., 1987. - Т. 15. - С. 212.

85

«Чувствительность микрофлоры цыплят к антибиотикам при пуллорозе - тифе птиц». / В. Федотов, Е. Останина // Профил. и терапия болезней животных Алтая с учётом изменения морфологии. - Барнаул, 1981. - С. 110-111.

86

«Механизмы транспорта аскорбиновой кислоты через биологические мембраны». / А.Г. Халмурадов, В.Н. Тоцкий // Украинский биохимический журнал. - 1982. - T. 54. – N 1.- C. 96-107.

87

«Ветеринарная токсикология». / Г.А. Хмельницкий,  В.Н. Локтионов. - М.: Агропромиздат, 1987. - 381 с.

 

«Лечебно - профилактические свойства комплексных препаратов содержащих нитрофураны». / А.С. Хоменко, А.О. Погорелый. // Ветери­нария. - 1984. - № 7. - С. 64-65.

88

«Некоторые аспекты антиоксидантного статуса». / О.И. Цебрджинский // Физиология и патология перекисного окисления липидов, гомеостазов и имуногенеза. - Полтава, 1992. - С. 120-155.

89

«Гнотобиология - учение о микромире организма хозяина». // Теоритические и практические праблемы гнотобиологии. М.: 1986. - С. 14-19.

90

«Гнотобиология». / О.В. Чахаева. - М.: Медицина, 1972. - 284 с.

91

«Загрязнение компонентов пищевой цепи токсичными соединениями и вопросы его профилактики». / А.А. Шапошников // Загрязнённость экологических систем токсикантами и актуальные вопросы современной фармакологии и токсикологии: Матер, международной конф. – Троицк. 1996. - С. 17.

92

«Распределение токсичных веществ в молочных продуктах». / А.А. Шапошников, Н.Г. Габрук //Молочная промышленность. - 1994. - N 6. - С. 26-28.

93

«Сорбенты для снижения уровня токсичности веществ в организме животных и их продукции». / А.А. Шапошников, Н.А. Мусиенко // Зоотехния. - 1996. - № 8. - С. 1749.

94

«Аскорбиновая кислота (витамин С)». / Т.М. Шарманов // Экспериментальная витаминология: Справочное руководство. - Минск: Нау­ка и техника, 1979. - С. 481-500.

95

«Трактаты Саратовского зооветеринарного  института». / Л.А. Яковлев, П.Я. Сорокин. - Саратов, 1971. - 259 с.

96

Axelsson L.T. // «Microb.Ecol.Health and Disease». - 1989. -V. 2. - P. 2.

97

«Redokivonat hatasa borjak es malaidc emeszto – renderere». / J. Balais // Allattenyezrtes. - 1974. - Т. 23. Р. 79-89.

98

«Bandyopadhyay Commas. Effect of ascorbate deficiency on liver glycogen metaboliam in guinea pig. Lachehidananda» / Commas Bandyopadhyay. E. Banerje // In­dian J. Exp. Bid. -1982. – V.20. – N 1. -P.44-47.

99

«Ascorbate metabolism and its regulation in animals». / G. Banhegue, L. Braun, M. Csala // Free Radical Biology and Medicine. -1997. -V. 23. – N 5. - P. 33-37.

100

Barefoot S.F., Klaenhammer T.R. // «Appl. Environ. Microbiol. » - 1983.-V. 45. - P. 56-64.

101

Growth and development of catves/ A. Bekker, N. Heing//Cattle breebing. -1981. - V. 46.-P. 47-53.

102

Blokma N.,  Ettekoven H., Hothius F.M. // «Med.MIcrobiol.  hnmunol.» - 1981. - V. 170. - P. 112-118.

103

Bogdanov I.G., Dalev P.G., Gurevid A.I. // «FEBS Lett. » - 1975. - V. 57. - P. 33-35.

104

Bogdanov I.G., Popkhirstov P., Marinov L. // «Abst. Vet. Inter. Cancer Congress». - 1962. - P. 67-69.

105

Camarer W. // «Mchm. Med. Wchr.» - 1961. - V. 41. - P. 75-77.

106

«Ptective Role of Natural Antioxdants». / Carg J. Wilmott, A. Znaiden // osmetics-& Toi- letries. - 1987. - Vol. 102. - № 2. - P. 37-46.

107

Cerguiglini S. // «Rass. Clin. Sci.» - 1974. - V. 50. - P. 4-5.

108

Daeshel M.A. // «ASM Bacteriol. Proc. Abstr.» - 1986. - V. 14. - P. 34-36.

109

Feske A. // «Rass. Clin. Sci.» - 1974. - V. 50. - P. 4-5.

110

Flouteaux J. «Et ai. Bull. Soc. Med. Veter.» - 1968. - V. 17. - P. 144.

111

Freter R. // «Amer. J. Clin. nutrition». - 1974. - V. 14. - P. 13-14.

112

Fuller R. // «Appl Bacteriol». - 1989. - V. 66. - P. 5-7.

113

Gellinck P.H. «Peroxidase as a marker enzyme on estrogen – responsivetissues». / P.H. Gellinck, A. Newcombe, H.I. Keeping // Adv. Enzyme Regul. - 1979. - V. 17. - P. 325-342.

114

Gililand S.E. // «FEMS Microbiol. Rev.» - 1990. - V. 87. - P. 24-26.

115

Gonzales B.V. // «Appl. and Environ. Microbiol.» - 1994. - V. 60. - P. 6-11.

116

«Cytotoxicproperties of salivary oxidants». / B. Grishann, M. Elizabeth // Amer. J. Physiol. -1990. - V. 258. – N l. – Pt. l. -P. I15-121.

117

Gros M, Thieulin G. // «Rec. Med. Veter.» - 1968. - V. 144. - № 9. - P. 877-889.

118

Gros M. Jhielin G. // «Le laut.» -1997. - V l5. - P. 493-494.

119

«Studies on cellolose decompositing bacterial from rumen ofcattle». / R.E. Hungate // J. Bacterial. - 1967. - V. 53. - P. 631-639.

120

«The chemistri of Silica». / R.K. Iler // Ed. by Willey. -1979. - N 1. - P. 23.

121

«Rat glutatione transferase 8-8, an enzyme efficiently detoxifying 4-
Hydroxyalk-2-enals». / H. Jensson, C. Guthenberg, P. Alin // FEBS Lettr. - 1986. - V. 203. –N 2. -P. 207-209.

122

«Grassland production and nitrate poisoning in cattle». / A. Kemp J.H. Genrink, A. Melestein. - Rep. Proc. 7th General Meeting of Europ. Grassland Feder. Belgium. - 1978. - V. 9 - P. 1-15.

123

«Aufgaben fur die Praxis und Ergebnisse bei bakteriologrischen, mykologischen und toxikologischen Untersuchungen». / B. Konler, E. Hoernicke, W. Frick // Monat. Veter. - 1984. -Vol. 39. -N 1-2. P. 39-44.

124

«Particle-Bound Glutatione-s- Transferases». / P. Kraus, B. Gross // Enzyme. - 1979. V. 24. - № 3. - P. 205-208.

125

«Observations on the alimen- tary tract of gnotobionic lambs». / RJ. Lisons // Rec. Vet. Sci. - 1976. - V. 20. - № 1. -P. 70-74.

126

«Lipid Oxidation: Biologic Effects and Antioxidants-A Review. -Lipids». / M.K. Logani, R.E. Davies // Rec. Vet. Sci. - 1980. - Vol. 15. - N 6. - P. 485-495.

127

«Effect of nitrate and its reduction products on growth and activity of the rumen microbial population». / J.P. Marais // British J. of Nutrition. - 1988. -V. 9. - P. 301-313.

128

Marsh W., Fingerhut В., Miller H. // «Clin. Chem.». - 1965. - V. 11. - P. 624.

129

«The Purificaton of Glutatione Peroxidase of Erythrocytes». / G.S. Mills // J. Biol. Chem. -1954. -V. 234. - N 3. -P. 502-506.

   

Социальные сети  

vk 32  ok 32

   

Отчеты и акты производственных испытаний ветеринарных препаратов  

   

Презентации  

   

Внимание!
В связи с тем, что на сайтах некоторых компаний, продающих нашу продукцию, размещено много информации, уровень достоверности которой не всегда корректен или не соответствует действительности, официально заявляем:
ООО НПФ "Исследовательский центр" не несет ответственность за любую информацию, размещенную на сторонних сайтах, в том числе со ссылками на наш сайт www.vetom.ru

   
© НПФ «Исследовательский центр»
free counters Яндекс.Метрика